The Effect of Plant Residues, Mycorrhizal Symbiosis, and Zinc Sulfate in Legume and Non-Legume Rotation on Nutrients Absorption and Wheat Yield

Document Type : Research Paper

Authors

1 Dryland Agricultural Research Institute, Kohgiluyeh and Boyer-Ahmad Agricultural and Natural Resources Research and Education Center Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Gachsaran, Iran

2 Department of Agriculture Science, Payame Noor University, Tehran, Iran.

Abstract

In order to investigate the effects of plant residues, crop rotation, mycorrhizal symbiosis, and zinc sulfate on grain yield and zinc, phosphorus contents of grain, in subtropical rainfed conditions at Gachsaran Rainfed Research Station, a study was carried out as a split factorial experiment in a RCBD with three replications and during four crop years. The treatments included four crop rotations as the main plots (including vetch, wheat, canola, and lentil), inoculation with mycorrhizal symbiosis (inoculation and non-inoculation) and two zinc sulfate rates (such as 0 and 40 kg.ha-1) as subplots. The results showed that the highest quantitative and qualitative yield (such as phosphorus and Zn levels) were achieved in vetch-wheat rotation plus mycorrhizal symbiosis inoculation. Application of zinc sulfate or mycorrhiza in all periodic patterns increased the weight of 1000 seeds, spike weight and grain yield. Cultivation of two types of legumes (lentil and vetch) in the wheat rotation increased grain zinc concentration compared to the other two rotation patterns (wheat-wheat and canola-wheat). Grain zinc concentration was increased 5 and 18 percentage by inoculating with mycorrhiza and zinc sulfate, respectively. In general, the implementation of the periodic pattern of vetch-wheat and lentil-wheat along with the use of mycorrhiza can be recommended as an effective pattern in terms of quantitative and qualitative wheat yield.

Keywords

Main Subjects


. مقدمه

کمبود عناصر کم‌مصرف در زمین‌های زیر کشت غلات، گسترش جهانی دارد و میلیون‌ها هکتار از زمین‌های قابل کشت در سطح جهان با کمبود یک یا چند عنصر ریزمغذی روبرو هستند. در این رابطه فائو در گزارشی مفصل از 30 کشور جهان اعلام کرده است که بیش از 30 درصد خاک‌های این مناطق دچار کمبود روی به‌عنوان یک عنصر کم‌مصرف می‌باشند (FAO, 2017). کمبود ریزمغذی‌ها در خاک نه تنها موجب افت کمی عملکرد می­شود؛ بلکه محتوای پایین این عناصر به‌ویژه روی و آهن در محصول تولیدی، موجب کاهش جذب آن‌ها به وسیله انسان و دام می‌شود که به نوبه خود موجب بروز بیماری‌های مختلف و در نتیجه پایین­آمدن سطح بهداشت و سلامتی جامعه می­شود (Cakmak et al., 2010; Shi et al., 2010; Baghbani- Arani et al., 2018). کمبود روی به‌عنوان یک تهدید عمده در رابطه با سلامت انسان و مرگ و میر در مقیاس جهانی در نظر گرفته شده ‌است. وجود آهک زیاد در خاک، واکنش قلیایی خاک، همچنین کمبود نزولات جوی و اقلیم خشک و نیمه­خشک مشکلات فراوانی در ارتباط با جذب عناصر اصلی و کم‌مصرف توسط ریشه گیاه به­وجود می‌آورند (;Lopez et al., 2001; Alizadeh et al., 2008
 Baghbani- Arani et al., 2018).

در عین حال بخش قابل توجهی از زمین‌های کشاورزی در کشور ایران تحت تاثیر عوامل یاد شده قرار دارند که موجب تشدید کمبود جذب ریزمغذی‌ها از خاک می­شوند. در همین راستا، نتایج برخی بررسی‌های انجام­پذیرفته در ایران، حاکی از کمبود شدید روی در گستره وسیعی از زمین‌های زیر کشت گندم می‌باشد (Baghbani- Arani et al., 2018). افزون بر اهمیت غلظت مناسب روی در دانه و کاه گندم به منظور تامین نیازهای انسانی و دامی، غلظت مناسب این عنصر در بذر این گیاه در رشد اولیه و استقرار گیاهچه و نهایتا عملکرد نهایی محصول نیز تاثیر بسزایی دارد. گیاهچه­های حاصل از بذرهایی با محتوای پایین روی در خاک‌های با سطح پایین این عنصر و تحت شرایط دیم، رشد و استقرار ضعیفی دارند (Yilmaz et al., 1998).

عنصر روی دارای تحرک پایینی در خاک بوده و کمبود آن مسئله‌ای رایج به­ویژه در خاک‌های آهکی مناطق خشک و نیمه‌خشک می‌باشد (Broadley et al., 2007). یک راه حل جهت حل مشکل کمبود روی در گیاهان زراعی صرف ‌نظر از وضعیت خاک، غنی‌سازی زیستی می‌باشد (White & Broadly, 2009; Baghbani- Arani et al., 2018)؛ شیوه­ای که امکان افزایش قابل توجه غلظت عناصر معدنی را در گیاهان فراهم می‌کند. غنی‌سازی زیستی دو جنبه مهم را شامل می‌شود: غنی‌سازی زیستی از طریق اصلاح ژنتیکی و یا با بهره‌گیری از روش‌های زراعی (Cakmak, 2008). غنی‌سازی ژنتیکی با انتخاب و اصلاح کارایی جذب، انتقال مجدد و بهره‌برداری از روی در گیاهان حاصل شده ‌است (Hacisalihoglu & Kochian, 2003). البته استفاده از شیوه‌های به‌نژادی در این رابطه زمان‌بر بوده و تنها هنگامی مفید است که ویژگی‌های خاک برای رشد محصول مورد نظر مناسب باشد. در نقطه مقابل، روش‌های آگرونومیکی در رابطه با بهبود غلظت روی در بافت‌های گیاهی، به سهولت قابل استفاده بوده و مورد تایید قرار گرفته‌اند (Zhang et al., 2012). تاکنون استفاده از شیوه‌های ژنتیکی و زراعی در زمینه غنی‌سازی زیستی با موفقیت نسبی همراه بوده است؛ اما در عین حال نیازمند صرف هزینه‌های بالا در زمینه مهندسی ژنتیک یا مصرف کودهای شیمیایی می‌باشند.

همزیستی قارچ‌های مایکوریزا، رهیافت نوین و پایداری در راستای افزایش میزان جذب ریزمغذی‌ها توسط گیاهان زراعی می‌باشد (Cavagnaro, 2008). این قارچ‌ها با سیستم ریشه گیاه یکپارچه شده و قابلیت جذب آب و مواد غذایی توسط ریشه را افزایش می‌دهند (Smith & Smith, 2011). عمده گیاهان زراعی قادر به ایجاد رابطه همزیستی با این قارچ‌ها می‌باشند، تنها استثنای عمده اعضای خانواده Brassicacea می‌باشند (Wang & Qiu, 2006). افزایش جذب عناصر غذایی کم­تحرک در خاک به­ویژه فسفر و روی از مهمترین فواید همزیستی مایکوریزایی برای گیاه میزبان است (Jansa et al., 2003; Aghababai et al., 2011). با در نظر گرفتن تقاضای روزافزون در رابطه با کودهای حاوی روی و با توجه به قابلیت قارچ مایکوریزا در بهبود قابل توجه جذب این عنصر، استفاده از همزیستی مایکوریزایی به­ویژه در غلات به‌عنوان یکی از راه حل‌ها جهت افزایش میزان جذب روی، پیشنهاد شده‌ است (Ortas, 2012). علاوه­بر اثرات مستقیم مایکوریزا در افزایش جذب روی از خاک، گزارش‌هایی وجود دارد مبنی بر اینکه این قارچ موجب کاهش pH ریزوسفر شده و بدین­ترتیب زمینه افزایش حلالیت و دسترسی به روی و سایر عناصر کم‌مصرف را برای گیاه فراهم می‌آورد (Mohammad et al., 2005).

در بیشتر مناطق خشک و نیمه خشک، بقایای گیاهی تولیدی در مزارع سوزانده شده و یا برای خوراک دام استفاده می­شود. این بقایا منبع قابل توجهی از عناصر کم­نیاز از جمله روی بوده و مخلوط­کردن آن‌ها با خاک، می‌تواند به چرخه این عناصر در خاک کمک کند (Khoshgoftarmanesh et al., 2010). نتایج محققان نشان داده‌است که هر تن کاه گندم می‌تواند از عناصر روی، آهن، منگنز، مس، بور و مولیبدن به‌ترتیب حاوی 96، 777، 745، 42، 55 و چهار گرم باشد (Prasad, 1999). بر اساس یافته‌های محققان 50 تا 80 درصد روی، مس و منگنز جذب­شده توسط کاه گندم در صورت بازگرداندن این بقایا به خاک، دوباره به سیستم زراعی بر می‌گردد (Prasad & Sinha, 1999). در این راستا، باغبانی آرانی و همکاران (2018) گزارش کردند که در خاکی با کمبود شدید روی در ایران (شهرستان دهاقان در استان اصفهان) که با شش تیمار (شاهد، سولفات روی، بقایای گندم، بقایای لوبیا، بقایای گندم + روی و بقایای لوبیا + روی) غنی‌سازی زیستی در تناوب گندم صورت گرفته بود به‌ترتیب بالاترین میزان عملکرد، پروتئین و غلظت روی دانه مربوط به تیمار بقایای لوبیا + روی و کمترین میزان آنها مربوط به شاهد بود.

در رابطه با تاثیرپذیری همزیستی مایکوریزایی تحت تاثیر بقایای گیاهی و بالعکس مطالعات محدودی انجام پذیرفته است. به‌طور کلی مشخص شده است که کاربرد فسفر معدنی موجب کاهش کلونیزاسیون مایکوریزایی در ریشه گیاهان می‌شود (Hasbullah et al., 2011). اثرپذیری کلونیزاسیون مایکوریزایی از فسفر معدنی را به وجود یا عدم وجود بقایای گیاهی و نوع بقایای گیاهی مربوط دانسته‌اند. در این راستا، نامبردگان گزارش کردند که در حضور بقایای باقلا و نخود، کاربرد فسفر معدنی به فرم کودی تاثیر بازدارنده بر همزیستی مایکوریزایی با ریشه گندم بر جای نمی‌گذارد. در هماهنگی با این نتایج، بیان شده است که استفاده از بقایای گیاه لگوم لوپن با افزایش قابل توجه در میزان کلونیزاسیون ریشه گندم توسط قارچ مایکوریزا همراه است
 (Borie et al., 2002).

از آن‌جایی­که اطلاعات محدودی در زمینه تأثیر انواع بقایای گیاهی و مایکوریزا بر قابلیت جذب فسفر و روی در خاک و غلظت آن در دانه گندم خصوصا در شرایط دیم وجود دارد، پژوهش حاضر با هدف تأثیر انواع بقایای گیاهی در تناوب گندم و مایکوریزا بر عملکرد کمی و کیفی (روی و فسفر) دانه گندم در شرایط دیم در منطقه گچساران انجام شد.

 

  1. روش­شناسی پژوهش

2-1. مشخصات محل و زمان انجام آزمایش

منطقه مورد مطالعه ایستگاه تحقیقات دیم گچساران واقع در استان کهکیلویه و بویراحمد در 30 درجه و 18 دقیقه عرض شمالی و ۵۰ درجه و 97 دقیقه عرض شرقی با ارتفاع 670 متر از سطح دریا قرار دارد، اقلیم این ناحیه گرمسیری با میانگین دمای 8/21 درجه سانتی‌گراد و میانگین بارش سالیانه 430 میلی‌متر است.

انتخاب بقایا با توجه به کشت رایج در منطقه و الگوی بهینه تناوب زراعی انجام پذیرفت. این پژوهش به‌صورت اسپلیت­فاکتوریل در قالب طرح پایه بلوک‌های کامل تصادفی در سه تکرار و طی چهار سال زراعی 1396-1400 انجام شد. تیمارهای آزمایشی شامل چهار سطح بقایای گیاهی به‌عنوان کرت اصلی (شامل ماشک گل­خوشه‌ای، عدس، کلزا و گندم)، دو سطح همزیستی مایکوریزایی (تلقیح و عدم تلقیح) و دو سطح سولفات روی (مصرف 40 کیلوگرم در هکتار سولفات روی و عدم کاربرد آن) به‌عنوان کرت‌های فرعی بودند. اندازه هر واحد آزمایشی 12 متر مربع در نظر گرفته شد. در سال­های فرد (اول و سوم) در هر تکرار صرف ‌نظر از تیمار همزیستی مایکوریزایی و کود شیمیایی، چهار واحد آزمایشی به کشت هر یک از گونه­های اشاره­شده اختصاص یافت. در پایان هر یک از سال­های یکم یا سوم و پیش از کشت گندم در سال متعاقب، بقایای گیاهی تولیدشده به قطعات ریز خرد شده (پنج تا10 سانتی‌متر) و تا عمق 15 سانتی‌متری با خاک مخلوط شدند. میزان مصرف بقایا از هرگونه گیاهی بسته به عملکرد زیستی و شاخص برداشت آن گونه تعیین شد. بدین­ترتیب بسته به نوع تناوب (1: ماشک (رقم طلوع)-گندم (رقم آفتاب)، 2: گندم-گندم، 3: کلزا (هیبرید هایولا 50)-گندم، 4: عدس (رقم گچساران)-گندم) و با توجه به تفاوت گونه­های مذکور در تراکم کاشت، عملکرد بیولوژیک و شاخص برداشت، میزان بقایای افزوده­شده به خاک نیز متفاوت بود. در سال­های زوج (دوم و چهارم)، کشت گندم با اعمال تیمار تلقیح مایکوریزایی و کود شیمیایی انجام پذیرفت. تاریخ کاشت گندم در حد فاصل 15 آبان تا 20 آذرماه بسته به توزیع بارندگی فصلی صورت گرفت. به منظور ایجاد همزیستی مایکوریزایی از برند تجاری مایکوروت مخصوص تلقیح بذر استفاده شد. ویژگی این مایه تلقیح، دربرداشتن گونه‌های مختلفی از قارچ مایکوریزا (حاوی قارچ میکوریزا آربوسکولار سویه‌های
Glomus intraradices ، Glomus mosseae وGlomus etunicatum با شمارش (CFU/gr) 107 تا 108) می‌باشد که موجب بالا رفتن شانس تلقیح و ارتقای کارایی آن می‌شود. تلقیح بذور با مایه تلقیح مربوطه پیش از کاشت انجام شد. روش تلقیح بذرها بدین صورت بود که بذور را در سایه روى نایلون یا سطح تمیز ریخته و پس از آغشتن آن‌ها با مقدار کمى آب، کود مایکوریز را به آن اضافه کرده و کاملا با هم مخلوط شدند به‌گونه‌اى­که تمامى بذرها با یک لایه یکنواخت از مایه تلقیح پوشانده شدند. پس از خشک­شدن بذور در سایه اقدام به کاشت شد. در پایان فصل رشد گندم در سال‌های زوج، عملکرد دانه، عملکرد زیستی و غلظت فسفر و روی دانه مورد ارزیابی قرار گرفتند. اندازه‌گیری فسفر با روش اسپکتروفتومتری و برای اندازه‌گیری غلظت روی دانه گندم، دانه به وسیله ماکروویو (مدل Wave 4 –Speed Berghof) به همراه مخلوط اسیدنیتریک و آب­‌اکسیژنه عصاره‌گیری­شده و غلظت روی در عصاره به وسیله دستگاه جذب اتمی (پرکین المر آ- آنالیست ۲۰۰) اندازه‌گیری شد (Baghbani Arani et al., 2018). در جدول 1، ویژگی‌های فیزیکی و شیمیایی خاک، پیش از کشت، ارائه شده‌اند. با توجه به نتایج آزمایش خاک ارائه­شده در جدول 1، کاربرد کودهای فسفر و پتاس انجام نشد. وضعیت بارش و میانگین دما در سال‌های اجرای آزمایش در شکل 1 نمایش‌داده‌ شده‌اند.

 

جدول 1. ویژگی‌های فیزیکی و شیمیائی خاک محل آزمایش.

 

Zn

(mg.kg-1)

Fe

(mg.kg-1)

EC

(dS.m-1)

pH

Organic

Matter (%)

Available

 P

(mg.kg-1)

Total

Nitrogen

(%)

Available

 K

(mg.kg-1)

Soil Texture

Depth

(cm)

 

 

1.23

6.53

1.36

7.6

0.5

15.5

0.061

266

Silty clay loam

0-30

 

                       

 

در سال نخست اجرای آزمایش، پس از کشت در تاریخ 16 آذر ماه به سبب خشکی طولانی­مدت و عدم بارش طی ماه‌های دی و بهمن، رشد بوته به شدت محدود و پتانسیل عملکرد از بین رفت، لذا نتایج سال یاد­شده نماینده‌ای از میانگین بلندمدت یا میان­مدت نبوده و در عمل نیز عملکرد دانه غیر قابل استناد بود.

بررسی منحنی آمبروترمیک این سال (شکل 1) نشان می‌دهد که در طی دو ماه یادشده، گیاه با تنش خشکی شدید مواجه شده و با توجه به عدم گسترش کافی سیستم ریشه در این مرحله، امکان مقابله با این محدودیت نیز وجود نداشت. بارش‌های پایان زمستان و آغاز بهار نیز با توجه به از بین­رفتن پتانسیل رشد بوته، اثری بر عملکرد نداشتند. در سال زراعی 98-97، مجموع مقدار بارندگی 764 میلی‌متر بود که به مقدار قابل ‌توجهی بالاتر از میانگین بلندمدت (435 میلیمتر) بود. از این مقدار، 332 میلی‌متر بارش در پاییز، 256 میلی‌متر در زمستان و 176 میلی‌متر نیز در بهار روی داد؛ لذا عمده بارش در پاییز و به‌ویژه در زمان پیش از کاشت روی داد. در سال زراعی 99-1398، میزان بارندگی در ایستگاه گچساران 2/435 میلی‌متر بوده که تقریباً معادل با میانگین بلندمدت بوده است. پراکنش بارندگی در پاییز 6/175، در زمستان 5/135 و در بهار 1/124 میلی­متر بود.

میزان بقایای برجای­مانده از هرگونه گیاهی بسته به عملکرد بیولوژیک و شاخص برداشت آن، متفاوت بود؛ لذا بسته به نوع تناوب زراعی اعمال­شده و با توجه به تفاوت گونه‌های مذکور در تراکم کاشت، عملکرد بیولوژیک و شاخص برداشت، میزان بقایای افزوده­شده به خاک نیز متفاوت بودند. بقایای باقیمانده پس از انجام آبیاری سبک توسط دیسک تا عمق 15 متری با خاک مخلوط شدند و جهت تسریع فرایند تجزیه مقدار 40 کیلوگرم در هکتار کود اوره نیز پیش از دیسک به خاک افزوده شد. لازم به ذکر است که پس از اجرای تناوب زراعی در سال 99-98 در سال متعاقب، کشت گندم آفتاب بر اساس الگوی تناوبی انجام گرفت که به سبب بارندگی‌های سنگین پاییزی و تاخیر اجتناب­ناپذیر در کشت و در ادامه مواجه­شدن با عدم بارش و تنش خشکی طولانی­مدت، عملکرد گندم در سال زراعی 400-99 بسیار محدود بود و امکان اعمال بهینه کوددهی سولفات روی و مایکوریزا نیز وجود نداشت، لذا داده‌ها غیر قابل اطمینان بودند و از­این­رو در ارائه نتایج و تجزیه آماری، تنها به سال زراعی 98-97 اشاره شده است.

برای تجزیه‌ و تحلیل داده‌های به‌دست ‌آمده از نرم‌افزار SAS 9.1 و مقایسه میانگین‌ها به روش آزمون چند­دامنه‌ای دانکن در سطح احتمال پنج درصد صورت گرفت.

 

 

شکل 1. منحنی‌های آمبروترمیک طی سال‌های 96-98 در منطقه گچساران.

 

  1. نتایج پژوهش و بحث

در سال زراعی 97-96 در اثر تنش شدید خشکی در طی فصل زمستان (شکل 1)، عملکرد هر چهار محصول زراعی کاهش شدیدی پیدا کرد و این موضوع به­ویژه در مورد کلزا، شدیدتر نیز بود چرا که مرحله سبز­شدن کلزا از گیاهان دیگر دشوارتر است و با توجه به کمبود بارش در این مرحله استقرار مناسبی برای بوته­های کلزا روی نداد. به­نحوی‌که به سبب تنش خشکی پس از کشت، سبزشدن و استقرار گیاهچه مختل شد که به افت شدید پتانسیل عملکرد منجر شد؛ به‌گونه‌ای­که در زمان برداشت، عملا عملکرد دانه معنی‌داری وجود نداشت و رشد رویشی نیز بسیار کم بود (جدول 2).

در سال زراعی 99-98 به­واسطه مقدار و پراکنش مناسب بارش طی سال زراعی، عملکرد بیولوژیک هر چهار محصول کشت­شده مناسب بود و موجب افزایش مقدار قابل توجهی از بقایای گیاهی به خاک شد. لازم به ذکر است به سبب محدودیت‌های مربوط به ترافیک ماشین‌آلات کاشت، کشت با تاخیر و در دی­ماه انجام شد که در صورت کشت سریعتر عملکرد حاصل­شده به­طرز قابل توجهی بالاتر می‌شد. در جدول 2، عملکرد بیولوژیک، شاخص برداشت و میزان بقایای برگشت­داده­شده به خاک، نمایش داده شده‌اند.

1-3. عملکرد دانه و شاخص برداشت

نتایج تجزیه واریانس نشان داد که اثر تناوب، کاربرد مایکوریزا و سولفات روی و اثر برهمکنش تناوب و مایکوریزا در سطح یک درصد و اثر برهمکنش مایکوریزا و سولفات روی در سطح پنج درصد بر عملکرد دانه معنی‌دار شد؛ ولی اثر تیمارهای آزمایشی و برهمکنش آن‌ها بر صفت شاخص برداشت معنی‌دار نبود (جدول 3). مقایسه میانگین داده‌ها (جدول 4) نشان داد که کشت گندم در تناوب با ماشک با تولید بالاترین عملکرد دانه، در مقایسه با سه گیاه زراعی دیگر با افزایش معنی‌دار عملکرد دانه همراه بود. همچنین مقایسه میانگین‌های مربوط به اثر برهمکنش مایکوریزا و سولفات روی نشان داد که در شرایط عدم همزیستی مایکوریزایی، کاربرد سولفات روی باعث افزایش 8/10 درصدی عملکرد دانه شد؛ اما در شرایط ایجاد همزیستی مایکوریزایی، کاربرد سولفات روی تاثیر معنی‌داری بر عملکرد دانه نداشت (جدول 5).

در راستای نتایج این تحقیق، در پژوهشی گزارش شد که کاربرد انواع بقایای گیاهی (گندم و لوبیا) و سولفات روی بر میزان عملکرد دانه گندم اثر معنی‌داری داشت؛ به‌گونه‌ای­که در بین بقایا، بقایای لوبیا (لگوم) باعث افزایش عملکرد 20 درصدی نسبت به شاهد شد؛ ولی بیشترین عملکرد دانه گندم هنگامی به‌دست آمد که بقایای لوبیا به همراه عنصر روی به خاک اضافه و باعث افزایش عملکرد 35 درصدی نسبت به شاهد شد. محققان این تحقیق نتیجه گرفتند علاوه­بر اثر اضافه­شدن روی به خاک، به‌دلیل تجزیه­پذیری بیشتر و سریعتر، نیتروژن بیشتر، کلات­کنندگی قوی‌تر و نسبت C/N پایین،‌ بقایای لوبیا توانسته اثر بیشتری بر غلظت روی دانه گیاه داشته باشد (Baghbani-Arani et al., 2018). در تحقیقی دیگر، نشان دادند که اختلاط بقایای گیاهی (سورگوم، آفتابگردان، گلرنگ، لوبیای چیتی و شبدر به مقدار هشت تن در هکتار) با خاک سبب افزایش عملکرد دانه گندم به مقدار 20 تا100 درصد در رقم بک­کراس روشن و 10 تا 88 درصد در رقم کویر در مقایسه با شاهد شد (Dorostkar et al., 2012). بقایای گیاهی با افزایش ماده آلی خاک، بهبود رشد ریشه و افزایش قابلیت جذب عناصر کم­نیاز و پر نیاز خاک سبب افزایش عملکرد در گیاهان می‌شوند (Alberta, 1995). همچنین نتایج مطالعات گوناگون نشان می‌دهد که اثر بقایای گیاهی بر عملکرد گیاه، بسته به شرایط محیطی و کیفیت بقایا متفاوت است (Khoshgoftarmanesh et al., 2010). همچنین گزارش شده‌است که بقایای شبدر نسبت به سورگوم و گلرنگ به‌علت آزادسازی بیشتر نیتروژن و رشد بهتر ریشه سبب افزایش معنی‌دار عملکرد دانه گندم نسبت به سایر تیمارها شد (Dorostkar et al., 2012).

همچنین در مطابقت با نتایج این تحقیق، کاکماک (Cakmak, 2008) طی مطالعه‌ای روی مصرف 23 کیلوگرم کود حاوی روی نشان داد که عملکرد دانه گندم به‌طور معنی‌داری افزایش می‌یابد. در تحقیقی دیگر، نشان دادند که تلقیح با قارچ مایکوریزا در شرایط دیم، احتمالا از طریق افزایش طول ریشه، موجب افزایش جذب آب و عملکرد دانه گندم دوروم و کاهش مصرف کود شیمیایی فسفر شد (Naserirad et al., 2021). در مطالعه‌ای با هدف تجزیه و تحلیل تأثیر قارچ مایکوریزا روی تثبیت و انتقال نیتروژن تثبیت­شده از باقلا به گندم در کشت مخلوط، مشاهده شد که کاربرد قارچ مایکوریزا موجب افزایش نیتروژن و عملکرد دانه گندم شد. در این مطالعه گزارش شد که هر چه میزان تلقیح با قارچ مایکوریزا بیشتر باشد، میزان نیتروژن تثبیت­شده توسط باقلا و میزان نیتروژن انتقال­یافته از باقلا به گندم افزایش می‌یابد (Wahbi et al., 2016). ناصری و همکاران (Naseri et al., 2017) در تحقیقی گزارش کردند که باکتری‌های حل­کننده فسفات و مایکوریزا اثر مثبت و معنی‌‌داری بر تجمع مواد غذایی در اندام‌های مختلف گندم در شرایط دیم نسبت به شرایط شاهد و تیمار صددرصد کود شیمیایی داشتند که این امر در نهایت منجر به افزایش عملکرد گندم دیم در منطقه ایلام می‌شود.

 

 

جدول 2. عملکرد دانه و زیستی، شاخص برداشت و مقدار بقایای گیاهی در تناوب.

 

Biological yield (Kg.ha-1)

Seed yield

(Kg.ha-1)

Harvest index

%

The amount of residues left in the soil (Kg.ha-1)

Crop

 

2016-17

2018-19

2016-17

2018-19

2016-17

2018-19

2016-17

2018-19

Year

 

4360

7310

1240

2410

33

33

-

4090

Wheat

 

400

3470

-

902

-

26

-

2568

Canola

 

2530

5570

830

1782

31

32

-

3788

Vicia

 

2070

2650

745

874

36

33

-

1775

Lentil

                   

 

 

 

جدول 3. تجزیه واریانس صفات کمی و کیفی گندم تحت تیمارهای آزمایش.

Spike weight

Zinc concentration of seed

phosphorus concentration of seed

1000-seed weight

Biological yield

Seed yield

df

S.0.V.

3306

1.9

0.000

0.407

2.42

0.008

2

Block

603823**

172.66**

0.003**

98.55**

12.67**

2.148**

3

Rotation (R)

4951

10.40

0.000

0.923

0.367

0.039

6

Ea

927130**

65.94*

0.011**

67.92**

25.97

2.448**

1

Mycorrhiza (M)

22012

17.41

0.001**

3.35**

0.30

0.070

3

R×M

169100**

941.01**

0.000

59.80**

2.56*

0.832**

1

Zinc sulfate (Z)

4059

9.32

0.000

1.96*

0.149

0.032

3

R*Z

75446*

31.68

0.000

8.58**

2.90*

0.295*

1

M*Z

4655

6.37

0.000

0.266

0.165

0.000

3

R*M*Z

13338

16.14

0.000

0.678

0.387

0.031

24

Eb

1.20

2.85

0.1

1.1

19.51

16.1

 

C.V

*Significant at the 0.05 probability levels.,**Significant at the 0.01 probability levels.

 

جدول 4. مقایسه میانگین اثر تناوب بر عملکرد کمی و کیفی گندم.

Spike weight per plant

(mg)

Zinc concentration of seed

(%)

Biological yield

((t.ha-1)

Seed yield

(t.ha-1)

Rotation (R)

3090a

47.15a

12.61a

4.52a

Vicia-Wheat

2802b

43.06b

10.83b

3.76b

Wheat-Wheat

2541c

41.08b

10.24c

3.56c

Canola-Wheat

2824b

49.4a

10.82b

3.78b

Lentil-Wheat

* میانگین­های دارای حروف مشترک در هر ستون، بر اساس آزمون LSD در سطح احتمال پنج درصد تفاوت معنی­دار ندارد.

 

2-3. وزن هزاردانه و وزن سنبله

جدول تجزیه واریانس نشان داد که وزن هزار دانه و وزن سنبله تحت تاثیر اثر ساده تناوب، مایکوریزا و سولفات روی و اثر برهمکنش مایکوریزا و سولفات روی قرار گرفتند و علاوه بر این، اثر برهمکنش تناوب و مایکوریزا بر وزن هزار دانه نیز معنی‌دار شد (جدول 3). در رابطه با برهمکنش مایکوریزا و سولفات روی مشاهده شد که کاربرد سولفات روی در حضور یا عدم حضور مایکوریزا موجب افزایش وزن هزار دانه و وزن سنبله شد؛ به‌گونه‌ای­که در شرایط کاربرد و بدون کاربرد مایکوریزا سبب افزایش (43/8 و 9/2 درصدی) وزن هزار دانه و (41/7 و 35/1) درصدی وزن سنبله شد و تاثیر این افزایش در شرایط عدم وجود مایکوریزا محسوس‌تر بود (جدول 5). همچنین به‌ترتیب کاربرد سولفات روی و یا مایکوریزا در همه الگوهای تناوبی، سبب افزایش عملکرد دانه شد و بالاترین وزن هزار دانه مربوط به تناوب با ماشک و پس از آن تناوب با عدس قرار داشت (جداول 6 و 7). در این راستا، به‌ترتیب بیشترین و کمترین وزن سنبله، در تناوب گندم با ماشک و گندم با کلزا مشاهده شد (جدول 4) و علاوه­بر­این، کاربرد مایکوریزا و یا سولفات روی، سبب افزایش حدود 10 و چهار درصدی وزن سنبله گندم شد (جداول 8 و 9). 

برگرداندن بقایای گیاهی در خاک به افزایش فعالیت‌های بیولوژیکی، افزایش محتوای کربن آلی خاک، بهبود ویژگی‌های فیزیکی و بهبود دسترسی به مواد غذایی در کشت متعاقب منجر می‌شود (Cayuela et al., 2009). استفاده از انواع مختلفی از بقایای گیاهی و مقادیر متفاوتی از آنها یکی از ابزارهایی است که به حداکثر بهره‌گیری از این بقایا کمک می‌کند (Abiven et al., 2005). افزودن بقایای کلزا به خاک به سبب نسبت‌های بالای N:C و S:C موجب افزایش قابل توجه منابع سولفات و نیز فعالیت‌های میکروبی مرتبط با جذب سولفور در خاک می‌شود که در تامین نیازهای کشت بعدی به­ویژه در خاک‌های دچار کمبود این عناصر موثر هستند (Singh et al., 2004). در رابطه با تاثیر بقایای گندم بر کشت بعدی گندم تحت شرایط دیم، امام و همکاران (Imam et al., 2010) بیان داشتند که حفظ کاه و کلش گندم همراه با سیستم خاکورزی حداقل به افزایش عملکرد و وزن هزار دانه کشت بعدی منجر می‌شود. بهره‌گیری از لگوم‌ها در تناوب با غلات، موجبات کاهش نیاز به مصرف کودهای شیمیایی و افزایش عملکرد غلات را فراهم می‌کند (Dayegamiye et al., 2012) که به نوبه خود فواید قابل توجه اقتصادی و زیست­محیطی را در بردارد. افزون بر اثر لگوم‌ها در تامین نیتروژن مورد نیاز غلات، این گیاهان موجب بهبود وضعیت رطوبتی خاک، افزایش کارایی مصرف آب، افزایش دسترسی به عناصر غذایی، کنترل علف‌های هرز و شکستن چرخه زندگی آفات می­شوند. نیتروژن تثبیت­شده توسط لگوم‌ها در بقایای آنها معدنی شده و قابل استفاده برای کشت بعدی می‌باشند. بهره‌برداری از این نیتروژن به میزان برگشت بقایا به خاک و سرعت تجزیه بقایا بستگی دارد. سرعت تجزیه این بقایا به ترکیب شیمیایی آنها و به­ویژه نسبت C/N، محتوای پلی­فنول، لیگنین و نیتروژن، شرایط اقلیمی و خاک بستگی دارد (Dayegamiye et al., 2015).

ماشک نیز به‌دلیل تولید ماده خشک زیاد و نیز توانایی بالای تثبیت نیتروژن، گزینه مناسبی برای قرار گرفتن در تناوب با غلات و استفاده از بقایای آن جهت افزایش باروری خاک می‌باشد (Griffin et al., 2000; Heydarpour et al., 2018). در زمینه تاثیر کاربرد بقایای گیاهی به عنوان منبع تامین­کننده عناصر ضروری پرمصرف و کم­مصرف گندم گزارش‌هایی ارائه شده است. اکبری و همکاران (Akbari et al., 2013) بیان داشتند که بقایای یونجه به‌عنوان یک لگوم در مقایسه با بقایای گونه‌های غیر لگوم شامل پنبه و ذرت تاثیر بهتری در تامین پتاسیم مورد نیاز گندم دارد. همچنین گزارش شده است که کاربرد بقایای گیاهی سورگوم با افزایش معنی‌دار غلظت روی دانه گندم در رقم‌های کارامد از لحاظ جذب روی و نیز غیر کارامد از این نظر همراه می‌باشد (Dorostkar et al., 2012).

علاوه­براین، گزارش شد که استفاده از قارچ مایکوریزا باعث افزایش قابل توجه اجزای عملکرد دانه و تعداد سنبلچه گندم شد (Bahrani et al., 2010). همچنین، ضیائیان و ملکوتی (Ziaian & Malkouti, 1999) مشاهده کردند که در اثر مصرف روی و آهن، عملکرد دانه گندم و اجزای آن (وزن هزار دانه و تعداد دانه در سنبله) به­طور معنی‌داری افزایش یافت.

3-3. عملکرد بیولوژیکی

بر اساس نتایج تجزیه واریانس، اثر ساده هر سه فاکتور تناوب، مایکوریزا و سولفات روی و همچنین اثر برهمکنش مایکوریزا و سولفات روی نیز در سطح احتمال پنج درصد بر عملکرد زیستی معنی‌دار بود (جدول 3). اثر تناوب بر عملکرد زیستی نیز الگوی مشابهی با عملکرد دانه داشت؛ به­نحوی‌که به‌ترتیب بالاترین و کمترین عملکرد زیستی گندم در تناوب با ماشک و با کلزا به­دست آمد (جدول 4). با توجه به مقدار بسیار قابل توجه بارش در طی فصل رشد (بیش از 760 میلی‌متر) و نیز پراکنش مناسب بارش‌ها (شکل 1، سال 98-97)، عملکرد حاصل­شده در مقیاس دیم بسیار قابل توجه بود؛ به­نحوی‌که میانگین کل عملکرد زیستی حدود 11 تن بود که در کشت دیم بسیار قابل توجه است. در رابطه با برهمکنش مایکوریزا و سولفات روی (جدول 5)، مقایسه میانگین‌ها نشان داد که در شرایط عدم همزیستی مایکوریزایی، کاربرد سولفات روی با افزایش (75/8 درصدی) معنی‌دار عملکرد زیستی همراه شد؛ اما با کاربرد مایکوریزا به‌عنوان نهاده زیستی، کاربرد سولفات روی، منجر به ایجاد تفاوت معنی‌داری نشد. در مجموع، با کاربرد مایکوریزا صرف نظر از کاربرد یا عدم کاربرد سولفات روی عملکرد زیستی بالاتری حاصل شد (جدول 5).

 

جدول 5. مقایسه میانگین اثر برهمکنش مایکوریزا و سولفات روی بر صفات کمی گندم.

 

Spike weight per plant

(mg)

1000-seed weight

(g)

Biological yield

(t.ha-1)

Seed yield

(t.ha-1)

Zinc sulfate

Mycorrhiza

2576c

29.10c

9.91c

3.47c

0

Control

2774b

31.78b

10.86b

3.89b

40

2933a

32.35b

11.87a

4.08a

0

Mycorrhiza

2973a

33.31a

11.82a

4.19a

40

* میانگین­های دارای حروف مشترک در هر ستون، بر اساس آزمون LSD در سطح احتمال پنج درصد تفاوت معنی­داری با هم ندارند.

 

 

جدول 6. مقایسه میانگین اثر برهمکنش تناوب زراعی و سولفات روی بر وزن هزار دانه.

 

 

1000-seed weight

(g)

Zinc sulfate

Rotation (R)

 

 

32.25c

0

Vicia-Wheat

 

 

34.8a

40

 

 

29.8e

0

Wheat-Wheat

 

 

31.55c

40

 

 

29.51e

0

Canola-Wheat

 

 

30.25de

40

 

 

31.28cd

0

Lentil-Wheat

 

 

33.6b

40

 

 

* میانگین­های دارای حروف مشترک در هر ستون، بر اساس آزمون LSD در سطح احتمال پنج درصد تفاوت معنی­داری ندارند.

 

 

 

 

                 

 

جدول 7. مقایسه میانگین اثر برهمکنش تناوب و مایکوریزا بر صفات کمی و کیفی گندم.

phosphorus concentration of seed

(%)

1000-seed weight

(g)

Mycorrhiza

Rotation (R)

0.118bc

31.85c

Control

Vicia-Wheat

0.159a

35.2a

Mycorrhiza

0.096e

29.47e

Control

Wheat-Wheat

0.126b

31.88c

Mycorrhiza

0.102de

29.43e

Control

Canola-Wheat

0.11cd

30.33de

Mycorrhiza

0.111cd

31.02cd

Control

Lentil-Wheat

0.15a

33.87b

Mycorrhiza

* میانگین­های دارای حروف مشترک در هر ستون، بر اساس آزمون LSD در سطح احتمال پنج درصد تفاوت معنی­داری ندارند.

 

 

در تحقیقی که به ارزیابی کاشت بقولات به‌عنوان گیاهان جایگزین در نظام زراعی آیش-گندم در استان خراسان شمالی در شرایط دیم می‌پرداخت گزارش شد که بیشترین میزان عملکرد دانه و عملکرد بیولوژیکی آن در شرایط آیش – گندم و پس از آن در تناوب ماشک و عدس و در نهایت در تناوب نخود و یونجه به­دست آمد؛ در­حالی‌که عملکرد گندم، در شرایط گندم – گندم کاهش یافت و لذا بـه‌نظـر مـی‌رسـد هرچند نظام زراعی گندم- گندم ممکـن اسـت تا حـدی سـبب بهبود درآمد کشاورز شـود، ولـی در درازمـدت سـبب کـاهش عملکرد گندم خواهد شد. در مقابـل، کشـت بقـولات بـه‌ویـژه عــدس و ماشــک منجــر بــه تولیــد بیومــاس و عملکــرد قابل مقایسه‌ای نسبت به تیمار گندم و آیش شد و لذا پیشنهاد می‌شود این محصولات می‌تواننـد بـه‌عنـوان گیاهـان منتخب جهت جایگزینی آیش در این منطقه مـد نظـر باشـند (Nezami et al., 2013). نتـایج حاصله در سایر مناطق دنیـا نیـز حـاکی از جـایگزینی برخـی بقولات علوفه‌ای مانند نوعی ماشـک در سیسـتم‌هـای تنـاوبی می‌باشد
 (Schlegel & Havlin, 1997; Heydarpour et al., 2018). همچنین در مطابقت کامل با نتایج این تحقیق گزارش شد که افزودن بقایای گیـاهی (لوبیا و گندم) بـه خـاک باعـث افـزایش معنـی‌دار وزن شاخساره گندم شـد. اخـتلاط بقایـای لوبیـا بـا خـاک و بقایای لوبیـا + سـولفات روی بـیشتـرین تـأثیر را روی وزن شاخساره گندم داشت و آن را تا حدود یک تـن در هکتار نسبت به شاهد افزایش داد، به نظـر مـی‌رسـد کـه افزودن مقدار بیشتر نیتروژن بـه خـاک توسـط بقایـای لوبیــا و C/N کمتــر بقایــای لوبیــا باعــث افــزایش وزن شاخســاره گنــدم شــده ‌اســت (Baghbani- Arani et al., 2018). همچنین تــان (Tan, 1998) افزایش عملکرد گندم بر اثر مصرف روی، آهن و منگنز را در مقایسه با عـدم مصـرف آن به­ترتیـب 860 ،780 و 540 کیلوگرم در هکتار گـزارش کـرده اسـت.

در تحقیقی نیز گزارش شد که تلقیح با مایکوریزا در شرایط دیم سبب افزایش عملکرد زیستی گندم دوروم شد. به­طور کلی، ساز و کار جذب آب و عناصر غذایی در گیاهان همزیست با مایکوریزا از طریق افزایش سطح تماس با توده خاک توسط هیف‌ها قارچ، یا به­عبارت دیگر از طریق افزایش طول موثر ریشه است (Naserirad et al., 2021).

در مطابقت با نتایج این تحقیق، خاقانی (Khaghani, 2016) با مطالعه­ای روی گیاه جو نشان داد که اثر ساده کاربرد مایکوریزا، آهن و روی بر عملکرد زیستی جو معنی‌‌دار شد؛ به‌گونه‌ای­که بالاترین میزان این صفت در تیمارهای مصرف قارچ مایکوریزا، مصرف پنج کیلوگرم در هکتار آهن و 50 کیلوگرم روی در هکتار به‌دست آمد. وی بیان داشت افزایش فتوسنتز و همچنین افزایش هورمون رشد ناشی از مصرف قارچ و از سوی دیگر افزایش مواد مغذی در بافت‌های گیاهی سبب افزایش عملکرد زیستی گیاه می­شود.

4-3. غلظت فسفر دانه

نتایج تجزیه واریانش نشان داد که اثرهای ساده تناوب و همزیستی مایکوریزایی و همچنین برهمکنش آنها بر غلظت فسفر دانه معنی‌دار شد (جدول 3). بالاترین غلظت فسفر دانه در تناوب با عدس و ماشک به­عنوان دو لگوم و در حضور همزیستی مایکوریزایی به­دست آمد. در هر دو تناوب ماشک و عدس، مایکوریزا موجب افزایش چشمگیر و معنی‌دار غلظت فسفر دانه شد. در کشت متوالی گندم نیز، مایکوریزا موجب افزایش معنی‌دار غلظت فسفر دانه شد. در مورد تناوب با کلزا، همزیستی مایکوریزایی با وجود افزایش نسبی، تاثیر معنی‌داری بر غلظت فسفر دانه نداشت (جدول 7). با توجه به واکنش قلیایی خاک محل آزمایش به­نظر می‌رسد که همزیستی مایکوریزایی تاثیر قابل توجهی در افزایش قابل دسترسی گندم به فسفر موجود در خاک و بنابراین جذب بیشتر فسفر توسط دانه داشته است.

گزارش شده است که در یک نظام مایکوریزایی، طول موثر ریشه ممکن است تا 100 برابر افزایش یابد
 (McGonigle & Miller, 1999). از آن­جایی‌که فسفر کمترین تحرک را در بین عناصر غذایی دارد
 (Watts-Williams et al., 2013)، بنابراین، به­نظر می‌رسد مایکوریزا می‌تواند از طریق افزایش سطح جذب ریشه کارایی جذب فسفر در گیاه را نیز افزایش داده و از این طریق در بهبود رشد و افزایش عملکرد گندم موثر واقع شود. با این وجود در برخی موارد گزارش شده است که افزایش بیش از حد کاربرد فسفر در خاک باعث کاهش کلونیزاسیون مایکوریزا با ریشه گیاهان میزبان می‌شود (Watts-Williams et al., 2013). در رابطه با تاثیرپذیری همزیستی مایکوریزایی از بقایای گیاهی و بالعکس، مطالعات محدودی انجام پذیرفته ‌است. به‌طور کلی مشخص شده‌است که کاربرد فسفر معدنی موجب کاهش کلونیزاسیون مایکوریزایی در ریشه گیاهان می‌شود. اثرپذیری کلونیزاسیون مایکوریزایی از فسفر معدنی را به وجود یا عدم وجود بقایای گیاهی مربوط دانسته‌اند. در این خصوص، گزارش کردند که در حضور بقایای باقلا و نخود، کاربرد فسفر معدنی به فرم کودی، تاثیر بازدارنده بر همزیستی مایکوریزایی با ریشه گندم بر جای نمی‌گذارد (Hasbullah et al., 2011). در این راستا، بیان شده است که استفاده از بقایای گیاه لگوم لوپن با افزایش قابل توجه در میزان کلونیزاسیون ریشه گندم توسط قارچ مایکوریزا همراه است (Borie et al., 2002). در تحقیقی گزارش شد که میزان فیتیک دانه گندم که همبستگی مثبتی با میزان فسفر دانه گندم دارد تحت تاثیر کاربرد بقایای گیاهی قبل از کشت گندم قرار گرفت؛ به­گونه‌ای­که گیاهان لگوم (لوبیا و شبدر) نسبت به سورگوم، آفتابگردان و گلرنگ میزان اسید­فیتیک دانه بیشتری تولید کردند و علت آن را بیشتر بودن میزان فسفر موجود در بقایای لوبیا نسبت به سایر تیمارها گزارش کردند
 (Dorostkar et al., 2012).

5-3. غلظت روی دانه

تجزیه واریانس نشان داد که اثرهای ساده هر یک از فاکتورهای تناوب زراعی، مایکوریزا و سولفات روی بر غلظت روی دانه معنی‌دار بودند (جدول 3). همان‌گونه­که در جدول 4 مشاهده می‌شود وارد کردن دو گونه لگوم عدس و ماشک در تناوب پیش از گندم، با افزایش معنی‌دار غلظت روی دانه در مقایسه با دو الگوی دیگر تناوبی همراه بود. همچنین کاربرد مایکوریزا و سولفات روی سبب افزایش پنج و 18 درصدی غلظت روی دانه شد (جدول­های 8 و 9).

 

جدول 8. مقایسه میانگین اثر مایکوریزا بر وزن سنبله و غلظت روی دانه گندم.

 

Spike weight per plant (mg)

Zinc concentration of seed(%)

Mycorrhiza           

 

2675b

             44.00b

Control

 

2953a

             46.33a

Mycorrhiza

 

* میانگین­های دارای حروف مشترک در هر ستون، بر اساس آزمون LSD در سطح احتمال پنج درصد تفاوت معنی­داری ندارند.

 

 

 

جدول 9. مقایسه میانگین اثر سولفات روی بر وزن سنبله و غلظت روی دانه گندم.

 Spike weight per plant

(mg)

Zinc concentration of seed

(%)

Zinc sulfate

(Kg. ha-1)

2755b

40.7b

0

2874a

49.6a

40

* میانگین­های دارای حروف مشترک در هر ستون، بر اساس آزمون LSD در سطح احتمال پنج درصد تفاوت معنی­داری ندارند.

 

             

کمبــود روی یکــی از متــداول‌تــرین کمبــود ریزمغذی‌ها در محـصولات زراعـی به‌ویژه غـلات و گیاهان مرتعی در سراسر جهان اسـت کـه نتیجـه آن کاهش شـدید عملکـرد و کیفیـت غـذایی محـصولات می‌باشد. بیش از 60 درصد خـاک‌هـای زراعـی ایـران دچار کمبود روی هستند که ایـن باعـث کـاهش 50 درصدی عملکرد محصول شده اسـت. در بـیش از 80 درصد خاک‌های زراعی ایران غلظت روی قابل استفاده از طریق عصاره‌گیری DPTA کمتر از یک میلـی‌گـرم در کیلــوگرم خــاک مــی‌باشــد (Malakouti, 2007). تحقیقات نشان مـی‌دهنـد تلقـیح مـایکوریزایی سـبب افزایش جذب آهن، روی و مس در گیاه جو شده است. همچنین، غلظت روی در بافـت‌هـای گیـاهی در تیمار مصرف مایکوریزا نسبت به تیمار مشابه افـزایش چشمگیری داشـته اسـت. مـایکوریزا در شـرایط کمبـود مـواد مغـذی تـاثیر بـ‌سـزایی روی تولیـد گیـاه دارد (Oyetunji et al., 2004). ریشه‌های مایکـوریزایی، در مقایــسه بــا ریــشه‌هــای غیر مایکــوریزایی میــزان روی بیشتری جـذب مـی‌کننـد
 (Pairunan et al., 1980). در تحقیقی گزارش شد که حضور مایکوریزا غلظت روی را در اندام هوایی بادام­زمینی 25 تا 35 درصد و در اندام زیرزمینی تا 26 تا 37 درصد افزایش داد؛ این افزایش به تخلیه بیشتر خاک از روی بر اثر نفوذ ریسه‌های نازک قارچی در حفرات ریز خاک نسبت داده شد (Aghababai et al., 2011). همزیستی مایکوریزایی می‌تواند با افزایش طول ریشه‌ها و همچنین افزایش سطح جذب توسط ریشه‌های قارچی، جذب عناصر غیر متحرک از جمله روی را در گندم افزایش دهد
 (Kothari et al., 1991).

در تحقیقی گزارش شد که تأثیر کاربرد بقایای گیاهی به‌همراه سولفات روی و سولفات روی به‌تنهایی بر میزان غلظت روی دانه گندم معنی‌دار شد؛ به­گونه‌ای­که کاربرد بقایای گیاهی با سولفات روی، باعث افزایش بیشتر جذب روی نسبت به کاربرد بقایای گیاهی تنها شد و در مقایسه با شاهد (بدون بقایا) افزایش معنی‌داری داشته ‌است؛ به‌طوری‌که بیشترین افزایش غلظت روی دانه گندم در تیمار کاربرد بقایای لوبیا + سولفات روی (36 میلی‌گرم در کیلوگرم) دیده شد. همچنین این تأثیر در تیمار بقایای مختلف (بقایای گندم در مقایسه با بقایای لوبیا) متفاوت بود؛ به‌طوری‌که تیمار بقایای لوبیا غلظت روی دانه گندم را بیش از تیمار بقایای گندم افزایش داد (Baghbani- Arani et al., 2018).

تحقیقات نشان داده ‌است غلظت فلزات مس و روی در دانه گندم با به­کار بردن مواد آلی در خاک، صرف ‌نظر از نوع ماده آلی، افزایش یافت. این افزایش می‌تواند دلالت بر این داشته باشد که وقتی فلزات توسط ریشه جذب شدند، به­راحتی از ساقه به دانه انتقال داده می‌شوند (Narwal & Singh, 1998). بقایای گیاهی به‌دلیل اثرات مثبتی که بر پراکنش ریشه، رشد گیاه و ... دارند، می‌توانkد بر جذب روی توسط گیاه اثرگذار باشند (Alberta, 1995). همچنین تیمار سولفات روی نسبت به شاهد در غلظت روی دانه افزایش معنی‌داری داشت. محققان همبستگی معنی‌داری بین مقدار عنصر روی در خاک با مقدار روی در دانه گندم گزارش کردند
 (Bansal et al., 1990). با این وجود در همه تیمارهای مورد بررسی در این آزمایش میزان غلظت روی در دانه کمتر از 50 میلی‌گرم در کیلوگرم بوده ‌است که این میزان غلظت روی به‌عنوان حد بحرانی برای کیفیت دانه بود (Cakmak, 2008). احتمالاً عدم رسیدن به حد مطلوب غلظت روی در دانه گندم به‌دلیل کم­بودن غلظت اولیه روی در خاک به‌دلیل pH قلیایی خاک می­باشد که در ارتباط با همین موضوع محققان گزارش کرده‌اند که مهمترین عامل تعیین­کننده غلظت روی در دانه، غلظت اولیه این عنصر در خاک می‌باشد (Wissuma et al., 2007).

ییلماز و همکاران (Yilmaz et al., 1997) با استفاده از روش‌های مختلف مصرف سولفات روی در ارقام مختلف گندم مشاهده کردند که مصرف سولفات روی نه تنها عملکرد را به میزان قابل توجهی افزایش می‌دهد، بلکه غلظت این عنصر در دانه گندم هم افزایش یافته و سبب غنی­شدن دانه می‌شود. همچنین سدری و ملکوتی (Sadri & Malakouti, 1999) مشاهده کردند در مناطقی که روی قابل جذب خاک، کمتر از 1/1 میلی‌گرم بر کیلوگرم بود، مصرف سولفات روی به میزان 40 کیلوگرم در هکتار تأثیر معنی‌داری بر عملکرد دانه گندم داشت؛ به‌طوری‌که با مصرف این کود به‌طور میانگین 445 کیلوگرم افزایش عملکرد به‌دست آمد. همچنین در تحقیقی گزارش شد که کاربرد سولفات روی در خاک بر عملکرد دانه و غلظت روی دانه گندم معنی‌دار شد و در تیمارهایی که بقایای گیاهی به­همراه سولفات روی به خاک اضافه شده بود، افزایش معنی‌داری در صفات مذکور نسبت به شاهد و تیمارهای بقایای گیاهی و سولفات روی تنها داشت و هم‌راستا با نتایج این تحقیق، بیان کردند که کاربرد عنصر روی به همراه بقایای گیاهی (خصوصا یونجه و شبدر) می‌تواند باعث افزایش بیشتر غلظت روی و پارامترهای کیفی دانه گندم شود
 (Baghbani Arani et al., 2018). در این تحقیق نیز، بالاترین درصد روی دانه در تیمارهایی که در تناوب بقولات (عدس و ماشک) قرار داشتند مشاهده شد. به­نظر می‌رسد روی کلات­شده با بقایای گیاهی به­جای­مانده در تناوب، نقش موثرتری در جذب روی توسط گیاه دارد و همچنین بقایای گیاهی بقولات خصوصا عدس به­دلیل تجزیه­پذیری و کلات­کنندگی بیشتر روی و اثرات مثبت در پراکنش ریشه، رشد گیاه و ... توانسته در جذب روی توسط گیاه اثرگذارتر باشد (Alberta, 1995).

 

  1. نتیجه­گیری

در پژوهش حاضر، بالاترین عملکرد گندم در تناوب با ماشک و در حضور همزیستی مایکوریزایی به­دست آمد. با کاربرد مایکوریزا به‌عنوان نهاده زیستی نیاز به کاربرد کودهای شیمیایی تا حد قابل توجهی برطرف شده و گندم واجد همزیستی مایکوریزایی، عملکرد بالاتری را تولید کرد. در همه الگوهای تناوبی مایکوریزا با افزایش عملکرد همراه بود. در مجموع بالاترین عملکرد کمی و کیفی در تناوب ماشک-گندم با اعمال همزیستی مایکوریزایی به­دست آمد. بالاترین غلظت فسفر دانه در تناوب با عدس و ماشک و در حضور همزیستی مایکوریزایی مشاهده شد. در هر دو تناوب ماشک و عدس، مایکوریزا موجب افزایش چشمگیر غلظت فسفر دانه شد. همچنین کشت دو گونه لگوم عدس و ماشک در تناوب پیش از گندم، موجب افزایش غلظت روی دانه در مقایسه با دو الگوی دیگر تناوبی (کشت متوالی گندم و تناوب کلزا-گندم) شد. مایکوریزا و سولفات روی هر کدام موجب افزایش غلظت روی دانه شدند (میانگین غلظت روی در تیمارهای دارای سولفات روی 6/49 میلی‌گرم بود که در مقایسه با 7/40 میلی‌گرم در تیمارهای بدون سولفات روی، تفاوت چشمگیری را نشان می‌دهد. میانگین غلظت روی در تیمارهای مایکوریزایی حدود 47 میلی‌گرم بود که در مقایسه با 44 میلی‌گرم در تیمارهای بدون مایکوریزا، سطحی از افزایش را نشان می‌دهد). با توجه به اثرگذاری جامع‌تر مایکوریزا در زمینه افزایش عملکرد دانه، غلظت فسفر دانه و نیز تاثیر نسبی در افزایش غلظت روی دانه، مایکوریزا تا حد زیادی نیاز به کاربرد سولفات روی (خاک­مصرف) را از میان می‌برد. در مجموع، اجرای الگوی تناوبی ماشک-گندم و در وهله بعدی عدس –گندم همراه با کاربرد مایکوریزا در هنگام کاشت به‌عنوان الگوی موثر از نظر عملکرد کمی و کیفی با کمترین کاربرد نهاده­های شیمیایی، قابل پیشنهاد می‌باشد. همچنین بقایایی گیاهی لگوم (ماشک و عدس) نسبت به دو گونه دیگر (گندم و کلزا)، نقش موثرتری بر رشد و عملکرد و همچنین غلظت عناصر غذایی در گیاه گندم داشته است و بقایایی با سرعت تجزیه­پذیری بیشتر مانند لگوم می‌تواند در مدت زمان کمتری تاثیر خود را نشان دهد و برای گیاهانی با دوره رشد کمتر (مثلا شرایط دیم) باید از بقایای با سرعت تجزیه­پذیری بالا استفاده کرد.

 

  1. منابع

Abiven, S., Recous, S., Reyes, V., & Oliver, R. (2005). Mineralisation of C and N from root, stem and leaf residues in soil and role of their biochemical quality. Biology and Fertility of Soils, 42, 119–128.

Aghababai, F., Raisi, F., & Nadian, H.A. (2011). The effect of mycorrhizal symbiosis on nutrient absorption by some commercial genotypes of almond plant in a sandy loam soil. Journal of Soil Research (Soil and Water Sciences), 25(2), 136-147. (In Persian).

Akbari, F., Puri, K., Kamkar, B., & Aalimaqam, M. (2013). The effect of wheat, alfalfa, corn, soybean and cotton residues on soil potassium content and its absorption in wheat. Journal of Agricultural Ecology, 3, 163-171. (In Persian).

Alberta, E. (1995). Stubble burning. Columbia Basin Agricultural Research. Annual Report, Pp. l05- 109.

Alizadeh, A., Majidi, A., & Normohamadi, G. (2008(. Effect drought stress and soil nitrogen on nutrient uptake in zea (704 cv). Journal Research in Agriculture, 4, 51-59.

Baghbani Arani, A., Modares Sanavi, S.A.M., Kadkhodai, A., & Mohammadi, M. (2018). Effect of wheat (Triticum aestivum L.) and bean (Phaseolus vulgaris L.) residues and zinc sulfate application on yield and some chemical characteristics of wheat grain. Plant Production Technology, 19(1), 67-78. (In Persian).

Bahrani, A., Pourreza, J., & Haghjoo, M. (2010). Response of winter wheat to co-inoculation with azotobacter and arbascular mycorrhizal fungi (AMF) under different sources of nitrogen fertilizer. American-Eurasian Journal Agriculture and Environment Science, 8(1), 95-103.

Bansal, R.L., Taklear, P.N., Bhandari, A.l., & Rana, D.S. (1990). Critical levels of DTPA extractable Zn for wheat in alkaline soils of semiarid region of Punjab, India. Fertilizer Research, 21(3), 163-170.

Borie, F., Redel, Y., Rubio, R., Rouanet, J.L., & Barea, J.M. (2002). Interactions between crop residues application and mycorrhizal developments and some soil–root interface properties and mineral acquisition by plants in an acidic soil. Biology and Fertility of Soils, 36, 151–160.

Broadley, M.R., White, P.J., Hammond, J.P., Zelko, I., & Lux, A. (2007). Zinc in plants. New Phytologist Journal. 173, 677-702.

Cakmak, I. (2008). Enrichment of cereal grains with zinc: Agronomic or genetic biofortification? Plant Soil, 302, 1-17.

Cakmak, I., Pfeiffer, W.H., & McClafferty, B. (2010). Biofortification of durum wheat with zinc and iron. Cereal Chemistry, 87, 10–20.

Cavagnaro, T.R., Langley, A.J., Jackson, L.E., Smukler, S.M., & Koch, G.W. (2008). Growth, nutrition, and soil respiration of a mycorrhiza-defective tomato mutant and its mycorrhizal wild-type progenitor. Functional Plant Biology, 35, 228-235.

Cayuela, M.L., Sinicco, T., & Mondini, V. (2009). Mineralization dynamics and biochemical properties during initial decomposition of plant and animal residues in soil. Applied Soil Ecology, 48, 118–127.

Dayegamiye, A., Nyiraneza, J., Whalen, J.K., Grenier, M., & Drapea, A. (2012). Growing soybean prior to corn increased soil nitrogen supply and N fertilizer efficiency for corn in cold and humid conditions of Eastern Canada. Sustainable Agriculture Research, 1, 257–267

Dayegamiye, A., Joann, K., Whalen, J.K., Tremblay, G., Judith, Nyiraneza, J., Grenier, M., Drapeau, A., & Bipfubusa, M. (2015).The benefits of legume crops on corn and wheat yield, nitrogen nutrition, and soil properties improvement. Agronomy Journal, 107, 1653–1665.

Dorostkar, V., Efioni, M., & Khoshgovarmanesh, A.M. (2012). Effect of application of some pre-sowing plant residues on total and absorbable zinc concentration and acidphytic concentration in wheat grain. Journal of Agricultural Sciences and Techniques and Natural Resources, 64, 81-93. (In Persian).

FAO (2017). FAOSTAT, Food and agriculture organization. Rome.

Griffin, T., Liebman, M., & Jemison, J. (2000). Cover crops for sweet corn production in a short-season environment. Agronomy Journal, 92, 144–151.

Hacisalihoglu, G., & Kochian, L.V. (2003). How do some plants tolerate low levels of soil zinc? Mechanisms of zinc efficiency in crop plants. New Phytologist Journal, 159, 341-350.

Hasbullah, Marschner, P., & McNeill, A. (2011). Legume residue influence arbuscular mycorrhizal colonisation and P uptake by wheat. Biology and Fertility of Soils, 47, 701–707.

Heydarpour, N., Namdari, A., & Baghbani-Arani, A. (2018). Evaluation of quantitative yield and some physical properties of soil in three years mixed barley (Khorram)-vetch forage (Vicia sativa) cropping system under rain-fed conditions. Journal of Agricultural Knowledge and Sustainable Production, 28(4), 1-13. (In Persian).

Imam, Y., Ahmadi, A., & Pasrak Lee, M. (2010). The effect of different tillage methods combined with the management of plant residues and nitrogen levels on the yield and yield components of rainfed wheat (Augusta number) in the conditions of Fars province. Iranian Crop Science Quarterly, 41, 841-850. (In Persian).

Jansa, J., Mozafar, A., & Frossard, E. (2003). Long-distance transport of P and Zn through the hyphae of an arbuscular mycorrhizal fungus in symbiosis with maize. Agronomy, 23, 481-488.

Khaghani, S. (2016). The effects of micro elements of iron and zinc on morphological characteristics of mycorrhized barley (Hordeum vulgare L.). Journal of Crop Ecophysiology, 10(2), 339-352. (In Persian).

Khoshgoftarmanesh, A.H., Schulin, R., Chaney, R.L., Daneshbakhsh, B., & Afyuni, M. (2010). Micro nutrient efficient genotypes for crop yield and nutritional quality in sustainable agriculture: A review. Agronomy for Sustainable Development, 30, 83-107.

Kothari, S.K., Marschner, H., & Romheld, V. (1991). Contribution of the VA mycorrhizal hyphae in acquisition of phosphorus and zinc by maize grown in a calcareous soil. Plant and Soil, 131, 177–185.

Lopez-Bellido, L., Lopez-Bellido, R.J., Castillo, J.E., & Lopez-Bellido, F.J. (2001). .Effects of long-term tillage, crop rotation and nitrogen fertilization on bread-making quality of hard red spring wheat. Field Crops Research, 72, 197–210.

Malakouti, M.J. (2007). Zinc is a neglected element in the life cycle of plants. Middle Eastern and Russian Journal of Plant Science and Biotechnology, 1(1), 1-12.

McGonigle, T.P., & Miller, M.H. (1999). Winter survival of extraradical hyphae and spores of arbuscular mycorrhizal fungi in the field. Applied Soil Ecology, 12, 41-50.

Mohammad, M.J., Pan, W.L., & Kennedy, A.C. (2005). Chemical alteration of the rhizosphere of the mycorrhizal-colonized wheat root. Mycorrhiza, 15(4), 259–266.

Narwal, R.P., & Singh, B.R. (1998). Effect of organic materials on partitioning, extractability and plant uptake of metals in an alum shale soil. Water Air Soil Pollution, 103, 405-421.

Naseri, R., Berari, M., Zare, M.J., Khawazi, K., & Tahasabi, Z. (2017). The effect of phosphate solubilizing bacteria and mycorrhizal fungi on the accumulation of nutrients in the aerial parts of dryland wheat. Journal of Applied Researches of Plant Ecophysiology, 4(2), 1-28. (In Persian).

Naserirad, H., Naseri, R., Mirzeai, A., & Zarei, B. (2021). Study of the effects of phosphorous and mycorrhiza on yield and yield components of durum wheat under rainfed condition. Applied Research in Field Crops, 34(3), 43-68. (In Persian).

Nezami, A., Bagheri, R., Azim-Zadeh, M., Mahmoudi, A., & Bozorgmehi, A. (2013). Evaluation of legumes as substituting crops for fallow in wheat-based rotation on North Khorasan province. Iranian Journal of Pulses Research, 4(1), 21-30. (In Persian).

Ortas, I. (2012). Do maize and pepper plants depend on mycorrhizae in terms of phosphorus and zinc uptake? Journal of Plant Nutrition, 35(11), 1639–1656.

Oyetunji, O.J., IEkanayake, J., Osonubi, O., & Lyasse, O. (2004). Cassava macro- and micronutrient uptake and partitioning in alley cropping as influenced by Glomus spp. in sub-humid tropics and its impact on productivity. The International Institute of Tropical Agriculture.

Pairunan, A.K., Robson, A.D., & Abbott, L.K. (1980). The effectiveness of vesicular arbuscular mycorrhiza in increasing growth and phosphorus uptake of subterranean clover from phosphorus of different solubilities. New Phytologist, 84, 327-338.

Prasad, B. (1999). Conjoint use of fertilizers with organics, crop residues and green manuring for their efficient use in sustainable crop production. Fertilizer Research, 44, 67-73.

Prasad, B., & Sinha, S.K. (1995). Nutrient recycling through crop residues management for sustainable rice and wheat production in calcareous soil. Fertilizer Research, 40, 11-15.

Sadri, M.H., & Malkouti, M.J. (1999). Investigating the effect of iron, zinc and copper consumption in improving the quantitative and qualitative characteristics of blue wheat. Publication of Agricultural Education, 169-189. (In Persian).

Schlegel, A.J., & Havlin, J.L. (1997). Green fallow for the central great plains. Agronomy Journal, 89, 792-767.

Shi, R., Zhang, Y., Chen, X., Sun, Q., Zhang, F., Rcemheld, V., & Zou, C. (2010). Influence of long-term nitrogen fertilization on micronutrient density in grain of winter wheat (Triticum aestivum L.). Journal of Cereal Science, 51, 165–170.

Singh, B., Rengel, Z., & Bowden, J.W. (2004). Canola residues decomposition: The effect of particle size on microbial respiration and cycling of sulphur in a sandy soil. 3rd Australian New Zealand Soils Conference, 5 – 9 December 2004, University of Sydney, Australia.

Smith, F.A., & Smith, S.E. (2011). What is the significance of the arbuscular mycorrhizal colonisation of many economically important crop plants? Plant Soil, 348, 63-79.

Treseder, K. (2013). The extent of mycorrhizal colonization of roots and its influence on plant growth and phosphorus content. Plant Soil, 371, 1–13.

Wahbi, S., Maghraoui, T., Hafidi, M., Sanguim, H., Oufdou, K., & Prin, Y. (2016). Enhanced transfer of biologically fixed N from faba bean to intercropped wheat through mycorrhizal symbiosis. Applied Soil Ecology, 107, 91-98.

Wang, B., & Qiu, Y.L. (2006). Phylogenetic distribution and evolution of mycorrhizas in land plants. Mycorrhiza, 16, 299-363

Watts-Williams, S.J., Patti, A.F., & Cavagnaro, T.R. (2013). Arbuscular mycorrhizas are beneficial under both deficient and toxic soil zinc conditions. Plant Soil, 371, 299–312.

White, P.J., & Broadley, M.R. (2009). Biofortification of crops with seven mineral elements often lacking in human diets e iron, zinc, copper, calcium, magnesium, selenium and iodine. New Phytologist, 182, 49-84.

Wissuma, M., Ismail, A.M., & Graham, R.D. (2007). Rice grain zinc concentrations as affected by genotype, native soil-zinc availability, and zinc fertilization. Plant and Soil, 306, 37-48.

Yilmaz, A., Ekiz, H., Gultekin, I., Torun, B., Karanlik, S., & Cakmak, I. (1998). Effect of seed zinc content on grain yield and zinc concentration of wheat grown in zinc-deficient calcareous soils. Journal of Plant Nutrition, 21, 2257–2264.

Yilmaz, A., Ekiz, H., Torun, B., Guttekin, I., Karanlik, S., Bagci, S.A., & Cakmak, I. (1997). Effect of different zinc application methods on grain yield and zinc concentration in wheat cultivars grown on zinc deficient calcareous soils. Journal of Plant Nutrient, 20, 461-471.

Zhang, Y.Q., Deng, Y., Chen, R.Y., Cui, Z.L., Chen, X.P., Yost, R., Zhang, F.S., & Zou, C.Q. (2012). The reduction in zinc concentration of wheat grain upon increased phosphorus-fertilization and its mitigation by foliar zinc application. Plant Soil, 361, 143-152.

Ziaian, A.H., & Malkouti, M.J. (1999). The effect of iron consumption on wheat production in a number of highly calcareous soils of Fars province. Scientific Research Journal of Soil and Water Research Institute, 12(13), 77-89. (In Persian).

 

Rferences:
Abiven, S., Recous, S., Reyes, V., & Oliver, R. (2005). Mineralisation of C and N from root, stem and leaf residues in soil and role of their biochemical quality. Biology and Fertility of Soils, 42, 119–128.
Aghababai, F., Raisi, F., & Nadian, H.A. (2011). The effect of mycorrhizal symbiosis on nutrient absorption by some commercial genotypes of almond plant in a sandy loam soil. Journal of Soil Research (Soil and Water Sciences), 25(2), 136-147. (In Persian).
Akbari, F., Puri, K., Kamkar, B., & Aalimaqam, M. (2013). The effect of wheat, alfalfa, corn, soybean and cotton residues on soil potassium content and its absorption in wheat. Journal of Agricultural Ecology, 3, 163-171. (In Persian).
Alberta, E. (1995). Stubble burning. Columbia Basin Agricultural Research. Annual Report, Pp. l05- 109.
Alizadeh, A., Majidi, A., & Normohamadi, G. (2008(. Effect drought stress and soil nitrogen on nutrient uptake in zea (704 cv). Journal Research in Agriculture, 4, 51-59.
Baghbani Arani, A., Modares Sanavi, S.A.M., Kadkhodai, A., & Mohammadi, M. (2018). Effect of wheat (Triticum aestivum L.) and bean (Phaseolus vulgaris L.) residues and zinc sulfate application on yield and some chemical characteristics of wheat grain. Plant Production Technology, 19(1), 67-78. (In Persian).
Bahrani, A., Pourreza, J., & Haghjoo, M. (2010). Response of winter wheat to co-inoculation with azotobacter and arbascular mycorrhizal fungi (AMF) under different sources of nitrogen fertilizer. American-Eurasian Journal Agriculture and Environment Science, 8(1), 95-103.
Bansal, R.L., Taklear, P.N., Bhandari, A.l., & Rana, D.S. (1990). Critical levels of DTPA extractable Zn for wheat in alkaline soils of semiarid region of Punjab, India. Fertilizer Research, 21(3), 163-170.
Borie, F., Redel, Y., Rubio, R., Rouanet, J.L., & Barea, J.M. (2002). Interactions between crop residues application and mycorrhizal developments and some soil–root interface properties and mineral acquisition by plants in an acidic soil. Biology and Fertility of Soils, 36, 151–160.
Broadley, M.R., White, P.J., Hammond, J.P., Zelko, I., & Lux, A. (2007). Zinc in plants. New Phytologist Journal. 173, 677-702.
Cakmak, I. (2008). Enrichment of cereal grains with zinc: Agronomic or genetic biofortification? Plant Soil, 302, 1-17.
Cakmak, I., Pfeiffer, W.H., & McClafferty, B. (2010). Biofortification of durum wheat with zinc and iron. Cereal Chemistry, 87, 10–20.
Cavagnaro, T.R., Langley, A.J., Jackson, L.E., Smukler, S.M., & Koch, G.W. (2008). Growth, nutrition, and soil respiration of a mycorrhiza-defective tomato mutant and its mycorrhizal wild-type progenitor. Functional Plant Biology, 35, 228-235.
Cayuela, M.L., Sinicco, T., & Mondini, V. (2009). Mineralization dynamics and biochemical properties during initial decomposition of plant and animal residues in soil. Applied Soil Ecology, 48, 118–127.
Dayegamiye, A., Nyiraneza, J., Whalen, J.K., Grenier, M., & Drapea, A. (2012). Growing soybean prior to corn increased soil nitrogen supply and N fertilizer efficiency for corn in cold and humid conditions of Eastern Canada. Sustainable Agriculture Research, 1, 257–267
Dayegamiye, A., Joann, K., Whalen, J.K., Tremblay, G., Judith, Nyiraneza, J., Grenier, M., Drapeau, A., & Bipfubusa, M. (2015).The benefits of legume crops on corn and wheat yield, nitrogen nutrition, and soil properties improvement. Agronomy Journal, 107, 1653–1665.
Dorostkar, V., Efioni, M., & Khoshgovarmanesh, A.M. (2012). Effect of application of some pre-sowing plant residues on total and absorbable zinc concentration and acidphytic concentration in wheat grain. Journal of Agricultural Sciences and Techniques and Natural Resources, 64, 81-93. (In Persian).
FAO (2017). FAOSTAT, Food and agriculture organization. Rome.
Griffin, T., Liebman, M., & Jemison, J. (2000). Cover crops for sweet corn production in a short-season environment. Agronomy Journal, 92, 144–151.
Hacisalihoglu, G., & Kochian, L.V. (2003). How do some plants tolerate low levels of soil zinc? Mechanisms of zinc efficiency in crop plants. New Phytologist Journal, 159, 341-350.
Hasbullah, Marschner, P., & McNeill, A. (2011). Legume residue influence arbuscular mycorrhizal colonisation and P uptake by wheat. Biology and Fertility of Soils, 47, 701–707.
Heydarpour, N., Namdari, A., & Baghbani-Arani, A. (2018). Evaluation of quantitative yield and some physical properties of soil in three years mixed barley (Khorram)-vetch forage (Vicia sativa) cropping system under rain-fed conditions. Journal of Agricultural Knowledge and Sustainable Production, 28(4), 1-13. (In Persian).
Imam, Y., Ahmadi, A., & Pasrak Lee, M. (2010). The effect of different tillage methods combined with the management of plant residues and nitrogen levels on the yield and yield components of rainfed wheat (Augusta number) in the conditions of Fars province. Iranian Crop Science Quarterly, 41, 841-850. (In Persian).
Jansa, J., Mozafar, A., & Frossard, E. (2003). Long-distance transport of P and Zn through the hyphae of an arbuscular mycorrhizal fungus in symbiosis with maize. Agronomy, 23, 481-488.
Khaghani, S. (2016). The effects of micro elements of iron and zinc on morphological characteristics of mycorrhized barley (Hordeum vulgare L.). Journal of Crop Ecophysiology, 10(2), 339-352. (In Persian).
Khoshgoftarmanesh, A.H., Schulin, R., Chaney, R.L., Daneshbakhsh, B., & Afyuni, M. (2010). Micro nutrient efficient genotypes for crop yield and nutritional quality in sustainable agriculture: A review. Agronomy for Sustainable Development, 30, 83-107.
Kothari, S.K., Marschner, H., & Romheld, V. (1991). Contribution of the VA mycorrhizal hyphae in acquisition of phosphorus and zinc by maize grown in a calcareous soil. Plant and Soil, 131, 177–185.
Lopez-Bellido, L., Lopez-Bellido, R.J., Castillo, J.E., & Lopez-Bellido, F.J. (2001). .Effects of long-term tillage, crop rotation and nitrogen fertilization on bread-making quality of hard red spring wheat. Field Crops Research, 72, 197–210.
Malakouti, M.J. (2007). Zinc is a neglected element in the life cycle of plants. Middle Eastern and Russian Journal of Plant Science and Biotechnology, 1(1), 1-12.
McGonigle, T.P., & Miller, M.H. (1999). Winter survival of extraradical hyphae and spores of arbuscular mycorrhizal fungi in the field. Applied Soil Ecology, 12, 41-50.
Mohammad, M.J., Pan, W.L., & Kennedy, A.C. (2005). Chemical alteration of the rhizosphere of the mycorrhizal-colonized wheat root. Mycorrhiza, 15(4), 259–266.
Narwal, R.P., & Singh, B.R. (1998). Effect of organic materials on partitioning, extractability and plant uptake of metals in an alum shale soil. Water Air Soil Pollution, 103, 405-421.
Naseri, R., Berari, M., Zare, M.J., Khawazi, K., & Tahasabi, Z. (2017). The effect of phosphate solubilizing bacteria and mycorrhizal fungi on the accumulation of nutrients in the aerial parts of dryland wheat. Journal of Applied Researches of Plant Ecophysiology, 4(2), 1-28. (In Persian).
Naserirad, H., Naseri, R., Mirzeai, A., & Zarei, B. (2021). Study of the effects of phosphorous and mycorrhiza on yield and yield components of durum wheat under rainfed condition. Applied Research in Field Crops, 34(3), 43-68. (In Persian).
Nezami, A., Bagheri, R., Azim-Zadeh, M., Mahmoudi, A., & Bozorgmehi, A. (2013). Evaluation of legumes as substituting crops for fallow in wheat-based rotation on North Khorasan province. Iranian Journal of Pulses Research, 4(1), 21-30. (In Persian).
Ortas, I. (2012). Do maize and pepper plants depend on mycorrhizae in terms of phosphorus and zinc uptake? Journal of Plant Nutrition, 35(11), 1639–1656.
Oyetunji, O.J., IEkanayake, J., Osonubi, O., & Lyasse, O. (2004). Cassava macro- and micronutrient uptake and partitioning in alley cropping as influenced by Glomus spp. in sub-humid tropics and its impact on productivity. The International Institute of Tropical Agriculture.
Pairunan, A.K., Robson, A.D., & Abbott, L.K. (1980). The effectiveness of vesicular arbuscular mycorrhiza in increasing growth and phosphorus uptake of subterranean clover from phosphorus of different solubilities. New Phytologist, 84, 327-338.
Prasad, B. (1999). Conjoint use of fertilizers with organics, crop residues and green manuring for their efficient use in sustainable crop production. Fertilizer Research, 44, 67-73.
Prasad, B., & Sinha, S.K. (1995). Nutrient recycling through crop residues management for sustainable rice and wheat production in calcareous soil. Fertilizer Research, 40, 11-15.
Sadri, M.H., & Malkouti, M.J. (1999). Investigating the effect of iron, zinc and copper consumption in improving the quantitative and qualitative characteristics of blue wheat. Publication of Agricultural Education, 169-189. (In Persian).
Schlegel, A.J., & Havlin, J.L. (1997). Green fallow for the central great plains. Agronomy Journal, 89, 792-767.
Shi, R., Zhang, Y., Chen, X., Sun, Q., Zhang, F., Rcemheld, V., & Zou, C. (2010). Influence of long-term nitrogen fertilization on micronutrient density in grain of winter wheat (Triticum aestivum L.). Journal of Cereal Science, 51, 165–170.
Singh, B., Rengel, Z., & Bowden, J.W. (2004). Canola residues decomposition: The effect of particle size on microbial respiration and cycling of sulphur in a sandy soil. 3rd Australian New Zealand Soils Conference, 5 – 9 December 2004, University of Sydney, Australia.
Smith, F.A., & Smith, S.E. (2011). What is the significance of the arbuscular mycorrhizal colonisation of many economically important crop plants? Plant Soil, 348, 63-79.
Treseder, K. (2013). The extent of mycorrhizal colonization of roots and its influence on plant growth and phosphorus content. Plant Soil, 371, 1–13.
Wahbi, S., Maghraoui, T., Hafidi, M., Sanguim, H., Oufdou, K., & Prin, Y. (2016). Enhanced transfer of biologically fixed N from faba bean to intercropped wheat through mycorrhizal symbiosis. Applied Soil Ecology, 107, 91-98.
Wang, B., & Qiu, Y.L. (2006). Phylogenetic distribution and evolution of mycorrhizas in land plants. Mycorrhiza, 16, 299-363
Watts-Williams, S.J., Patti, A.F., & Cavagnaro, T.R. (2013). Arbuscular mycorrhizas are beneficial under both deficient and toxic soil zinc conditions. Plant Soil, 371, 299–312.
White, P.J., & Broadley, M.R. (2009). Biofortification of crops with seven mineral elements often lacking in human diets e iron, zinc, copper, calcium, magnesium, selenium and iodine. New Phytologist, 182, 49-84.
Wissuma, M., Ismail, A.M., & Graham, R.D. (2007). Rice grain zinc concentrations as affected by genotype, native soil-zinc availability, and zinc fertilization. Plant and Soil, 306, 37-48.
Yilmaz, A., Ekiz, H., Gultekin, I., Torun, B., Karanlik, S., & Cakmak, I. (1998). Effect of seed zinc content on grain yield and zinc concentration of wheat grown in zinc-deficient calcareous soils. Journal of Plant Nutrition, 21, 2257–2264.
Yilmaz, A., Ekiz, H., Torun, B., Guttekin, I., Karanlik, S., Bagci, S.A., & Cakmak, I. (1997). Effect of different zinc application methods on grain yield and zinc concentration in wheat cultivars grown on zinc deficient calcareous soils. Journal of Plant Nutrient, 20, 461-471.
Zhang, Y.Q., Deng, Y., Chen, R.Y., Cui, Z.L., Chen, X.P., Yost, R., Zhang, F.S., & Zou, C.Q. (2012). The reduction in zinc concentration of wheat grain upon increased phosphorus-fertilization and its mitigation by foliar zinc application. Plant Soil, 361, 143-152.
Ziaian, A.H., & Malkouti, M.J. (1999). The effect of iron consumption on wheat production in a number of highly calcareous soils of Fars province. Scientific Research Journal of Soil and Water Research Institute, 12(13), 77-89. (In Persian).
 
Volume 55, Issue 2
June 2024
Pages 73-88
  • Receive Date: 26 July 2023
  • Revise Date: 14 November 2023
  • Accept Date: 22 November 2023
  • Publish Date: 21 June 2024