علوم گیاهان زراعی ایران

علوم گیاهان زراعی ایران

بررسی تغییرپذیری پلی‌آمین‌ها تحت تنش خشکی در لوبیای قرمز (Phaseolus vulgaris L.)

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
محسن ممبنی 1
علیرضا عباسی 2
1 دانشجوی دکتری بیوتکنولوژی کشاورزی، گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
2 دانشیار گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
10.22059/ijfcs.2016.58853
چکیده
در این تحقیق تغییرپذیری پلی‌آمین‌های پوترسین (put)، اسپرمیدین (spd)، اسپرمین (spm) و نشت الکترولیت (EL) در سه ژنوتیپ K-S-31167، GE-288 و NAZ لوبیا تحت تنش خشکی بررسی شد. تنش خشکی در مرحلۀ گلدهی بر پایۀ ظرفیت زراعی و در گلخانه انجام شد. در هر سه ژنوتیپ با افزایش شدت تنش، محتوای پوترسین و اسپرمین افزایش یافت. بیشترین افزایش پوترسین در ژنوتیپ حساس به خشکی NAZ و بیشترین افزایش اسپرمین در ژنوتیپ مقاوم به خشکی K-S-31167 مشاهده شد. دو ژنوتیپ K-S-31167 و NAZ افزایش پیوسته در محتوای اسپرمیدین را نشان دادند اما در ژنوتیپ GE-288 کاهش و پس‌ازآن افزایش در محتوای اسپرمیدین مشاهده شد. ژنوتیپ حساس (NAZ) گرایش به تجمع پوترسین و ژنوتیپ مقاوم (K-S-31167) گرایش به تجمع اسپرمین نسبت به دیگر پلی‌آمین‌ها دارند. تنش باعث افزایش در نشت الکترولیت در هر سه ژنوتیپ شد. نتایج نشان داد که ژنوتیپ مقاوم به خشکی K-S-31167 نشت الکترولیت کمتری نسبت به ژنوتیپ حساس NAZ داشت.
کلیدواژه‌ها
پلی‌آمین
تنش خشکی
لوبیا
نشت الکترولیت

عنوان مقاله English

Polyamine changes analysis under drought stress in common bean (Phaseolus vulgaris L.)

نویسندگان English

Mohsen Mombeni 1
Alireza Abbasi 2
چکیده English

In this research, we studied polyamines including putrescine (put), spermidine (spd) and spermine (spm) changes in three common bean (Phaseolus vulgaris) genotypes, K-S-31167, GE-288 and NAZ under drought stress. Our result showed steadily increase in putrescine (put) and spermine (spm) in all three genotypes.  GE-288 genotype showed decrease and then increasing in spermidine (spd) content but K-S-31167 and NAZ genotypes showed steadily increasing in spermidine (spd). NAZ genotype accumulated putrescine more than other polyamines and showed the highest amount of putrescine in compare with other genotypes. K-S-31167 genotype accumulated the highest spermine content in compared with other genotypes. Our result showed significant increase in electrolyte leakage (EL) in all three genotypes. K-S-31167 as drought tolerant genotype and ZAZ as drought sensitive genotypes showed the lowest and the highest increase in EL, respectively.

کلیدواژه‌ها English

common bean
Drought stress
electrolyte leakage
polyamine
  1. Abbasi, A. R., Sarvestani, R., Mohammadi, B. & Baghery, A. (2014).Drought stress-induced changes at physiological and biochemical levels in some common vetch (Vicia sativa L.) genotypes. Journal of. Agricultural. Science and Technology, 16, 505-516.
  2. Alcázar, R., Altabella, T., Marco, F., Bortolotti, C., Reymond, M., Koncz, C., Carrasco, P. & Tiburcio, A.F. (2010). Polyamines: Molecules with regulatory functions in plant abiotic stress tolerance. Planta, 231, 1237-1249.
  3. Bhatnagar-Mathur, P., Vadez, V. & Sharma, K.K. (2008). Transgenic approaches for abiotic stress tolerance in plants: retrospect and prospects. Plant Cell Rep, 27, 411-424.
  4. Bouchereau, A., Aziz, A., Larher, F. & Martin-Tanguy, J. (1999). Polyamines and environmental challenges: recent development. Plant Science, 140,103-125.
  5. Chai, T., Fadzillah, M., Kusnan, M. & Mahmood, M. (2005). Water stress induced oxidative damage and antioxidant responses in micropropagated banana plantles. Biologial Plantarum, 49(1), 153-156.
  6. Dhindsa, R.S. (1991). Drought stress-enzyme of gluthation metabolism and protein synthesis in Tortula varalis. Plant physiology, 95, 648-651.
  7. Flores, T., Todd, C.D., Tovar-Mendez, A., Dhanoa, P.K., Correa-Aragunde, N., Hoyos, M.E., Brownfield, D.M., Mullen, R.T., Lamattina, L. & Polacco, J.C. (2008). Arginase-negative mutants of Arabidopsis exhibit increased nitric oxide signaling in root development. Plant Physiology, 147, 1936-1946.
  8. Gill, S.S. & Tteja, N. (2010). Polyamines and abiotic stress tolerance in plants. Plant Signaling Behavior, 5(1), 26-33.
  9. Groppa, M. D. & Benavides, M.P. (2008). Polyamines and abiotic stress: recent advances. Amino Acids, 34, 35-45.
  10. Hugo, J.P. & Jan, M.C. (1987). High speed HPLC analysis of polyamines in plant tissues. Plant Physiology, 83, 232-234.
  11. Keshavarzinia, R., Mohammadi Narjesi, B. & Abbasi, A. R. (2013). Evaluation of genetic diversity in common bean based on morphological traits under normal and drought conditions. Iranian Journal of Agricultural Science, 44 (2), 305-315. (in Farsi)
  12. Lutts, S., Kinet, J. M. & Bouharmont, J. (1996). NaCl-induced Senescene in leaves of Rice (Oryza sativa L.) Cultivars differing in salinity resistance. Annual Botany, 78, 389-398.
  13. Malabica, R. & Wu, R. (2001). Arginine decarboxylate transgene expression and analysis of environmental stress tolerance in transgenic race. Plant Science, 160, 869-875.
  14. Moller, I.M., Jensen, P.E. & Hansson, A. (2007). Oxidative modifications to cellular components in plants. Annual Review of Plant Biology, 58, 459-481.
  15. Nambeesan, S., AbuQamar, S., Laluk, K., Mattoo, A.K., Mickelbart, M.V., Ferruzzi, M.G., Mengiste, T. & Handa, A.K. (2012). Polyamines attenuate ethylene-mediated defense responses to abrogate resistance to Botrytis cinerea in tomato. Plant Physiology, 1033-1045.
  16. Porter, J.R. (2005). Rising temperatures are likely to reduce crop yields. Nature, 436, 173-174.
  17. Premachandra, G.S. & shimada, T. (1998). Evaluation of polyethylene glycol test of measuring cell membrane stability as a drought tolerance test in wheat. Agricultural. Science, 110, 429-43.
  18. Raison, J.K., Berry, G.A., Armod, R.A. &. Pike, C.S. (1980). Membrane properties in relation to the adaptation of plants to temperature stress. Crop Science, 34, 261-273.
  19. Rathinasabapath, B. (2000). Metabolic engineering of stress tolerance: Installing osmoprotectant synthesis pathway. Annals of Botany, 86, 709-716.
  20. Sairam, P.K., Deshmukh, P.S. & Shukla, D.S. (1997). Tolerance to drought and temperature stress in relation to increased antioxidant enzyme activity in wheat. Agronomy and Crop Science, 178, 171-178.
  21. Shpiler, L. & Blum, A. (1986). Differential reaction of wheat cultivars to hot environment. Euphytica, 35, 483-492.
  22. Thuiller, W., Lavorel, S., Araujo, M.B., Sykes, M.T. & Prentice, I.C. (2005). Climate change threats to plant diversity in Europe. Proceedings of the National Academy of Sciences, 102, 8245-8250.
  23. Valentovic, P., Luxava, M., Kalorovic, L. & Gasparikova, O. (2006). Effect of osmotic stress on compatible solutes content, membrane stability and water relations in two cultivars. Plant and Soil Environment, 52(4), 186-191.
  24. Yamaguchi, K., Takahash, I.Y., Berberich, T., Imai, A., Miyazaki, A., Takahashi, Michael, A. & Kusano, T. (2006). The polyamine spermine protects against high salt stress in Arabidopsis thaliana. FEBS. Lett, 580, 6783-6788.
  25. Yamaguchi, K., Takahash, I.Y., Berberich, T., Imai, A., Takahashi, T., Michael, A.J. & Kusano, T. (2007). A protective role for the polyamine spermine against drought stress in Arabidopsis. Biochemical and Biophysical Research, 352, 486-490.
  26. Yang, J., Zhang, J., Liu, K., Wang, Z. & Liu, L. (2007). Involvement of polyamines in drought resistance of rice. Journal of Experimental Botany, 58 (6), 1545-1555.
  27. Yardanov, I., Velikonova, V. & Tsonev, T. (2003). Plant responses to drought and stress tolerance. Bulgarian Journal of Plant Physiology, 187-206.
  28. Zlatev, Z.S., Lidon, F.C., Ramulho, J.C. & Yordanov, I.T. (2006). Comparison of resistance to drought of three bean cultivars. Biologia Plantarum, 50(3), 389-394.
علوم گیاهان زراعی ایران
دوره 47، شماره 2 - شماره پیاپی 2
تابستان 1395
صفحه 185-192

  • تاریخ دریافت 23 مهر 1393
  • تاریخ بازنگری 20 آبان 1394
  • تاریخ پذیرش 22 آبان 1394
  • تاریخ انتشار 01 شهریور 1395