ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر کاربرد مایکوریزا و برادی ریزوبیوم بر عملکرد و اجزای عملکرد سویا در مقادیر مختلف کود نیتروژن
به منظور بررسی اثر کاربرد مایکوریزا و برادیریزوبیوم بر عملکرد سویا در سطوح مختلف نیتروژن استارتر، آزمایشی به صورت فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در بهار و تابستان سال 1394 در مزرعه تحقیقاتی دانشگاه بوعلی سینای همدان انجام شد. کود استارتر در سه سطح 0، 30 و 60 کیلوگرم در هکتار نیتروژن، برادی رایزوبیوم در دو سطح مصرف و عدم مصرف و مایکوریزا (Glomus mossea) نیز در دو سطح مصرف و عدم مصرف، فاکتورهای این آزمایش بودند. نتایج نشان داد که ارتفاع بوته، تعداد برگ در بوته، عملکرد و اجزای عملکرد دانه، عملکرد زیستی و درصد کلونیزاسیون مایکوریزایی به طور معنیداری تحت تاثیر برهمکنش عوامل مورد بررسی قرار گرفتند. بیشترین تعداد غلاف در بوته از ترکیب تیماری 30 کیلوگرم نیتروژن با برادی ریزوبیوم بدست آمد؛ همچنین هر دو کود زیستی توانستند تعداد غلاف در بوته را افزایش دهند. بیشترین وزن هزار دانه نیز از تلقیح همزمان گیاهان با برادی ریزوبیوم و مایکوریزا در عدم مصرف نیتروژن بدست آمد. مصرف 60 کیلوگرم در هکتار نیتروژن، کاهش 22/20 درصدی کلونیزاسیون مایکوریزایی را نسبت به عدم مصرف کود استارتر در پی داشت. مصرف همزمان برادی ریزوبیوم و مایکوریزا در سطح30 کیلوگرم نیتروژن در هکتار، بیشترین عملکرد دانه (67/511 گرم در مترمربع) و عملکرد زیستی (16/1223 گرم در مترمربع) را تولید نمود. بنابراین مصرف 30 کیلوگرم در هکتار نیتروژن استارتر به همراه کاربرد همزمان برادی ریزوبیوم و مایکوریزا، ضمن تولید عملکرد بالا، کاهش مصرف کود شیمیایی نیتروژن را در پی دارد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65297_a0d120071f5554ae290351803554926c.pdf
2018-02-20
901
911
10.22059/ijfcs.2017.210402.654143
درصد کلونیزاسیون
کود زیستی
وزن هزار دانه
محمدعلی
ابوطالبیان
aboutalebianmail@gmail.com
1
دانشگاه بوعلی سینا، دکترای اکولوژی گیاهان زراعی
LEAD_AUTHOR
معصومه
مالمیر
m.malmir1359@gmail.com
2
دانشگاه بوعلی سینا
AUTHOR
Ahmad, F., Ahmad, I. & Shakirhan, M. (2005). Indole acetic acid production by indigenous of Azotobacter and Pesoudomonas fluresence in the presence and absence of tryptophan, Turkish Journal of Biology, 29, 29-34.
1
AL-Karaki, G., McMichael, B. & Zak, J. (2004). Field response of wheat to arbuscular mycorrhizal fungi and drought stress. Mycorrhiza, 14, 263-269.
2
Allahdadi, I., Shahbazian, N. & Kamkar, B. (2008). Investigation of farmyard manure, mineral nitrogen and diferent bacteria (Bradyrhizobium japonicum) inoculation soybean yield (Glycine max L.). Journal of Agricultural Sciences, 13(1): 181-190. (In Farsi)
3
Cardoso‚ M. &Kuyper‚ T.W. (2006). Mycorrhizal and tropical soil fertility. Agriculture Ecosystem and Environment, 116, 72-84.
4
Chalk, P. M., Souza, R. D. F., Urquiaga, S., Alves, B. J. R. & Boddey, R. M. (2006). The role of arbuscular mycorrhiza in legume symbiotic performance. Soil Biology and Biochemistry, 38(9), 2944-2951.
5
Dakora, F. D. (2003). Defining new roles for plant and rhizobial molecules in sole and mixed plant cultures involving symbiotic legumes. New Phytology Trust, 157, 39-49.
6
Damavandi, M., Saboori, H., Biabani, A. & Reyisi, S. (2013). Effect of arbuscular mycorrhiza and Brady Rhizobium japonicum under different levels of phosphorus fertilizer on number, node wet weight and dry weight of nitrogen fixing nodules of soybean. In: Proceedings of the 2 th New Issues in Agriculture Conference, 19 December, Islamic Azad University of Saveh, Iran.
7
Elgala, A. M., Ishac, Y. Z., Adbel Monem, M., El-Ghandour, A. A. I., Huang, P. M., Berthelin, J., Bollag, J. M., Megill, W. B. & Page, A. L. (1995). Effect of single and combined inoculation with Azotobacter and Vesicular Arbuscular Mycorrhiza fungi on growth and mineral nutrient contents of maize and wheat plants. Environmental Impact of Soil Component Interaction, 2, 109-116.
8
El-Shaarawi, A. I., Sabh, A. Z., Abou-Taleb S. M. & Ghoniem, A. E., (2011). Effect of inorganic nitrogen and Bradyrhizobium japonicum inoculation on growth and yield of soybean. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 5, 436-447.
9
Erman, M., Demir, S., Ocak, E., Tufenkçi, Ş., Oguz, F. & Akkopru, A. (2011). Effects of Rhizobium, arbuscular mycorrhiza and whey applications on some properties in chickpea (Cicer arietinum L.) under irrigated and rainfed conditions. Field Crops Research, 122(1), 14-24.
10
Garg, N. & Chandel, S. (2011). Effect of mycorrhizal inoculation on growth, nitrogen fixation and nutrient uptake in Cicer arietinum under salt stress. Turkish Journal of Agriculture, 4, 1-35.
11
Heidari, M. & Karami, V. (2014). Effects of different mycorrhiza species on grain yield, nutrient uptake and oil content of sunflower under water stress. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences, 13(1), 9-13.
12
Hemmati, A. & Asadi Rahmani, H. (2004). Study of application of nitrogen and nitrogen-fixing bacteria strains on yield of common bean. In: Proceedings of the 8th Iranian Crop Sciences and plant breeding Congress, 24-26 August, Faculty of Agriculture, University of Gilan, Iran. pp. 465.
13
Khaje-Pour, M. R. (2006). Industrial Crops. Jahad Academic Publications, Esfahan Industrial University. (In Farsi)
14
Khalequzzaman, K. M. & Hossain, I. (2007). Effect of seed treatment with rhizobium strains and biofertilizers on foot/ root rot and yield of bushbean in fusarium solani infested soil. Journal of agriculture research, 45(2), 151-160.
15
Khalili, M. (2014). Effect of irrigation intervals and biofertilizers on water use efficiency, agronomic and qualitative characteristics of soybean (Glycin max L.) in Hamedan. M. Sc. Thesis in Agronomy, Bu-Ali Sina University of Hamedan. (In Farsi)
16
Majnoon Hosseini, N. (1997). Beans in Iran. Jahad Academic Publications, University of Mashhad. (In Farsi)
17
Mikhaeel, F. T., Estefanous, A. N. & Antoun, G. G. (1997). Response of mycorrhizal inoculation and organic fertilization. Bulletin of Faculty Agriculture-University of Cairo, 48, 175-186.
18
Mohammadi, E., Asghari, H. & Gholami, A. (2014). Evaluation the possibility of utilization of bio fertilizer mycorrhiza in phosphorus supply in Chickpea cultivation (Cicer arietinum L.). Iranian Journal of Field Crops Research, 11(4): 658-665. (In Farsi)
19
Ortas. I. (2004). The effect of Mycorrhizal inoculation on forage and non-forage plant growth and nutrient uptake under field conditions. Options Mediterranéennes, 79, 459-470.
20
Philips, J.& Hayman, D.S. (1980). Improved procedure for cleaning roots and staining parasitic and Vesicular arbuscular parasitic and Vesicular-arbuscular mycorrhiza fungi for rapid assessment of infection. Transactions of the British Mycological Society, 55: 158-161.
21
Rajput, L. S., Ansari, A. H., Usmani-Khail, M. U., Oad, F. C. & Oad, N. L. (2001). Vegetative growth, yield components and seed yield response of inoculated and un-inoculated soybean regard to fertility regimes. Journal of Applied Science, 1, 379-382.
22
Ruiz-Sanchez, M., Aroca, R., Munoz, Y., Polon, R., & Ruiz-Lozano, J. M. (2010). The arbuscular mycorrhizal symbiosis enhances the photosynthetic efficiency and the antioxidative response of rice plants subjected to drought stress. Journal of plant physiology, 167(11), 862-869.
23
Ryan‚ M. H. & Graham‚ J. H. (2002). Is there a role for arbuscular mycorrhizal fungi in production agriculture. Plant and soil, 24: 263-271.
24
Safa-poor, M., Ardakani, M. R., Rejali, F., Khaghani, Sh. & Teymuri M. (2010). Interaction between mycorrhiza and rhizobium on yield of three varieties of Phaseolus vulgaris L. New Findings in Agriculture Journal. 5(1), 22-25.
25
Saini, V. K., Bhandari, S. C. & Tarafdar, J. C. (2004). Comparison of crop yield, soil microbial C, N and P, N fixation, nodulation and mycorrhizal infection in inoculated and non-inoculated sorghum and chickpea crops. Field Crops Research, 89, 39-47.
26
Seyyedi, M. N. & Mir Sharifi, R. (2013). Effect of seed inoculation with rhizobium and nitrogen fertilizer application on yield and agronomic characteristics of soybean in Ardabil. Iranian Journal of Field Crops Research, 11(4), 618-626. (In Farsi)
27
Shiri Janagard, M. & Raei, Y. (2014). Effect of growth-promoting bacteria on soybean nodulation and oil and protein yields. Journal Sustainable Agriculture and Production Science, 24(1), 69-82. (In Farsi)
28
Shiri Janagard, M., Raei, Y., Gasemi-Golezani, K. & Aliasgarzad, N. (2013). Soybean response to biological and chemical fertilizers. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 5(3), 261-266.
29
Siviero, M. A., Motta, A. M., Dos Santos Lima, D., Birolli, R. R., Huh, S. Y., Santinoni, I. A., & Nogueira, M. A. (2008). Interaction among N-fixing bacteria and AM fungi in Amazonian legume tree (Schizolobium amazonicum) in field conditions. Applied Soil Ecology, 39(2), 144-152.
30
Sogut, T. (2006). Rhizobium inoculation improves yield and nitrogen accumulation in soybean (Glycine max L.) cultivars better than fertilizer. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science, 34, 115-120.
31
Starling, M. E, Wood, C. W. & Weaver, D. B. (1998). Starter nitrogen and growth habit effects on late-planted soybean. Agronomy Journal, 90, 658-662.
32
Taher-khani, M., Nour Mohammadi, Gh., Mir Hadi, S. M. J. & Mohammadi Rahim, A. (2007). Evaluation the ability of biological nitrogen fixation in different bean varieties with using of three types of inoculant containing nitrogen-fixing bacteria. Agroecology Journal, 3(7), 79-88. (In Farsi)
33
Walley, F. L., Boahen,S. K., Hnatowich, G. & Stevenson,C. (2005). Nitrogen and phosphorus fertility management for desi and kabuli chickpea. Canadian Journal of Plant Science, 85, 73-79.
34
Zarei, I., Sohrabi, Y., Heidari, Gh. R., Jalilian, A. & Mohammadi, Kh. (2012). Effects of biofertilizers on grain yield and protein content of two soybean (Glycine max L.) cultivars. African Journal of Biotechnology, 11(27), 7028- 7037.
35
Zimmera, S., Messmer, M., Haasec, Th., Piepho, H. P., Mindermann, A., Schulz, H., Habekub, A., Ordon, F., Wilbois, K. P. & Heb, J. (2016). Effects of soybean variety and Bradyrhizobium strains on yield, protein content and biological nitrogen fixation under cool growing conditions in Germany. European Journal of Agronomy, 72, 38–46.
36
ORIGINAL_ARTICLE
تجزیهوتحلیل نگارهای عملکرد دانه و اجزای آن در برخی رقمهای گندم نان به روش دیآلل-روش هیمن
بهمنظور تجزیهوتحلیل نگارهای (گرافیکی) و برآورد فراسنجه (پارامتر)های ژنتیکی عملکرد دانه و اجزای آن از تلاقی دیآلل یکسویه و هفت نژادگان (ژنوتیپ) گندم نان استفاده شد. در این بررسی والدین به همراه 21 دورگ (هیبرید) آنها در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار ارزیابی شدند. نتایج تجزیۀ واریانس گویای وجود تفاوت معنیدار بین نژادگانها برای ارتفاع بوته، طول ساق گل (پدانکل)، طول سنبله، شمار دانه در بوته، عملکرد دانه در بوته و وزن هزاردانه بود. نتایج آزمون مقدماتی جینکز و هیمن نشان داد، فرضیههای مدل برای شمار دانه در بوته و عملکرد دانه در بوته صادق بود اما برای طول سنبله، طول ساق گل و وزن هزاردانه با حذف یک والد و برای ارتفاع بوته با حذف دو والد صادق شد. نتایج بهدستآمده از تجزیۀ هیمن نشان داد، اثر افزایشی و غیرافزایشی ژنها در کنترل صفات نقش دارند. بیشترین میزان وراثتپذیری خصوصی در ارتفاع بوته (47/.) و کمترین آن در شمار دانه در بوته (21/.) مشاهده شد. با توجه به برآورد میانگین درجۀ غالبیت و نتایج تجزیهوتحلیل نگارهای، عمل ژن در عملکرد دانه و ارتفاع بوته از نوع اثر افزایشی و در طول ساق گل، شمار دانه در بوته، طول سنبله و وزن هزاردانۀ فوق غالبیت بود.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65300_bdc1a34843eb16749463bb695033273d.pdf
2018-02-20
913
922
10.22059/ijfcs.2017.215502.654172
اثر افزایشی و فوق غالبیت ژن
فراسنجههای ژنتیکی
عمل ژن
حسن
عبدی
h.abdi63@yahoo.com
1
مربی، عضو هیئت علمی مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان تهران، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدحسین
فتوکیان
fotokian@yahoo.com
2
هیات علمی دانشکده کشاورزی دانشگاه شاهد
AUTHOR
Abdul Rehman Rashid, M., Salam Khan, A. & Iftikha, R. (2012). Genetic studies for yield and yield related parameters in bread Wheat. American-Eurasian Journal of Agricultural and Environmental Sciences, 12(12), 579-1583.
1
Arshad, M. & Chowdhry, M. S. (2003). Genetic behavior of wheat under irrigated and drought stress environment. Asian Journal of Plant Science, 2, 58-64.
2
Barnlard, A., Labuschange, T. & Niekerk, H. (2001). Heritability estimates of bread wheat quality traits in the Western Cape Province of South Africa. Euphytica, 127, 115-122.
3
Budak, N. (2001). Genetic analysis of certain quantitative traits in the F2 generation of a 8×8 diallel of durum population. Turkish Journal of field crops, 38, 63-70.
4
Bushuk, W. & Rasper, V.F. (1994). Wheat production, properties and quality. Blakie Academic and professional- An important. Chapman and Hall.
5
Cemal, Y., Faheem Shehzeol, B. & Hakan, O. (2009). Genetic analysis of some physical properties of bread wheat grain. Turkish Journal of agriculture and forestry, 33, 525-535.
6
Dağüstü, N. (2008). Genetic analysis of grain yield per spike and some agronomic traits in diallel crosses of bread wheat (Triticum aestivum L). Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 32, 249-258.
7
Dhanda, S.S. & Sethi, G.S. (1998). Inheritance of excised-leaf water loss and relative water content in bread wheat (Triticum aestivum L.). Euphytica, 104, 39-47.
8
Edwards, B. (2001). Hybrid wheat. In: A.P. Bonjean, and W.J. Angus (Ed), The World wheat book: A history of wheat breeding. (pp.1019-1045) Lavoiser Publishers, Paris.
9
El-Khayat, GH., Samaan, J., Manthey, F.A., Fuller, M.P. & Brennan, C.S. (2006). Durum wheat quality I: some physical and chemical characteristics of Syrian durum wheat genotypes. International Journal of Food Science and Technology, 41, 22-29.
10
Farshadfar, E., Aghaie Sarbarzeh, M., Sharifi, M. & Yaghopoor, A. (2008). Assessment of salt tolerance in barley via generation mean analysis. Journal of Biological Science, 8(2), 461-465.
11
Griffing, B. (1956). generalized treatment of use of diallel crosses in qualitative inheritance. Heredity, 10, 31-50.
12
Hayman, B. I. (1954). The theory and analysis of diallel crosses. Genetics, 39(6), 789-809.
13
Habib, I. & Khan, A.S. (2003). Genetic model of some economic traits in bread wheat (Triticum aestivum L.). Asian Journal of Plant Sciences, 2, 1153-1154.
14
Heidari, B., Rezai, A.M. & Mirmohammadi Maibody, S.A.M. (2006). Diallel analysis for the estimation of genetic parameters for grain yield and grain yield components in bread wheat. Journal of Science, Technology and Agricultural Natural Resources, 10(2), 121-139. (In farsi).
15
Jinks, J.L. & Hayman, B.I. (1953). The analysis of diallel crosses. Maize genetics, 43, 223-234.
16
Iran-Nejad, H. & Shahbaziyan, N. (2005). Cereal cultivation. (Vol. I), Wheat Karenoo Publications, Tehran, Iran. (In farsi).
17
Kearsey, M.Y, & Pooni, H.S. (1996). The Genetically Analysis of quantities Traits. Chapman and Hall London.
18
Mather, K. (1949). Biometrical genetics. Dover publication, Inc., New York.
19
Mather, K. & Jinks, J.L. (1982). Biometrical genetics- The study of continuous variation. Chapman and Hall.
20
Ojaghi, J. & Akhundi, A. (2010). Genetic effects for grain yield and its related traits in doubled haploid lines of wheat. International Journal of Agriculture and Biology, 12(1), 86-90.
21
Riaz R. & Chowdhry, M.A. (2003). Genetic analysis of some economic traits of wheat under drought condition. Asian journal of plant science, 6, 790-796.
22
Singh H., Sharma S.N. & Sain R.S. (2004). Combining ability for some quantitative characters in hexaploid wheat (Triticum aestivum L. em Thell). Crop science, 45, 68-72.
23
Zare-kohan1, M. & Heidari, B. (2012). Estimation of genetic parameters for maturity and grain yield in diallel crosses of five wheat cultivars using two different models. Journal of Agricultural Science, 4(8), 74-85.
24
Zhang Y., Kang MS. & Lamky, RK. (2005). DIALLEL-SAS 05: A comprehensive program for Griffing’s and Gardner –Eberhart Analyses. Agronomy, 97, 1097-1106.
25
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر کاربرد پلیمر سوپر جاذب بر عملکرد و اجزای عملکرد گندم آبی و دیم
استفاده از پلیمرهای سوپرجاذب یکی از راهکارهای مؤثر در افزایش بازده مصرف آب و استفاده بهینه از نزولات جوی در مناطق خشک و نیمهخشک است. در این مطالعه تأثیر کاربرد سطوح مختلف سوپرجاذب استاکوزورب در عملکرد و اجزای عملکرد گندم در شرایط کشت دیم و آبی بررسی شده است. برای این منظور آزمایشی در سال زراعی 95-1394 در مزرعه دانشکده کشاورزی دانشگاه تبریز انجام شد. سوپرجاذب استاکوزورب در سه سطح 0، 50 و 100 کیلوگرم بر هکتار استفاده شد. بر اساس نتایج به دست آمده، مصرف 100 کیلوگرم در هکتار سوپرجاذب تأثیر معنی-داری در افزایش عملکرد دانه و بهرهوری مصرف آب در هر دو کشت دیم و آبی دارد. مصرف 50 کیلوگرم در گندم دیم معنیدار بود ولی در گندم آبی معنیدار نبود. نتایج نشان داد تأثیر مصرف سوپرجاذب در افزایش عملکرد و بهرهوری مصرف آب گندم آبی بیشتر از گندم دیم است. همچنین تأثیر کاربرد سوپرجاذب در شرایط دیم در تیمار S1 (افزایش 9/25 درصدی بهرهوری مصرف آب) و در گندم آبی در تیمار S2 (افزایش 2/19 درصدی بهرهوری مصرف آب) قابل توجه است. با توجه به نسبت افزایش سود حاصل از افزایش عملکرد در مقابل هزینه کاربرد سوپرجاذب، استفاده از آن در کشت گندم توصیه نمی شود
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65305_e8cb9e5b10a067b899a9d1c16c6ffbf5.pdf
2018-02-20
923
931
10.22059/ijfcs.2017.223031.654237
استاکوزورب
بهرهوری مصرف آب
تحلیل اقتصادی
عملکرد دانه
سعید
جلیلی
jalili_saeid@yahoo.com
1
دانشجوی آبیاری و زهکشی دانشگاه تبریز
LEAD_AUTHOR
معین
هادی
moeinhadi@gmail.com
2
دانشجوی کارشناسی ارشد آبیاری و زهکشی دانشگاه تبریز
AUTHOR
ابوالفضل
مجنونی هریس
majnooni1979@yahoo.com
3
استادیار گروه مهندسی آب دانشگاه تبریز
AUTHOR
Abedini, A. & Sajedi, N.A. (2014). Effect of application of a superabsorbent polymer on physiological traits of dry land wheat cultivars. Agronomy Journal (Pajouhesh & Sazandegi) 103, 140-146.(In Farsi).
1
Egrinya Enejiv, A., Islam, R., An, P. & Amalu, U.C. (2013). Nitrate retention and physiological adjustment of maize to soil amendment with superabsorbent polymers. Cleaner Production. 52: 474-480.
2
El-Hady, O.A. & Wanas. Sh. A. (2006). Water and fertilizer use efficiency by cucumber grown under stress on sandy soil treated with acrylamide hydrogels. Appl. Sci. Res. 2(12): 1293-1297.
3
Han, Y., Yu, X., Yang, P., Li, B. & Wang, C. (2012). Dynamic on water diffusivity of soil with super-absorbent polymer application. Environ Earth Science. 69: 289-296.
4
Islam Robiul, M., Shahidul Alam, A. M., Egrinya Eneji, A., Ren, C., Song, W. & Hu, Y. (2011) Evaluation of a water-saving superabsorbent polymer for forage oat (Avena sativa L.) production in arid regions of northern China. Food, Agriculture & Environment .9 (2): 514-518.
5
Kafi, M., Borzoee, A., Salehi, M., Kamandi, A., Masoumi, A., Nabati, J. (2012). Physiology of environmental stresses in plants. Jahaddaneshgahi of university of Ferdowsi Mashhad publication. Mashhad. 504 pages.
6
Karimi, A., Noshadi, M. & Ahmadzadeh, M. (2009). Effects of super absorbent polymer (igeta) on crop, soil water and irrigation interval. Science & Technology of Agriculture and Natural Resources. 12: 415-420.
7
Li, X., He, J. Z., Hughes, J., Liu, Y.R. & Zheng, Y. M. (2013). Effects of super-absorbent polymers on soil-wheat (Triticum aestivum L.) system in the field. Applied Soil Ecology. 73:58-63.
8
Mahfouzi, S., Akbari, A., Chaichi, M., Sanjari, A.GH., Nazeri, S.M., Abedi Oskouei, S., Aminzadeh, GH. R. & Rezaei, M. (2009). Cultivar Release Pishgam, A New Bread Wheat Cultivar for Normal Irrigation and Terminal Stage Deficit Irrigation Conditions of Cold Regions of Iran. Seed and Plant Improvement Journal. 1-25(3):513-516. (In Farsi).
9
Mortezavi, S.M., Tavakoli, A., Mohammadi, M.H. Afsahi, K.(2015). Effect of superabsorbent on physiological traits and yield of wheat Azar2 cultivar under dry farming condition. Agronomy Journal (Pajouhesh & Sazandegi) 104 : 118-125.[In Farsi]
10
Razban, M. & Pirzad, A. R. (2012). Evaluate the Effect of Varying Amounts of Super Absorbent under Different Irrigation Regimes on Growth and Water Deficit Tolerance of German Chamomile (Matricaria Chamomilla), as a Second Crop. journal of sustainable agriculture and productionscience. 21(4): 123-137 .(In Farsi).
11
Sepaskhah, A. R. & Barzegar, M. (2010). Yield, water and nitrogen-use response of rice to zeolite and nitrogen fertilization in a semi-arid environment. Agriculture Water Management. 98:38-44.
12
Tavakoli A.R. (2013). Deficit irrigation and supplemental irrigation management for rainfed and irrigated wheat at Selseleh region. J. of Water Research in Agriculture, 27(4): 589-600. (In Farsi).
13
Yazdani, F., Allahdadi, I. & Akbari, G. A. (2007). Impact of superabsorbent polymer on yield and growth analysis of Soybean (Glycine max L.) under drought stress condition. Pakistan Biological Sciences. 10: 4190-4196.
14
Xiahua, Q., Mingzhu, L., Zhenbin, C. & Fen, Z. (2008). Study on the Swelling Kinetics of Superabsorbent Using Open, Circuit Potential Measurement. European Polymer J, 44: 743 – 754.
15
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تحمل به تنش کمآبی در ژنوتیپهای مختلف سویا
کمآبی یکی از مهمترین عوامل محدود کننده تولید محصولات زراعی، منجمله سویا محسوب میشود. به منظور شناسایی و ارزیابی تحمل به تنشکمآبی، آزمایشی با 40 ژنوتیپ سویا در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی در دو محیط آبیاری نرمال و تنش کمآبی در سال زراعی 1393 در مزرعه پژوهشی موسسه اصلاح و تهیه نهال بذر کرج با سه تکرار پیاده شد. شاخصهای MP، GMP، HARM و STI بیشترین همبستگی معنیدار را با عملکرد در شرایط آبیاری نرمال و تنش کمآبی داشتند و به عنوان شاخصهای برتر برای غربال کردن ژنوتیپهای متحمل به تنش شناسایی شدند. پس از ترسیم نمودار بایپلات ژنوتیپهای D42×Will82، Spry×Savoy/3، Chaleston×Mostang/12 و Liana×L32/2 به عنوان ژنوتیپهای متحمل به تنش کمآبی و دارای عملکرد بالا تحت شرایط آبیاری نرمال و ژنوتیپهای GN 2171، GN 2167، GN 2087 و GN 2011 به عنوان ژنوتیپهای حساس به تنش کمآبی معرفی شدند. براساس تجزیه خوشهای با استفاده از شاخصهای MP، GMP، HARM و STI و عملکرد تحت شرایط آبیاری نرمال و تنش کمآبی، ژنوتیپهای مورد بررسی در چهار گروه دستهبندی شدند که اکثر ژنوتیپهای متحمل به تنش کمآبی در گروههای اول و دوم و اکثر ژنوتیپهای حساس به تنش کمآبی در گروههای سوم و چهارم تجزیه خوشهای قرار گرفتند. نتایج تجزیه خوشهای میتواند برای انتخاب ژنوتیپهایی با بیشترین فاصله ژنتیکی به عنوان والدین مطلوب برای دورگگیری و ایجاد جمعیتهای در حال تفرق با حداکثر تنوع ژنتیکی بسیار ارزشمند باشد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65316_0ce8989c4d2384dbab8b5c0aff595f03.pdf
2018-02-20
933
943
10.22059/ijfcs.2017.217007.654192
بای پلات
تجزیه خوشهای
سویا
شاخص تحمل به تنش
سید علی
پیغمبری
alipey@ut.ac.ir
1
سمت اجرایی ندارم
LEAD_AUTHOR
مهناز
طالبخانی
mahnaz.talebkhani61@gmail.com
2
دانش آموخته دانشگاه تهران
AUTHOR
حمید رضا
بابایی
hrbabaei@gmail.com
3
استادیار بخش تحقیقات اصلاح و تهیه نهال و بذر
AUTHOR
هادی
علی پور
alipourhadi64@gmail.com
4
استادیار دانشگاه ارومیه
AUTHOR
Abdipour, M., Rezaei, A., Houshmand, S. & Bagherifard, G. (2009). Evaluation of Drought Tolerance of Indeterminate Soybean Genotypes in Flowering and Seed Filling Stages. Journal of Research in Agricultural Science. 4(2), 140-150. (In Farsi)
1
Aminifar, J., Mohsenabadi, G. H., Biglouei, M. H. & Samiezadeh, H. (2012). Effect of deficit irrigation on yield, yield components and phenology of soybean cultivars in Rasht region. International Journal of Agri Science, 2(2), 185-191. (In Farsi)
2
Arnon, I. (1972). Crop production in dry regions (Vol. 2, pp. 11-19). London: Leonard Hill.
3
Blum, A. (1988). Plant breeding for stress environments. CRC Press, Inc..
4
Board, J. E. (2002). A regression model to predict soybean cultivar yield performance at late planting dates. Agronomy Journal, 94(3), 483-492.
5
Bokaie, S., Babaie, H., Habibi, D., Javidfar, F. & Mohammadi, A. (2008). Evaluation of different soybean (Glycine max L.) genotypes under drought stress conditions. Journal of Agronomy and Plant Breeding, 4(1), 27-38. (In Farsi)
6
Daneshian, J., Hadi, H. & Jonoubi, P. (2009). Study of quantitative and quality characteristics of soybean genotypes in deficit irrigation conditions. Iranian Journal of Crop Sciences, 11(4), 393-409. (In Farsi)
7
Dehghani, G. H. & Alizadeh, B. (2009). A study of drought tolerance indices in canola (Brassica napus L.) genotypes. JWSS-Isfahan University of Technology, 13(48), 77-90. (In Farsi)
8
Desclaux, D., Huynh, T. T. & Roumet, P. (2000). Identification of soybean plant characteristics that indicate the timing of drought stress. Crop Science,40(3), 716-722.
9
Emam Jome, A. (1999). Determine the genetic distance by RAPD-PCR, evaluation of drought resistance indices and analysis of adaptation in the Iranian chickpea (Doctoral dissertation, Faculty of Agriculture, Razi University, Kermanshah, Iran. (in Farsi)
10
FAO. (2014). Food outlook, Global Market Analysis. http://www.fao.Food outlook.com
11
Faraji, A. (2014). Evaluation of seed yield and stress tolerance indices in soybean lines and cultivars in gorgan area. Seed and Plant Production Journal, 30(1), 35-45.
12
Fereres, E. C., Gimenen, J., Berengan, J. & Fernendez, J. M. Dominguez. J. (1983). Genetic variability of sunflower cultivars in response to drought. Helia, 6, 17-21.
13
Fernandez, G. C. (1992, August). Effective selection criteria for assessing plant stress tolerance. In Proceedings of the international symposium on adaptation of vegetables and other food crops in temperature and water stress (pp. 257-270).
14
Fischer, R. A. & Maurer, R. (1978). Drought resistance in spring wheat cultivars. I. Grain yield responses. Crop and Pasture Science, 29(5), 897-912.
15
Ganjali, A., Kafi, A., Bageri, A. & Shahriyari, F. (2005). Screening for drought tolerance in chickpea genotypes (Cicer arietinum L.). Iranian Journal of Agricultural Sciences. 3(1): 103-122. (in Farsi)
16
Kargar, S. M. A., Ghannadha, M. R., Bozorgi-Pour, R., Atari, A. A. & Babaei, H. R. (2004). Investigation of drought tolerance indices in some soybean genotypes under restricted irrigation condition. Iranian J. Agri. Sci,35(1), 97-111. (In Farsi)
17
Kargar, S. M. A., Mostafaie, A., Hervan, E. M. & Pourdad, S. S. (2014). Evaluation of soybean genotypes using drought stress tolerant indices. International Journal of Agronomy and Agricultural Research, 5(2), 103-113.
18
Karimizadeh, R., Mohammadi, M., Ghaffaripour, S., Karimpour, F. & Shefazadeh, M. K. (2011). Evaluation of physiological screening techniques for drought-resistant breeding of durum wheat genotypes in Iran. African Journal of Biotechnology, 10(56), 12107-12117.
19
Khalili, M., Naghavi, M. R., Aboughadareh, A. P. & Talebzadeh, S. J. (2012). Evaluating of drought stress tolerance based on selection indices in spring canola cultivars (Brassica napus L.). Journal of Agricultural Science, 4(11), 78.
20
Kristin, A. S., Serna, R. R., Perez, F. I., Enriquez, B. C., Gallegos, J. A. A. Vallejo, P. R., Wassimi, N. & Kelly, J. D. (1997). Improving commonbean performance under drought stress. Crop Science, 37, 51-60.
21
Liu, F., Andersen, M. N., Jacobsen, S. E. & Jensen, C. R. (2005). Stomatal control and water use efficiency of soybean (Glycine max L. Merr.) during progressive soil drying. Environmental and Experimental Botany, 54(1), 33-40.
22
Maroufi, A. (1998). Chromosomal localization drought tolerance indices in Wheat. M.Sc. thesis, Faculty of Agriculture, Razi University, Kermanshah, Iran. (in Farsi)
23
Masoumi, H., Masoumi, M., Darvish, F., Daneshian, J., Nourmohammadi, G. & Habibi, D. (2010). Change in several antioxidant enzymes activity and seed yield by water deficit stress in soybean (Glycine max L.) cultivars. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 38(3), 86.
24
Mohammad Alipour Yamchi, H., Bihamta, M. R., Peyghambari, S. A. & Naghavi, M. R. (2011). Evaluation of Drought Tolerance in Kabuli Type Chickpea Genotypes. Seed and Plant Improvment Journal, 27(3), 393-409. (In Farsi)
25
Najafi, A. & Geravandi, M. (2011). Assessment of indices to identify wheat genotypes adapted to irrigated and rain-fed environments. Advances in Environmental Biology, 3212-3219. (In Farsi)
26
Nourmand Moayyed, F. (1997). Study variation of quantitative traits and their relation to the performance of bread wheat (Triticum aestivum L.) in dry and water conditions and determine the best indices of drought resistance. M.Sc. thesis, Faculty of Agriculture, University of Tehran, Iran. Pp. 15-57. (in Farsi).
27
Pouresmael, M., Akbari, M. A. H. D. I., Vaezi, S. H., & Shahmoradi, S. (2009). Effects of drought stress gradient on agronomic traits in Kabuli chickpea core collection. Iranian Journal of Crop Sciences, 11(4), Pe308-Pe324. (In Farsi)
28
Rosielle, A. A., & Hamblin, J. (1981). Theoretical aspects of selection for yield in stress and non-stress environment. Crop science, 21(6), 943-946.
29
Sanjari Pireivatlou, A., & Yazdansepas, A. (2010). Evaluation of wheat (Triticum aestivum L.) genotypes under pre-and post-anthesis drought stress conditions. Journal of Agricultural Science and Technology, 10, 109-121.
30
Schneider, K. A., Brothers, M. E. & Kelly, J. D. (1997). Marker-assisted selection to improve drought resistance in common bean. Crop Science, 37(1), 51-60.
31
Schneiter, A. A., Johnson, B. L. & Henderson, T. L. (1992). Rooting depth and water use of different sunflower phenotypes. In Proc. Int. Sunflower Conf., 13th, Pisa, Italy (pp. 7-11).
32
Silvente, S., Sobolev, A. P. & Lara, M. (2012). Metabolite adjustments in drought tolerant and sensitive soybean genotypes in response to water stress. PLoS One, 7(6), e38554.
33
Toorchi, M., Naderi, R., Kanbar, A. & Shakiba, M. R. (2012). Response of spring canola cultivars to sodium chloride stress. Annals of Biological Research, 2(5), 312-322.
34
Turner, N. C., Wright, G. C. & Siddique, K. H. M. (2001). Adaptation of grain legumes (pulses) to water-limited environments. Advances in Agronomy, 71, 193-231.
35
Zeinali Khanghah, H., Izanlo, A., Hosseinzadeh, A. & Majnoun Hosseini, N. (2004). Determine of appropriate drought resistance indices in imported soybean cultivars. Iranian Journal of Agriculture Science, 3, 875-885. (In Farsi)
36
ORIGINAL_ARTICLE
بهینهسازی القا و تثبیت ریشههای مویین هویج بهمنظور کشت درون شیشهای قارچهای میکوریز آربوسکولار
هدف از این پژوهش، بهینهسازی شرایط القای ریشه مویین هویج با استفاده از ریشه و دمبرگ درونشیشهای و همچنین دمبرگ و ساقه گلخانهای به منظور کشت درون شیشهای قارچهای میکوریز آربوسکولار میباشد. بذرهای هویج پس از ضدعفونی، در محیط کشت MS و گلدان کشت شدند. ریشه و دمبرگ درونشیشهای چهار هفتهای و دمبرگ و ساقه گلخانهای سه ماهه با استرینهایMSU، 15834 و A4 باکتری Rhizobium rhizogenes مایهزنی و در محیط کشت MS کشت شدند. تاثیر استرین باکتری و نوع ریزنمونه بر القای ریشه مویین بررسی شد. پس از حذف باکتری، میزان رشد ریشههای مویین حاصل از هر ریزنمونه پبهصورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار اندازهگیری گردید. تایید مولکولی تراریختگی ریشههای مویین و استرینهای باکتری با استفاده از واکنش PCR برای تکثیر اختصاصی ژن rolC به اثبات رسید. نتایج نشان داد هر سه استرین توانایی القای تولید ریشه مویین را دارند. ریشههای تراریخته نسبت به ریشههای معمولی ضخامت، انشعاب و سرعت رشد بیشتری داشتند. استرین 15834 و ریزنمونههای دمبرگ گلخانهای و ریشه درونشیشهای بیشترین توانایی تولید ریشه مویین را نشان دادند. بالاترین میزان رشد ریشههای مویین در ریزنمونه ساقه گلخانهای با استرین MSU مشاهده شد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65317_c6e7a9c796a59362c1dbb6768efc6831.pdf
2018-02-20
945
959
10.22059/ijfcs.2017.142452.654038
اگروباکتریوم
هویج
تکثیر میکوریز آربوسکولار
کشت بافت ریشه
همزیستی
مرضیه
یزدان پناه
marzieh.yazdanpanah@ymail.com
1
دانشگاه ولی عصر رفسنجان
AUTHOR
ابراهیم
صداقتی
sedaghatiebrahim@yahoo.com
2
دانشگاه ولی عصر (عج) رفسنجان
LEAD_AUTHOR
پژمان
خدایگان
pkhodaygan@vru.ac.ir
3
هیات علمی دانشگاه ولی عصر رفسنجان
AUTHOR
حسین
علایی
hossein.alaei@vru.ac.ir
4
هیات علمی دانشگاه ولی عصر رفسنجان
AUTHOR
محمود رضا
رقامی
mraghami@vru.ac.ir
5
هیات علمی دانشگاه ولی عصر رفسنجان
AUTHOR
Akramian, M., Tabatabaei, S. M. F. & Mirmasoumi, M. (2008). Virulence of different strains of Agrobacterium rhizogenes on genetic transformation of four Hyoscyamus species. American-Eurasian Journal of Agricultural and Environmental Sciences, 3(5), 759-763.
1
Alaei, H., Baeyen, S., Maes, M., Hofte, M. & Heungens, K. (2009). Molecular detection of Puccinia horiana in Chrysanthemum x morifolium through conventional and real-time PCR. Journal of Microbiological Methods, 76(2), 136-145.
2
Ausubel, F., Brent, R., Kingston, R., Moore, D., Seidman, J., Smith, J. & Struhl, K. (1992). Current Protocols in Molecular Biology. Greene and Wiley. Brooklyn, NY.
3
Bais, H. P., Loyola-Vargas, V. M., Flores, H. E. & Vivanco, J. M. (2001). Root-specific metabolism: the biology and biochemistry of underground organs. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant, 37(6), 730-741.
4
Baranski, R. (2008). Genetic transformation of carrot (Daucus carota) and other Apiaceae species. Transgenic Plant Journal, 2(1), 18-38.
5
Bidondo, L. F., Pergola, M., Silvani, V., Colombo, R., Bompadre, J. & Godeas, A. (2012). Continuous and long-term monoxenic culture of the arbuscular mycorrhizal fungus Gigaspora decipiens in root organ culture. Fungal Biology, 116, 729-735.
6
Blaszkowski, J. (1994). Arbuscular fungi and mycorrhizae (Glomales) of the Hel Peninsula, Poland. Mycorrhiza, 5(1), 71-88.
7
Bolan, N. (1991). A critical review on the role of mycorrhizal fungi in the uptake of phosphorus by plants. Plant and Soil, 134(2), 189-207.
8
Christensen. B. & Muller, R. (2009). The use of Agrobacterium rhizogenes and its rol genes for quality improvement in ornamentals. European Journal of Horticultural Science, 74, 275-287.
9
Corkidi, L. & Rincon, E. (1997). Arbuscular mycorrhizae in a tropical sand dune ecosystem on the Gulf of Mexico. Mycorrhiza, 7(1), 17-23.
10
De Buck, S., Jacobs, A., Van Montagu, M. & Depicker, A. (1998). Agrobacterium tumefaciens transformation and cotransformation frequencies of Arabidopsis thaliana root explants and tobacco protoplasts. Molecular Plant-Microbe Interactions,11(6), 449-457.
11
Declerck, S., Strullu, D. G. & Plenhette, C. (1996). In vitro mass production of the arbuscualr mycorrhizal fungus Glomus versiforme associated with Ri T-DNA transformed carrot roots. Mycological Research, 100, 1237-1242.
12
Dhakulkar, S., Ganapathi, T., Bhargava, S. & Bapat, V. (2005). Induction of hairy roots in Gmelina arborea Roxb. and production of verbascoside in hairy roots. Plant Science, 169(5), 812-818.
13
Fortin, J. A., Becard, G., Declerck, S., Dalpe, Y., St-Arnaud, M., Coughlan, A. P. & Piche, Y. (2002). Arbuscular mycorrhiza on root-organ cultures. Canadian Journal of Botany, 80(1), 1-20.
14
Georgiev, M. I., Pavlov, A. I. & Bley, T. (2007). Hairy root type plant in vitro systems as sources of bioactive substances. Applied Microbiology and Biotechnology, 74(6), 1175-1185.
15
Giri, A. & Narasu, M. L. (2000). Transgenic hairy roots: recent trends and applications. Biotechnology Advances, 18(1), 1-22.
16
IJdo, M., Cranenbrouck, S. & Declerck, S. (2011). Methods for large-scale production of AM fungi: past, present and future. Mycorrhiza, 21, 1-16.
17
Klironomos, J. N. & Hart, M. M. (2002). Colonization of roots by arbuscular mycorrhizal fungi using different sources of inoculum. Mycorrhiza, 12(4), 181-184.
18
Leifert, C. & Cassells, A. (2001). Microbial hazards in plant tissue and cell cultures. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant, 37(2), 133-138.
19
Mercuri, A., Bruna, S., De Benedetti, L., Burchi, G. & Schiva, T. (2001). Modification of plant architecture in Limonium spp. induced by rol genes. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 65(3), 247-253.
20
Milen, I., Atanas, I. & Pavlov, B. (2007). Hairy root type plant in vitro systems as sources of bioactive substances. Applied Microbiology and Biotechnology, 74, 1175-85.
21
Mishra, B. N. & Ranjan, R. (2008). Growth of hairy‐root cultures in various bioreactors for the production of secondary metabolites. Biotechnology and Applied Biochemistry, 49(1), 1-10.
22
Moshtaghi, N. (2001). Hairy root production by Agrobacterium rhizogenes on Datura stramonium and compare growth rate to normal roots. M.Sc. Thesis. In Biotechnology, Ferdowsi University of Mashhad. (In Farsi).
23
Mosse, B. & Hepper, C. (1975). Vesicular-arbuscular mycorrhizal infections in root organ cultures. Physiological Plant Pathology, 5(3), 215-223.
24
Mosse, B. & Thompson, J. (1984). Vesicular-arbuscular endomycorrhizal inoculum production. I. Exploratory experiments with beans (Phaseolus vulgaris) in nutrient flow culture. Canadian Journal of Botany, 62(7), 1523-1530.
25
Nilsson, O., Tuominen, H., Sundberg, B. & Olsson, O. (1997). The Agrobacterium rhizogenes rolB and rolC promoters are expressed in pericycle cells competent to serve as root initials in transgenic hybrid aspen. Physiologia Plantarum, 100(3), 456-462.
26
Rodrigues, K. M. & Rodrigues, B. F. (2015). Endomycorrhizal association of Funneliformis mosseae with transformed roots of Linum usitatissimum: germination, colonization, and sporulation studies. Mycology, 6, 42-49.
27
Saleh, M. & Thuc, J. (2009). Assessment of hairy roots induction in Solenostemon scutellarioides leaves by different strains of Agrobacterium rhizogenes. African Journal of Biotechnology, 8(15), 3519-3523.
28
Schalamuk, S., Velazquez, S., Chidichimo, H. & Cabello, M. (2006). Fungal spore diversity of arbuscular mycorrhizal fungi associated with spring wheat: effects of tillage. Mycologia, 98(1), 16-22.
29
Shi, H. P. & Kintzios, S. (2003). Genetic transformation of Pueraria phaseoloides with Agrobacterium rhizogenes and puerarin production in hairy roots. Plant Cell Reports, 21(11), 1103-1107.
30
Shi, Z., Feng, G., Christie, P. & Li, X. (2006). Arbuscular mycorrhizal status of spring ephemerals in the desert ecosystem of Junggar Basin, China. Mycorrhiza, 16(4), 269-275.
31
Srinivasan, M., Kumar, K., Kumutha, K. & Marimuthu, P. (2014). Establishing monoxenic culture of arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intraradices through root organ culture. Journal of Applied and Natural Science, 6 (1), 290-293.
32
Taiz, L. & Zeiger, E. (2002). Plant Physiology. Sunderland, Massachusetts. 423-517.
33
Vimard, B., St-Arnaud, M., Furlan, V. & Fortin, J. A. (1999). Colonization potential of in vitro-produced arbuscular mycorrhizal fungus spores compared with a root-segment inoculum from open pot culture. Mycorrhiza, 8, 335-338.
34
Voets, L., De La Providencia, I. A., Fernandez, K., Iido, M., Cranenbrouck, S. & Declerck, S. (2009). Extraradical mycelium network of arbuscular mycorrhizal fungi allows fast colonization of seedlings under in vitro conditions. Mycorrhiza, 19, 347-356.
35
Yamakawa, T., Sekiguchi, S., Kodama, T., Smith, S. M. & Yeoman, M. M. (1998). Transformation of chilli pepper (Capsicum frutescens) with a phenylalanine ammonia-lyase gene. Plant Biotechnology, 15(4), 189-193.
36
Yazdanpanah, M., Sedaghati, E., Khodygan, P., Alaei, H. & Raghami, M. R. (2015). Investigation of immersion method in induction of carrot hairy root to in vitro culture of arbuscular mycorrhizal fungi. 14th Iranain Soil Science Congrees.
37
Mugnier, J. & Mosse, B. (1987). Vesicular-arbuscular infections in Ri-T-DNA transformed roots grown axenically. Phytopathology, 77, 1045-1050.
38
Nguyen, C., Bourgaud, F., Forlot, P. & Guckert, A. (1992). Establishment of hairy root cultures of Psoralea species. Plant Cell Reports, 11, 424-427.
39
Powell, C. L. & Bagyaraj, D. J. (1984). VA Mycorrhiza. CRC Press Inc. Boca Raton, Florida, USA.
40
Rezaee Danesh, Y., Mohammadi Goltapeh, E., Alizadeh, A. & Modarres Sanavy, M. (2006). Optimizing carrot hairy root production for monoxenic culture of arbuscular mycorrhizal fungi in Iran. Biological Sciences, 6(1), 87-91.
41
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی واکنش جوانه زنی بذر پیاز (Allium cepa) به دما با آنالیز ترمال تایم و تعیین دماهای کاردینال با استفاده از توابع رگرسیونی مختلف
این تحقیق به منظور کمی سازی واکنش سرعت جوانهزنی و درصد جوانهزنی بذر پیاز (Allium cepa) نسبت به دماهای مختلف انجام گرفت. بدینمنظور، جوانهزنی این گیاه تحت تأثیر تیمارهای دمایی (5، 10، 15، 20، 25، 30 و 35 درجه سانتی گراد) در آزمایشگاه تحقیقات بذر پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران در سال 1394 بررسی شد. نتایج نشان داد که با افزایش دما از 5 به 30 درجه سانتیگراد، سرعت جوانهزنی و درصد جوانهزنی افزایش و پس از آن کاهش یافت. با برازش چهار مدل رگرسونی غیر خطی شامل دوتکهای، دندانمانند، بتا و بتای تغییر یافته، مدلهای دندانمانند و بتای تغییر یافته به عنوان مدل برتر انتخاب که با استفاده از مدل دندان مانند دماهای پایه، مطلوب تحتانی و مطلوب فوقانی و سقف به ترتیب 3/0، 99/24، 33، 89/35 درجه سانتیگراد و با استفاده از مدل بتا دماهای پایه، مطلوب و سقف به ترتیب 2/0، 87/26 و 51/35 برآورد شد. برای پیش بینی زمان جوانهزنی در دماهای ثابت مختلف از مدل زمان-دمایی استفاده گردید که ضریب ثابت ترمال تایم برابر 43/3191 درجه سانتیگراد بر ساعت بود.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65318_614852752bb719a1ddf75753676f48ae.pdf
2018-02-20
961
971
10.22059/ijfcs.2017.217783.654198
مدل دندان مانند
مدل بتای تغییر یافته
دماهای کاردینال
جوانهزنی
ترمالتایم
مهتاب
نظری
mahtab_nazari66@yahoo.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد دانشگاه تهران
AUTHOR
آرش
مامدی
arash.mamedi@ut.ac.ir
2
دانشجوی دکتری
LEAD_AUTHOR
محمد
باقرحسینی
bhoseini@ut.ac.ir
3
عضو هیات علمی دانشگاه تهران
AUTHOR
Alvarado, V. & Bradford, K.J. (2002). A hydrothermal time model explains the cardinal temperatures for seed germination. Plant Cell Environment, 25, 1061-1069.
1
Boroumand Rezazadeh, Z. & Koocheki. A. (2006). Evaluation of cardinal temperature for three species of medicinal plants, Ajowan (Trachyspermum ammi), Fennel (Foeniculum vulgare) and Dill (Anethum graveolens). Biaban Desert Journal, 11(2), 11-16. (In Farsi)
2
Brodford, K. J. (2002). Applications of hydrothermal time to quantifying and modeling seed germination and dormancy. Weed Science, 50, 248-260.
3
Cheng, Z. & Bradford, K. J. (1999). Hydrothermal time analysis of tomato seed germination responses to priming treatments. Journal of Experimental Botany, 50(330), 89-99.
4
Ellis, R.H., Covell., S., Roberts., E.H. & Summerfield, R.J. (1986). The influence of temperature on seed germination rate in grain legumes. II. Intraspecific variation in chickpea (Cicer arietinum L.) at constant temperatures. Journal of experimental botany, 37, 1503-1515.
5
Ganjeali, A., Parsa, M. & Khatib, M. (2006). Quantifying seed germination response of Chickpea genotypes under temperature and drought stress regimes. Iranian Journal of Water, Soil and Plant in Agriculture, 8(1), 12-17. (In Farsi)
6
Jame, Y.W. & Cutforth, H.W. (2004). Simulating the effects of temperature and seeding depth on germination and emergence of spring wheat. Agricultural and Forest Meteorology, 124(3), 207-218.
7
Jami Al-Ahmadi, M. & Kafi, M. (2007). Cardinal temperatures for germination of Kochia scoparia (L.). Journal of Arid Environment, 68, 308–314.
8
Jalilian, A., Mazaheri, D., Taval afshar, R., Rahimian, R., Abdollahian, H. & Gohari, J. (2004). Evaluation of basic temperature and germination trend for monogerm sugar beet at different temperature. Sugar Beet, 20(2), 97-112.
9
Kebreab, E. & Murdoch, A. J. (1999). Modelling the effects of water stress and temperature on germination rate of (Orobanche aegyptiaca) seeds. Journal of Experimental Botany, 50(334), 655-664.
10
Kheirkhah, M., Koocheki, A., Rezvani Moghadam, P. & Nasiri Mahallati, M. (2011). Determination cardinal temperature for perennial medicinal plant Kakooti germination (Ziziphora clinopodioides Lam.). Iranian Journal of water, soil and plant in Agriculture, 8(1), 18-25. (In farsi).
11
Maguire J. D. (1962). Speed of germination-aid in selection and evaluation for seedling emergence and vigor. Crop Science, 2, 176-177.
12
Martinz, M.C., Corzo, N. & M. VilIiamiel. (2007). Biological properties of onion and garlic. Trends in Food Science Technology, 18, 609-625.
13
Mwale, S. S., Azam-Ali, S. N., Clark, J. A., Bradley, R. G. & Chatha, M. R. (1994). Effect of temperature on germination of sunflower. Seed Science and Technology, 22, 565–571.
14
Naik L.B. & Srinivas K. (1992). Seed production of vegetable crops-onion-A Review. Agricultural Review, 13, 59-80.
15
Piper, E. L., Boote, K. J., Jones, J. W. & Grimm, S. S. (1996). Comparison of two phenology models for predicting flowering and maturity date of soybean. Crop Science, 36, 1606–1614.
16
Pourreza, J., & Bahrani, A. (2012). Estimating cardinal temperatures of milk thistle (Silybum marianum) seed germination. American-Eurasian Journal of Agricultural and Environmental Science, 12, 1485-1489.
17
Ramin, A. A. (1997). The influence of temperature on germination of taree Irani (Allium ampeloprasumL. spp. iranicum W.). Seed Science and Technology, 25, 419-426.
18
Soltani, E., Soltani, A., Galeshi, S., Ghaderi-Far, F. & Zeinali, E. (2013). Seed germination modeling of wild mustard (Sinapis arvensis L.) as affected by temperature and water potential: hydrothermal time model. Journal of Plant Production, 20 (1), 1-16.
19
Tabrizi, L., Nasiri Mahalati, M. & Kochaki, A. (2004). Investigation on the cardinal temperature for germination of Plantago ovate and Plantago psyllium. Iranian Journal of Field Crops Research, 2, 143-151. (in Farsi)
20
Tolyat, M. A., Tavakkol Afshari, R., Jahansoz, M. R., Nadjafi, F. & Naghdibadi, H. A. (2014). Determination of cardinal germination temperatures of two ecotypes of Thymus daenensis subsp. daenensis. Seed Science and Technology, 42, 28-35.
21
Ueno, K. (2003). Effect of Temperature During of Immature Seed Germination. Seed Science and Technology, (31), 587-595.
22
Windauer, L. B., Martinez, J., Rapoport, D., Wassner, D., & Benech-Arnold, R. (2012). Germination responses to temperature and water potential in Jatropha curcas seeds: a hydrotime model explains the difference between dormancy expression and dormancy induction at different incubation temperatures. Annals of botany, 109(1), 265-273.
23
Yan, W. & Hunt, L. A. (1999). An Equation for modelling the temperature response of plants using only the cardinal temperatures. Annals of Botany, 84, 607-614.
24
Yin, X., Krop, M. J., McLaren, G. & Visperas, R. M. (1995). A nonlinear model for crop development as a function of temperature. Agricultural and Forest Meteorology, 77, 1-16
25
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه ویژگی های زراعی چهار رقم نخود در کشت بهاره و انتظاری با آبیاری تکمیلی
این تحقیق به منظور بررسی تأثیر دو روش کاشت انتظاری و بهاره نخود در سال زراعی 94-1393 در ایستگاه تحقیقات کشاورزی رزوه (چادگان) با استفاده از آزمایش کرتهای خردشده با طرح پایه بلوکهای کامل تصادفی در چهار تکرار انجام شد. دو روش کاشت انتظاری و بهاره به عنوان کرت اصلی و سه رقم نخود (هاشم، آزاد و آرمان) به همراه شاهد محلی به عنوان کرت فرعی در نظر گرفته شدند. در کشت بهاره ارقام آرمان، آزاد و هاشم به ترتیب با عملکردهای 1220، 1070 و 1010 کیلوگرم در هکتار به طور معنی دار عملکرد بیشتری نسبت به شاهد بومی (702 کیلوگرم در هکتار) داشتند. رقم آزاد با عملکرد 1709 کیلوگرم در هکتار در کشت انتظاری هم نسبت به رقم بومی و هم نسبت به دو رقم آرمان و هاشم به طور معنی دار عملکرد بالاتری داشت. دامنهی کارایی مصرف آب در کشت بهاره و انتظاری به ترتیب برابر ( 39/0 تا 67/0) و (15/0 تا 5/1) کیلوگرم دانه به ازاء هر متر مکعب آب آبیاری بود. استفاده از هر سه رقم جدید نخود برای کشت بهاره و رقم آزاد برای کشت انتظاری در منطقه مطالعه برتری داشته و میتواند نقش مهمی در افزایش کارایی مصرف آب داشته باشد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65327_8d26f01c786e49e59b3021746b95dd58.pdf
2018-02-20
973
984
10.22059/ijfcs.2017.200184.654051
سرمازدگی
کارایی مصرف آب
شاخص برداشت
نخود
امیرهوشنگ
جلالی
jalali51@yahoo.com
1
استاد یار پژوهش در زمینه حبوبات -مرکز تحقیقات و اموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اصفهان
LEAD_AUTHOR
رضا
خاکپور
khakpour_eng@yahoo.com
2
کارشناس مسئول حبوبات-سازمان جهاد کشاورزی استان اصفهان
AUTHOR
Abaslu, L., Kazemeini, A. & Edalat, M. (2014). The impact of drought and crop yield and yield components of chickpea. Iranian Journal of Pulses Research, 5, 79-90. (In Farsi)
1
Acharya, N.R., Shrestha, J., Sharma, S. & Lama, G.B .(2015). Study on effect of supplementary irrigation on rainfed chickpea. International Journal of Applied Sciences and Biotechnology, 3, 431-433.
2
Avila Miramontes, J.A., Padilla Zaldo, G., Martinez Heredia, D., Rivas Santoyo, F.J., Coronado Espericueta, M.A. & Ortega Murrieta, P. (2015). Response of some chickpea (Cicer arietinum L.) crop yield components to the inoculation of Mesorhizobium ciceri, Trichoderma harzianum AND Bacillus subtilis in the agricultural region costa de Hermosillo. Biotecnia, 17, 3-8.
3
Baldwin, L., Domon, J., Klimek, J.F., Fourne, F., Sellier, H., Gillet, F., Pelloux, J., Lejeune-Hénaut, I., Carpita, N.C. & Rayon, C. (2014). Structural alteration of cell wall pectin's accompanies pea development in response to cold. Phytochemistry, 104,37-47.
4
Bayat, R., Sabaghpour, H., Hatami, A. & Mehrabi, A.(2012). Effects of planting date and plant density on yield and yield components of chickpea Arman cultivars. Iranian Journal of Pulses Research, 3, 65-72. (In Farsi)
5
Croser, J.S., Clarke, H.J., Siddique, K.H.M. & Khan, T.N. (2003). Low- temperature stress: implications for Chickpea improvement. Critical Reviews in Plant Science, 22,185-219.
6
Dehghan, A., Zabihi-Afrouz, R. & Hosseini, M.(2009). Water use efficiency of crops for Iran and compare it with countries of the world. Research Institute of Planning, Economics and Rural Development, Ministry of Agriculture, Tehran, 82 pages. (In Farsi)
7
Devasirvatham, V., Gaur, P.M., Raju, T.N., Trethowan, R.M. & Tan, D.K.Y. (2015). Field response of chickpea to high temperature. Field Crop Research, 172,59-71.
8
Fateh,H., Ciocemardeh, A. & Karimpour, M. (2010). The effects of priming and sowing date on the activities of antioxidant enzymes and pea yield in dryland farming. Journal of Plant Production Technology, 10,1-16. (In Farsi)
9
Feri, F. & Nemati, A.(2000). Economic evaluation of supplemental irrigation on rainfed wheat and pulses.
10
In: Proceedings of 6th Congress of Agriculture and Plant Breeding Science, 13-16 Sep., Mazandaran university. Babolsar, Iran, pp. 211-215 (In Farsi)
11
Food and Agriculture Organization. (2013). FAOSTAT, Retrieved January 12, 2013, from http://faostat.fao.org/site/291/default.aspx.
12
Frayedi, Y. (2007). Agronomic characteristics and resistance to cold in chickpea in the autumn sowing.
13
Seed and Plant Improvment Journal, 23, 489-503. (In Farsi)
14
Ganjali, A., Parsa, M. & Sabaghpour, H.(2002). Pulses. Mashhad Jahad Uni. Press, pp: 230-225. (In Farsi)
15
Haqqani, A.M., Khan, H.R. & Malik, B.A. (2000). Influence of irrigation at various growth stages on water use efficiency and yield of chickpea. Sarhad Journal of Agriculture, 16, 123-129.
16
Jalailian, J. & Modares-Sanavi.A.M. (2004). The response of yield and yield components of chickpea cultivars to supplemental irrigation and plant density. In: Proceedings of 8th Congress of Agriculture and Plant Breeding Science, 2-4 Sep., Guilan University. Guilan, Iran, pp. 358-359 (In Farsi)
17
Karayel, R. & Bozoglu, H. (2015). The change of some physiochemical properties depending on the sowing times in local pea genotypes. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 21,109-1117.
18
Kigel, J. (1999). Culinary and nutritional quality of Phaseolus vulgaris seeds as affected by environmental factors. Biotechnology, Agronomy, Society and Environment Journal, 3,205-209.
19
Kumar, S. (2006). Climate change and crop breeding objectives in the twenty first century. Current Science, 90,1053-1054.
20
Lake, L. & Sadras, V.O. (2014). The critical period for yield determination in chickpea. Field Crops Research, 168, 1–7.
21
Leport, L., Turner, N.C., French, R.J., Barr, M.D., Duda, R., Devies, S.L., Tennant, D. & Siddique K.H.M. (1999). Physiological response of chickpea genotypes to terminal drought in a Mediterranean type environment. European Journal of Agronomy, 11, 279-291.
22
Lev-Yadun, S., Gopher, A. & Abbo, S. (2000). The cradle of agriculture. Science, 288,1602-1603.
23
Majnoon-Hosseini, N. & Hamzehei, R. (2010). The effect of the winter and spring crops yield and yield components of chickpea cultivars under dryland conditions. Iranian Journal of Pulses Research, 1, 59-68. (In Farsi)
24
Majnoon-Hosseini, N., Mohammadi, H., Poustini, K.,& Zeinaly-Khanghah, H. (2003). Effect of plant density on agronomic characteristics, chlorophyll content and stem remobilization percentage in chickpea cultivars. Iran Agricultural Science Journal, 34, 1011-1019. (In Farsi)
25
Malhotra, R.S. & Saxena, M.C (1993) Screening for cold and heat tolerance in cool-season food legumes. In: K.B. Singh and M.C. Saxena (Eds.). Breeding for Stress Tolerance in Cool-Season Food Legume. John Wiley and Sons, Chichester, U. p. 428-438.
26
Million, E., Naseri, W. & Haddad, I. (2005). Response of chickpea (Cicer arietinum L.) genotypes to soil moisture stress at different growth stages. Field Crops Research, 30, 331-341.
27
Moradi, R. (1995). Compare the yield and yield components of Pea in entezary and spring cultivation in Karaj. MSc. thesis, Faculty of Agriculture, Tehran University, Iran, (In Farsi)
28
Movaghar-Moghadam, H. & Galmakani,T .(2002). Calculation and monitoring of effective rainfall in irrigation systems. Bulletin of the Institute of Ecology, 4, 13-21. (In Farsi)
29
Mustafavi, S.H., Ghassemi K., Shafagh-Kalvanagh, J. & Movludi, A. (2013). Effect of irrigation disruption at reproductive stages on grain filling of chickpea cultivars. International Journal of Agronomy and Plant Production, 4,863-868.
30
Nasar-Abbas, S.M., Plummer, J.A., Siddique, K.H.M., White, P., Harris, D. & Dods K. (2008). Cooking quality of faba bean after storage at high temperature and the role of lignin's and other phenolics in bean hardening. LWT– Food Science and Technology, 41, 1260–1267.
31
Nezami, A., Bagheri, A., Rahimian, H.,Kafi, M. & Nasirimahalati, M.(1996). Assessment of pea genotypes under controlled conditions. Science and Technology of Agriculture and Natural Resources, 4,257-268. (In Farsi)
32
Ozdemir, S. (2005). Effect of municipal solid waste compost on nodulation plant growth and mineral composition of chickpea in marginal land. Fresenius Environmental Bulletin, 14, 599-604.
33
Ozdemir, S. & Karadavut, U. (2003). Comparison of the performance of autumn and spring sowing of chickpeas in a temperature region. Turkish Journal of Agriculture Forestry, 27, 345-352.
34
Pacucci, G., Troccoli, C. & Leoni, B. (2006). Effect of supplementary irrigation on yield of chickpea genotypes in a Mediterranean climate. Agricultural Engineering International. Retrieved Feb. 21, 2016, from https://ecommons.cornell.edu/handle/1813/10570.
35
Rachwa-Rosiaka, D., Nebesnya, E., & Budryna, G. (2015). Chickpeas—composition, nutritional value, health benefits, application to bread and snacks: A review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 55, 1137-1145.
36
Reyes-Moreno, C., Rouzaud-Sandez, O., Milan-Carrillo, J., Garzon-Tiznado, J.A. & Camacho-Hernandez, L. (2001). Hard-to-cook tendency of chickpea varieties. Journal of the Science of Food and Agriculture, 81,1008-1012.
37
Shaban, M., Mansourifar, S., Ghobady, M. & Sabaghpour, H.(2013). Phonological and morphological characteristics and their correlation with yield in chickpea cultivars under drought stress and nitrogen in Kermanshah. Iranian Journal of Pulses Research, 4,59-68. (In Farsi).
38
Sharma, R., Devi, R., Shrma, R.K. & Mehla, J.C. (2013). Efficacy of some botanicals against pulse beetle, in chickpea. Legume Research, 36,125-130.
39
Silim, S.N., Saxana, M.C. & Singh, K.B. (1993). Adaptation of spring-sown chickpea to the Mediterranean basin. II. Factors influencing yield under drought. Field Crops Research, 34, 137-141.
40
Singh, K.B. (1991). Winter chickpea: problems and potential in the Mediterranean region. Ciheam- Options Mediterranean's, 9, 25-34.
41
Singh, K.B. (1993). Problems and prospects of stress resistance breeding in Chickpea: In: K.B. Singh(Ed), Breeding for stress tolerance in cool- season food legumes, (pp. 17-37). John Wiley and Sons, Chi Chester.
42
Singh, K.B. & Saxena. M.C. (1999). Chickpeas. Macmillan Education Ltd., (2th ed.). London, Bisingtone.
43
Sugui, F. P. & Sugui, C. C. (2002). Response of Chickpea to Dates of Sowing in Ilocos Norte, Philippines. International Chickpea and Pigeon pea Newsletter, 9, 13-21.
44
Tanner, C.B. & Sinclair, T.R. (1983). Efficient water use in crop production: Research or re-research? In H.M. Taylor et al. (Ed.), Limitations to efficient water use in crop production. (pp. 1-27). American Statistical Association, Madison, WI.
45
Younesnejad, M. & Seyedi, F. (2010). Investigate the combined effect supplemental irrigation and planting peas in the Gonbad on yield and water use efficiency. Electronic Journal of crop production, 4, 89-105. (In Farsi)
46
ORIGINAL_ARTICLE
تغییرات عملکرد و اجزای عملکرد جو پاییزه در واکنش به فراهمی نیتروژن و تداخل علفهای هرز
مدیریتعنصرهایغذاییبهویژه نیتروژن، رقابتبینگیاهزراعیوعلفهای هرزرا تحتتأثیرقرارمیدهد. از اینرو، برای بررسی تأثیر نیتروژن و تداخل علفهای هرز برعملکردواجزایعملکرد جوی پاییزۀ رقم ماکویی، آزمایشی مزرعهای بهصورت کرتهای خردشده (اسپلیت پلات) در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار درایستگاهتحقیقاتی دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه تبریز انجامشد.تیمارهای آزمایش شامل چهار سطح نیتروژن (0، 40، 80 و 120 کیلوگرم نیتروژن خالص در هکتار) و ده دورۀ تداخل علفهای هرز(بهصورت دورههای بدون علف هرز و آلوده به علف هرز) بودند که به ترتیب در کرتهای اصلی و فرعی قرار گرفتند. نتایج نشان داد، با افزایش نیتروژن مصرفی، شمار سنبله در واحد سطح، عملکرد دانه و عملکرد زیستتودۀ (بیوماس) جو افزایش و شمار دانه در سنبله کاهش یافت. افزایش رقابت و تداخل علفهای هرز به افت معنیدار شمار سنبله در واحد سطح، عملکرد زیستتوده و عملکرد دانۀ جو منجر شد. بر پایۀیافتههایاین پژوهش،شمار سنبله در واحد سطح حساسترین جزء عملکرد جو به کمبود نیتروژن و تداخل علفهای هرز بود. بهطورکلی با کاربرد نیتروژن در حدود 80 کیلوگرم نیتروژن خالص در هکتار و مدیریت هر چه بهتر علفهای هرز از طریق کاهش طول دورۀ تداخل علفهای هرز با گیاه جو، در شرایط همسان این آزمایش میتوان به عملکرد دانۀ بالا در این گیاه زراعی دست یافت.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65331_a50db4b732b2397009e76a74c52029b4.pdf
2018-02-20
985
996
10.22059/ijfcs.2017.141541.654027
رقابت
شمار سنبله
علفهرز
عملکرد دانه
کود اوره
جلیل
شفق کلوانق
shafagh.jalil@gmail.com
1
دانشگاه تبریز
LEAD_AUTHOR
سعید
زهتاب سلماسی
zehtabsalmasi@gmail.com
2
هیأت علمی گروه اکوفیزیولوژی گیاهی- دانشکده کشاورزی- دانشگاه تبریز
AUTHOR
صفر
نصراله زاده
nasr.tbu@gmail.com
3
هیأت علمی گروه اکوفیزیولوژی گیاهی- دانشکده کشاورزی- دانشگاه تبریز
AUTHOR
سهیلا
دست برهان
dastborhan.s@gmail.com
4
دکترای فیزیولوژی گیاهان زراعی
AUTHOR
نسرین
هاشمی عمیدی
hashemi.a.z@gmail.com
5
دانش آموخته کارشناسی زراعت و اصلاح نباتات
AUTHOR
Blackshaw, R.E. (2004). Application method of nitrogen fertilizer affects weed growth and competition with winter wheat. Weed Biology and Management, 4: 103-113.
1
Blackshaw, R.E., Molnar, L.J. & Janzen, H.H. (2004). Nitrogen fertilizer timing and application method affect weed growth and competition with spring wheat. Weed Science, 52: 614-622.
2
Carlson, H.L. & Hill, J.E. (1986). Wild oat (Avena fatua) competition with spring wheat: effects of nitrogen fertilization. Weed Science, 34: 29-33.
3
Cathcart R.J. & Swanton, C.J. (2004). Nitrogen and green foxtail (Setaria viridis) competition effects on corn growth and development. Weed Science, 52:1039-1049.
4
Corre-Hellou, G. &. Crozat, Y. (2005). N2 fixation and N supply in organic pea (Pisum sativum L.) cropping system as affected by weeds and pea weevil (Sitona lineatus L.). European Journal of Agronomy, 22: 449-458.
5
David, C., Stephan, F.W. & Clarence, J.S. (1995). Influence of common ragweed (Ambrosia artemisifolia) time of emergence and density of white bean (Phaseolus vulgaris). Weed Science, 43: 375-380.
6
Davis, A.S. (2006). When does it make sense to target the weed seed bank? Weed Science, 54: 558-565.
7
Dehghanian, H., Nasrollahzadeh, S. & Shafagh-Kolvanagh, J. (2013). Effect of weed interference on performance of grain corn (Zea mays L.) at different plant densities. Journal of Sustainable Agriculture and Production Science, 23(2): 37-47. (In Farsi).
8
Dordas, C.A., & Sioulas, C. (2009). Dry matter and nitrogen accumulation, partitioning, and retranslocation in Safflower (Carthamus tinctorius L.) as affected by nitrogen fertilization. Field Crops Research, 110: 35-43.
9
Evans, S.P., Knezevic, S.Z., Lindquist, J.L. & Shapiro, C.A. (2003). Influence of nitrogen and duration of weed interference on corn growth and development. Weed Science, 51: 546-556.
10
FAO. (2014). Food and Agriculture Organization of the United Nations. http://www.fao.org/faostat/en/#data/QC
11
Fuladvand, M., Yadavi, A.R. & Movahedi-Dehnavi, M. (2014). Effect of plant density and nitrogen fertilizer management on agronomical characteristics of safflower under weed competition. Electronic Journal of Crop Production, 7(3): 163-181. (In Farsi).
12
Husseini, S.A., Rashed-Mohassel, M.H., Nassiri-Mahallati, M. & Hajmohammadnia-Ghalibaf, K. (2009). The influence of nitrogen and weed interference periods on corn (Zea mays L.) yield and yield components. Journal of Plant Protection, 23: 97-105. (In Farsi).
13
Izadi, F., Bagheri, A.R. & Miri, H.R. (2013). The effect of nitrogen and weeds interference on millet (Panicum miliaceum) yield and yield components. Journal of Plant Ecophysiology, 5: 85-94. (In Farsi).
14
Izadi-Darbandi, E., Rashed-Mohassel, M.H. & Nassiri-Mahallati, M. (2003). Study of competitive effects of barnyardgrass (Echinochloa crus-galli) and redroot pigweed (Amaranthus retroflexus) on dry bean (Phaseolus vulgaris). Iranian Journal of Field Crop Research, 1: 13-22. (In Farsi).
15
Jafarizadeh, Sh. & Modhej, A. (2012). Effect of Common Mallow (Malva spp.) competitiveness on grain yield and yield components in wheat under different levels of nitrogen. Iranian Journal of Field Crop Science, 42(4): 767-777. (In Farsi).
16
Kristensen, L., Olsen, J. & Winer, J. (2008). Crop density, sowing pattern, and nitrogen fertilization effects on weed suppression and yield in spring wheat. Weed Science, 56: 97-102.
17
Kropff, M.J. (1993). Mechanisms of weed competition for light. In: M.J. Kropff and H.H. Van Laar (Eds.), Modelig Crop-Weed Interactions. (pp. 33-61.), CAB International, Wallingford, UK.
18
Lindquist, J.L., Barker, D.C., Knezevic, S.Z., Martin, A.R. & Walters, D.T. (2007). Comparative nitrogen uptake and distribution in corn and velvetleaf (AbutilonTheophrasti). Weed Science, 55: 102-110.
19
Marttin S.G., Van Acker, R.C. & Friesen, L.F. (2001). Critical period of weed control in spring canola. Weed Science, 49: 326-333.
20
Mennan, H. & Zandstra, B.H. (2005). Effect of wheat (Triticum aestivum) cultivars and seeding rate on yield loss from Galium aparine (cleavers). Crop Protection, 24: 1061-1067.
21
Ministry of Agriculture Jahad. (2015). Agricultural statistics. Volume 1, Crop production; 2013-2014, 158 p. (In Farsi).
22
Mirzaei, R. (2003). Investigation of competition between Zea mays and pigweed in different plant densities. M.Sc. Thesis. Mashhad Ferdowsi University. (In Farsi).
23
Mohammaddoust-Chamanabad, H.R., Hemmati, Kh., Asghari, A. & Barmaki, M. (2013). Effect of nitrogen and weed interference on some agronomic traits, five cultivars wheat yield and yield components. Journal of Sustainable Agriculture and Production Science, 23(4): 131-140. (In Farsi).
24
Mohammadi, G., Javanshir, A., Khooie, F.R., Mohammadi, S.A. & Zehtab-Salmasi, S. (2005). Critical period of weed interference in ckickpea. Weed Research, 45: 57-63.
25
Monaco, T.J., Weller, S.C. & Ashton, F.M. (2002). Weed Science: Principles and Practices (4th ed.). United States of America, 671 p.
26
Nasrollahzadeh, S., Zehtab Salmasi, S. & Shafagh-Kolvanagh, J. (2010). Effects of nitrogen rates on critical period of natural weed interference on barley yield (Hordeum vulgare L. Var. Makoei). Journal of Sustainable Agriculture and Production Science, 20(3): 97-112. (In Farsi).
27
Sadeghi, H. & Kazemeini, A.R. (2011). Effect of crop residue management and nitrogen fertilizer on grain yield and yield components of two barley cultivars under dryland conditions. Iranian Journal of Crop Sciences, 13: 436-451. (In Farsi).
28
Sadras, V.O., Bange, M.P. & Milroy, S.P. (1997). Reproductive allocation of cotton in response to plant and environmental factors. Annals of Botany,80: 75-81.
29
Sepehri, A., Modarres-sanavi, S.A., Gharehyazi, B. & Yamini, Y. (2002). Effect of water deficit and different nitrogen rates on growth and development stages, yield and yield component of maize (Zea mays L.). Iranian Journal of Crop Sciences, 4(3): 184-195. (In Farsi).
30
Shafagh-Kolvanagh, J., Javanshir, A., Zehtab-Salmasi, S., Moghaddam, M., Dabbagh-Mohammadi-Nasab, A. & Dastborhan, S. (2008a). Allelopatihic effects of some annual and perennial weed species on germination and seedling growth of soybean. Agricultural Science, 18: 73-80. (In Farsi).
31
Shafagh-Kolvanagh, J., Zehtab-Salmasi, S., Javanshir, A., Moghaddam, M. & Dabbagh-Mohammadi-Nasab, A. (2008b). Effects of nitrogen and duration of weed interference on grain yield and SPAD (chlorophyll) value of soybean (Glycine max (L). Merrill). Journal of Food, Agriculture and Environment, 6: 368-373.
32
Shafagh-Kolvanagh, J., Alami-Milani, M. & Azadmard-Talesh-Makaeel, A. (2015). Critical period of weed control in dragon’s head (Lallemantia iberica Fisch. et Mey). Journal of Sustainable Agriculture and Production Science, 25: 15-25. (In Farsi).
33
Shrefler, J.W., Dusky, J.A., Shilling, D.G., Brecke, B.J. & Sanchez, C.A. (1994). Effects of phosphorus fertility on competition between lettuce (Lactuca sativa) and spiny amaranth (Amaranthus spinosus). Weed Science, 42: 556-560.
34
Schmitt, A.M., Lamp, A.J., Randall, W.G., Orf, J. & Rehm, W.G. (2001). In-season fertilizer nitrogen applications for soybean in Minnesota. Agronomy Journal, 93: 983-988.
35
Rezvani, H., Asghari, J., Ehteshami, S.M.R. & Kamkar, B. (2013). Study the response of yield and component yield of wheat cultivars in competition with wild mustard in Gorgan. Electronic Journal of Crop Production, 6: 187-214. (In Farsi).
36
Togay, N., Tepe, I., Togay, Y. & Cig, F. (2009). Nitrogen levels and application methods affect weed biomass, yield and yield components in Tir wheat. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science, 37: 105-111.
37
Vila, M., Williamson, M. & Lonsdale, M. (2004). Competition experiments on alien weeds with crops: lessons for measuring plant invasion impact? Biological Invasions, 6:59-69.
38
Warwick, S.I., Beckie, H.J., Thomas, A.G. & Mcdonald, T. (2000). The biology of Canadian Weeds. 8. Sinapis arvensis. L. (updated). Canadian Journal of Plant Sciences, 55(1): 171-183.
39
Zadoks, J.C., Chang, T.T. & Konzak, C.F. (1974). A decimal code for the growth stages of cereals. Weed Research, 14: 415-421.
40
ORIGINAL_ARTICLE
اثر پیشکاشت گیاه پوششی و کاربرد نیتروژن بر برخی صفات کیفی و عملکرد ارقام ذرت علوفهای
بهمنظور بررسی اثر پیشکاشت گیاه پوششی و کاربرد نیتروژن بر برخی صفات کیفی و عملکرد ارقام مختلف ذرت علوفهای آزمایشی در دانشگاه تهران به صورت کرتهای دو بار خردشده در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی در سه تکرار اجرا شد. عوامل مورد بررسی شامل پیشکاشت ماشک به عنوان کرت اصلی در سه سطح (آیش (نکاشت)، کشت ماشک بهعنوان علوفه و کشت ماشک بهعنوان کود سبز)، کود نیتروژن به عنوان کرت فرعی در سه سطح (صفر، 50 و 100 درصد مقدار توصیهشده) و رقم ذرت علوفهای به عنوان کرت فرعیفرعی در دو سطح (رقم سایمون و ZP677) بودند. صفات مورد بررسی شامل درصد قابلیت هضم ماده خشک (DMD)، کربوهیدراتهای محلول در آب (WSC)، پروتئین خام (CP)، فیبر خام (CF)، خاکستر، NDF، ADF، عملکرد پروتئین (Kg/ha) و عملکرد ماده خشک (Kg/ha) ذرت علوفهای بودند. نتایج نشان داد که نکاشت ماشک (12/32) نسبت به تیمارهای کود سبز (68/28) و علوفه (08/31) تأثیر قابلتوجهی بر درصد WSC داشت. بیشترین و کمترین درصد ADF به ترتیب در کود سبز (87/22) و آیش (99/15) مشاهده شد. کود سبز و آیش به ترتیب بیشترین (87/35) و کمترین (45/31) تأثیر را روی درصد NDF داشتند. درصد NDF در 50% مقدار توصیهشده کود اوره بیشترین (41/35) و در صفر درصد اوره کمترین (72/31) میزان داشت. بیشترین (09/35) و کمترین (17/32) درصد CF به ترتیب در اثر متقابل رقم ZP677 × پیشکشت ماشک بهعنوان علوفه و اثر متقابل رقم سایمون × آیش حاصل شد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65350_87001562322b8a2d657d833667e1a72a.pdf
2018-02-20
997
1014
10.22059/ijfcs.2017.140675.654019
کشت دوگانه
کود سبز
کیفیت علوفه
کود شیمیایی
میثم
طاهری
taheri.meysam@ut.ac.ir
1
مدیر شرکت خصوصی
AUTHOR
فرهاد
بیات
bayatfarhad@ut.ac.ir
2
دانشجو دکتری-پردیس کشاورزی و منابع طبیعی
AUTHOR
حسین
مقدم
hmoghadam@ut.ac.ir
3
3. استادیار و عضو هیئت علمی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج.
LEAD_AUTHOR
ناصر
مجنون حسینی
mhoseini@ut.ac.ir
4
4. استاد و عضو هیئت علمی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج.
AUTHOR
Agha-alikhani, M., Eshagh-Ahmad M. & Modarres-Sanavi, A. D. (2008). Effect of planting density and nitrogen rates on yield and forage quality of pearl millet. Research and Construction, 77, 20-27. (In Farsi)
1
Ahmadi, N., Zarghami, R., Ghoshchi, F. & Zand, B. (2005). Effect of nitrogen fertilizer and plant density on yield, protein and crude fiber percentage of silage corn in Varamin region. The Abstract of the 8th agronomy and plant breeding Science Congress of Iran. 330 P.
2
Albayrak, S., M. Turk, O. Yuksel, & Yilmaz, M. (2011). Forage yield and the quality of perennial legume-grass mixtures under rainfed conditions. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 39(1), 114-118.
3
Almodares, M., Jafarinia, M. & Hadi, M. R. (2009). The Effects of Nitrogen Fertilizer on Chemical Compositions in Corn and Sweet Sorghum. American-Eurasian Journal of Agricultural and Environment Science, 6(4), 441-446.
4
Arzani, H. (2009). Quality forage and daily requirement of grazing animal in pasture. Tehran University Press, 354 P. (In Farsi)
5
Ayub, M, Nadeem, M. A., Sharar, M. S. & Mahmood, N. (2002). Response of maize (Zea mays L.) fodder to different levels of nitrogen and phosphorus. Asian Journal of Plant Sciences. 1(4), 352-354.
6
Bingol, N. T., Karsli, M. A., Yilmaz, I. H. & Bolat, D. (2007). The effects of planting time and combination on the nutrient composition and digestible dry matter yield of four mixtures of vetch varieties intercropped with barley. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences, 31, 297-302.
7
Blackshaw, R. E., Moyer, R. C. & Boswall, A. L. (2001). Suitability of Anderson sweet clover as a fallow replacement in semi-arid cropping system. Agronomy Journal, 93, 863-868.
8
Brawand, H., & Hossner, L. R. (1976). Nutrient Content of Sorghum Leaves and Grain as Influenced by Long-Term Crop Rotation and Fertilizer Treatment 1. Agronomy Journal, 68(2), 277-280.
9
Budakli-Carpici, E., Celik, N. & Bayram, G. (2010). Yield and quality of forage maize as influenced by plant density and nitrogen rate. Turkish Journal of Field Crops, 15(2), 128-132.
10
Cherr, C. M., Scholberg, J. M. S. & McSorley, R. (2006). Green manure approaches to crop production: A Synthesis. Agronomy Journal, 98, 302-319.
11
Clark A. J., Decker A. M. & Meisinger, J. J. (1994). Seeding rate and kill date effects on hairy vetch-cereal rye cover crop mixtures for corn production. Agronomy Journal, 86, 1065-1070.
12
Coleman, S. E. & Moore, J. E. (2003). Feed quality and animal performance. Field Crops Research, 84(1-2), 17-29.
13
Contreras-Govea, F. E., Muck, R. E., Armstrong, K. L. & Albrecht, K. A. (2009). Nutritive value of corn silage in mixture with climbing beans. Animal Feed Science and Technology, 150, 1-8.
14
Decker, A. M., Clark, A. J. Meisinger, J. J. Mulford, F. R. & McIntosh, M. S. (1994). Legume cover crop contributions to no-tillage corn production systems. Agronomy journal, 86, 126-135.
15
Dinnes, D. L., Karlen, D. L., Jaynes, D. B., Kaspar, T. C., Hatfield, J. L., Colvin, T. S. & Cambardella, C. A. (2002). Nitrogen management strategies to reduce nitrate leaching in tile-drained Midwestern soils. Agronomy Journal, 94, 153-171.
16
Ditsch, D. D. & Bitzer, M. J. (2005). Managing small grains for livestock forage. Agronomy Department of Kent University. Retrieved December, 2014, from http://www.ca.uky.edu/agc/pubs/agr/agr160/agr160.htm
17
Dolatmande-shahri, N. & Tahmasbi, I. (2016). Effect of nitrogen fertilizer and plant density on yield and forage quality of maize (MV500 cv) in second cultivation. Better farming, 18(1), 173-182. (In Farsi)
18
Evans, J., Scott, G., Lemerle, D., Kaiser, A., Orchard, B., Murray, G. M. & Amestrong, E. L. (2003). Impact of legume break crops on yield and grain quality of wheat and relationship with soil mineral N and crop N content. Australian Journal of Agricultural Research, 54, 777-788.
19
Fateh, E., Chaychi, M. R., Sharifi-Ashurabad, E., Mazaheri, D. & Ashraf-Jafari, A. (2010). Effects of Chemical and Organic Fertilizers on Some Silage Chemical Properties of Globe Artichoke (Cynara scolymus). Plant Production, 33(1), 15-31.
20
Fathi, G., Mojedam, M., Siadat, S. A., & Mohammadi, G. N. (2002). Effect of different levels of nitrogen and cutting time on grain and forage yield of Karoon Cultiver of barley. JWSS-Isfahan University of Technology, 5(4), 97-106.
21
Galani, N. N., Lomte, M. H. & Choudhari, S. D. (1991). Juice yield and brix as affected by genotype, plant density and N levels in high-energy sorghum. Bharatiy Sugar, 16, 23-24.
22
Gardner, F. P. & Wiggans, S. C. (1959). Effect of clipping and nitrogen fertilization on forage and grain yields of spring oats. Agronomy Journal, 51, 566-568.
23
Ghodsi, M. (1997). Effects of nitrogen fertilizer on agronomic characteristics, green fodder and grain yield of barley and triticale cultivars. The 4th agronomy and plants breeding Science Congress of Iran, Isfahan University of Technology.
24
Greene, W. L., Johnson, A. B., Paterson, J. & Ansotegui, R. (1998). Role of trace minerals in cow-calf cycle examined. In: Feedstuffs Newspaper, 70, 12-27.
25
Hansen, E. M., & Djurhuus, J. (1997). Yield and N uptake as affected by soil tillage and catch crop. Soil and Tillage Research, 42(4), 241-252.
26
Harms, C. L., & Tucker, B. B. (1973). Influence of Nitrogen Fertilization and Other Factors on Yield, Prussic Acid, Nitrate, and Total Nitrogen Concentrations of Sudangarss Cultivars 1. Agronomy Journal, 65(1), 21-26.
27
Henriksen, T. M. & Breland, T. A. (1999). Nitrogen availability effects on carbon mineralization, fungal and bacterial growth, and enzyme activities during decomposition of wheat straw in soil. Soil Biology and Biochemistry, 31(8), 1121-1134.
28
Jafari, A. A., Connolly, V., Frolich, A. & Walsh, E. K. (2003). A note on estimation of quality in perennial ryegrass by near infrared spectroscopy. Irish Journal of Agricultural and Food Research, 42, 293-299.
29
Jat, R. S. & Ahlawat, I. P. S. (2006). Direct and residual effect of vermi-compost, bio-fertilizers and phosphorus on soil nutrient dynamics and productivity of chickpea-fodder maize sequence. Journal of Sustainable Agriculture, 28(1), 41-54.
30
Javadi, H., Saberi, M. H., Azari-Nasrabad, A. & Khosravi, S. (2010). Effect of amounts and methods of nitrogen application on yield and quality of forage sorghum (Speedfeed cv). Iranian Journal of Field Crops Research, 8(3), 384-392. (In Farsi)
31
Karimi, H. (1991). Range Management. Tehran University Publication, 372 P. (In Farsi)
32
Kephart, K. D., Buxton, D.R. & Hill, R.R. (1989). Morphology of alfalfa divergently selected for herbage lignin concentration. Crop Science, 29, 293-296.
33
Keskin, B., Akdeniz, H., Yilmaz, I. H. & Turan, N. (2005). Yield and Quality of Forage Corn (Zea mays L.) as Influenced by Cultivar and Nitrogen Rate. Journal of Agronomy, 4(2), 138-141.
34
Khajehpour, M. R. (1995). Agronomy Principle. Esfahan University Publication, P. 386. (In Farsi)
35
Kiani, S., Siadat, S. A. Moradi-Telavat, M. R., Abdali-Mashhadi, A. R. & Sari, M. (2014). Effect of nitrogen fertilizer application on forage yield and quality of barley (Hordeum vulgare L.) and fennel (Foeniculum vulgare L.) intercropping. Iranian Journal of Crop Sciences, 16(2), 77-90. (In Farsi)
36
Koochaki, A. R. (1994). Agronomy in dry areas. Mashhad University Press, 200 p.
37
Kuo, S. & Jellum, E. J. (2002). Influence of winter cover crop and residue management on soil nitrogen availability and corn yield. Agronomy Journal, 94, 501-508.
38
Lauriault, L. M., & Kirksey, R. E. (2004). Yield and nutritive value of irrigated winter cereal forage grass–legume intercrops in the Southern High Plains, USA. Agronomy Journal, 96(2), 352-358.
39
Lawlor, D. W., Lemaire, G. & Gastal, F. (2001). Nitrogen, plant growth and crop yield. Lea PJ and Morot Guardu GF (Eds), Berlin: SpringerVerlag. Pp. 343-367.
40
Majidian, M. (2008). Effects of nitrogen fertilizer, manure, and water stress in agro systems during different growth stages on quantitative and qualitative agronomic characteristics of corn (Zea mays L.). PhD. Thesis, Tarbiat Modares University, Tehran. (In Farsi)
41
Martin, G. W., & Touchton, J. T. (1983). Legumes as a cover crop and source of nitrogen. Journal of soil and water conservation, 38(3), 214-216.
42
Minson, D. J. (1990). Forage in Ruminant Nutrition. Academic Press, 734 p.
43
Minsoon, R. C. & Cooper, M. (1998). Sorghum hybrid differences in grain yield and nitrogen concentration under low soil nitrogen availability. II. Hybrids with contrasting phenology. Australian Journal of Agricultural Research, 49, 1277-86.
44
Mirlohi, A. F., Bozorgvar, N. & Basiri, M. (2000). Effects of different amounts of nitrogen fertilizer on growth, yield and silage quality in three hybrid of forage sorghum. Science and Technology of Agriculture & Natural Resources, 4(2), 105-115.
45
Modirshanechi, M. (1992). Forage Production and Management. IRAN, Mashhad, 589 P. (In Farsi)
46
Muller, T., Thorup-Kristensen, K., Magid, J., Jensen, L. S. & Soren, H. (2006). Catch crops affect nitrogen dynamics in organic systems without livestock Husbandry-Simulations with the DAISY model. Ecological Modelling, 191, 538-544.
47
Mullins, G. L, Alley, S. E. & Reeves, D. W. (1998). Tropical Maize Response to Nitrogen and Starter Fertilizer Under Strip and Conventional Tillage Systems in Southern Alabama. Soil and Tillage Research. 45, 1-15.
48
Ngouajio, M., & Mc Giffen, M. E. (2002). Going organic changes weed population dynamic. Hort Technology, 12, 155-159.
49
Orhan, E., Esitken, A., Ercisli, S., Turan, M., & Sahin, F. (2006). Effects of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) on yield, growth and nutrient contents in organically growing raspberry. Scientia Horticulturae, 111(1), 38-43.
50
Patel, P. C., & Patel, J. C. (1993). Effect of nitrogen levels and time of application with cutting systems on yield and protein content of oats forage (Avena sativa L.). Gujarat Agricultural University Research Journal.
51
Pramanik, M. Y. A., Sarkar, M. A. R., Islam, M. A. & Samad, M. A. (2004). Effect of green manures and different levels of nitrogen on the yield and yield components of transplant Aman rice. Agronomy Journal, 3(2), 122-125.
52
Rinbott, T. M., Conley, P. S., & Belevins, D. G. (2004). No-tillage corn and grain sorghum response to cover crop and nitrogen fertilization. Agronomy Journal, 96, 1158-1163.
53
Romroudi-khastehdel, M. (2007). Impact of farming techniques (cover crops, tillage systems and different levels of nitrogen) on yield and quality of forage sorghum. PhD thesis of Agriculture, College of Agriculture, Tehran University. 160 p.
54
Russell, W. & Hallauure, A. R. (1988). Corn in hybridization of crop plants. Fehr WR and Hadley HH (Eds.). American Society of Agronomy, Madison. WI.
55
Saeid-Nejad, A. H., Rezvani-Moghaddam, P. Khazaeii, H. R. & Nasiri-Mahallati, M. (2012). Effect of organic fertilizers, bio-fertilizers and chemical fertilizers on the dry matter digestibility and crude protein of forage sorghum (Speedfeed cv). Iranian Journal of Field Crops Research, 9(4), 623-630
56
Sepahvand, A. & Ashraf-jafari, A. (2014). Study on yield and forage quality in 14 landraces bitter vetch (Vicia ervillia) in irrigated and rainfed conditions in Khorramabad. Journal of Agronomy, 102, 20-30. (In Farsi)
57
Shipley, P. R., J. J. Meisinger. & A. M. Decker. (1992). Conserving residual corn fertilizer nitrogen with winter cover crops. Agronomy Journal, 84(5), 869-876.
58
Singh, M. K., Pal, S. K., Thakur, R., & Verma, U. N. (1997). Energy input-output relationship of cropping systems. Indian Journal of Agricultural Sciences, 67(6), 262-264.
59
Smith, K. F., Reed, K. F. M. & Foot, J. Z. (1997). An assessment of the relative importance of specific traits for the genetic improvement of nutritive value in dairy pasture. Grass and Forage Science, 52(2), 167-175.
60
Sood, B., Rohitashav, R. & Sharma, V. K. (1994). Effects of N on growth and fodder yield of barley variety under rainfed conditions. Field Crop Abstracts, 48(6), 37-46.
61
Sumner, D. C., Martin, W. E. & Etchegary, H. S. (1965). Dry matter and protein yield and nitrate content of piper sudangrass in response to nitrogen fertilization. Agronomy Journal, 57, 351-354.
62
Tariq, M. (1998). Fodder yield and quality of two maize varieties at different nitrogen levels. Agronomy Department of Agricultural University, Faisalabad, Pakistan. M.Sc. Thesis.
63
Taghizadeh, R. & Sharifi, R. S, (2009). Response of maize (Zea mays L.) cultivars to different levels of nitrogen fertilizer. Journal of Food, Agriculture & Environment, 7(3/4), 518-521.
64
Tolera, A. & Sundstol, F. (1999). Morphological fractions of maize Stover harvested at different stages of grain maturity and nutritive value of different fractions of the Stover. Animal Feed Science Technology, 81, 1-16.
65
Twidwell, E. K., Johnson, K. D., Cherney, J. H. & Violence, J. J. (1988). Forage quality and digestion kinetics of switchgrass herbage and morphological components. Crop Science, 28, 778-782.
66
Valk, H., Kappers, I. E. & Tamminga, S. (1996). In Sacco degradation characteristics of organic matter, neutral detergent fiber and crude protein of fresh grass fertilized with different amounts of nitrogen. Animal Feed Science & Technology, 63, 63-87.
67
Vos, J., Vander Putten, P. E. L., & Birch, C. J. (2005). Effect of nitrogen supply on leaf appearance, leaf nitrogen economy and photosynthetic maize (Zea mays L.). Field Crops Research, 93, 64-73.
68
Walton, P. D. (1982). Production and management of cultivated forage. First Edition. Reston Publishing Company, VA, 336 pp.
69
Ward, J. D., Redfearn, D. D., McCormick, M. E., & Cuomo, G. J. (2001). Chemical composition, ensiling characteristics, and apparent digestibility of summer annual forages in a subtropical double-cropping system with annual ryegrass. Journal of Dairy Science, 84, 177-182.
70
Wei, Y., & Liu, Y. (2005). Effects of sewage sludge compost application on crops and cropland in a 3-year field study. Chemosphere, 59(9), 1257-1265.
71
Wheeler, J. L. & Corbett, J. L. (1989). Criteria for breeding forages of improved nutritive value: results of a Delphi Survey. Grass and Forage Science, 44(1), 77-83.
72
Wilson, J. R. (1994). Cell wall characteristics in relation to forage digestion by ruminants. Journal of Agricultural Science, 122(2), 173-182.
73
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اثر روش های خاک ورزی بر خصوصیات شیمیایی، بیولوژیکی خاک و صفات کمی ذرت علوفه ای در تناوب با نخود
به منظور ارزیابی تاثیر روشهای مختلف خاکورزی بر عملکرد ذرت علوفه ای در تناوب با نخود و خصوصیات شیمیایی و بیولوژیکی خاک، آزمایشی طی دو سال 94-1392 در مزرعه پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران اجرا شد. طرح آزمایش به صورت اسپلیت پلات در قالب طرح پایه بلوک کامل تصادفی با 4 تکرار اجرا شد. عامل اصلی آزمایش شامل سه روش خاک ورزی (خاکورزی متداول، حداقل و کشت مستقیم) و عامل فرعی شامل سه رقم ذرت (SC704 ، Zp677، Maxima) بودند. زمین آزمایش دارای 30 درصد از بقایای نخود روی سطح خاک بود. نتایج نشان داد میزان کربن آلی، اسیدیته خاک، تعداد و وزن کرم خاکی در تیمارهای حداقل و کشت مستقیم نسبت به خاکورزی متداول بالاتر بود، ولی خاکورزی تاثیری بر نیتروژن کل، شوری و سدیم خاک نداشت. نتایج نشان داد بیشترین وزن خشک و تر ساقه، وزن خشک بلال و وزن تر علوفه کل در رقم Zp677 به ترتیب 5/1866، 5/691، 4/664 و 9/4896 گرم در مترمربع مشاهده شد. وزن تر و خشک برگ، وزن تر و خشک بلال و وزن خشک کل در بین تیمار خاکورزی متداول و حداقل اختلاف معنی دار مشاهده نشد. همچنین صفات اندازه گیری شده در تیمار کشت مستقیم نسبت به دیگر تیمار خاکورزی در سال دوم آزمایش افزایش بیشتری داشت. به طوری که بین تیمارهای خاکورزی متداول و کشت مستقیم در سال دوم آزمایش اختلاف آماری معنی داری مشاهده نشد. باتوجه به نتایج، استفاده از خاک ورزی حداقل و کشت مستقیم در تناوب نخود- ذرت می تواند جایگزین خاکورزی متداول گردد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65360_79941933bc40d5eb0336915beb2de3f1.pdf
2018-02-20
1015
1026
10.22059/ijfcs.2017.215562.654173
کشت مستقیم
وزن خشک
کربن آلی
نیتروژن خاک
امین اله
موسوی بوگر
amin.mosavi.89@gmail.com
1
دانشگاه لرستان
AUTHOR
خسرو
عزیزی
azizi.kh@lu.ac.ir
2
دانشیار گروه زراعت و اصلاح نباتات دانشکده کشاورزی دانشگاه لرستان
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
جهانسوز
jahansuz@ut.ac.ir
3
استاد گروه زراعت پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران
AUTHOR
محمد
فیضیان
m_feizian@yahoo.com
4
استادیار گروه خاکشناسی دانشکده کشاورزی دانشگاه لرستان
AUTHOR
Al-Kaisi, M. & Licht, M.A. (2004). Effect of strip tillage on corn nitrogen uptake and residual soil nitrate accumulation compared with no-tillage and chisel plow. Agronomy Journal, 96(4), 1164-1171.
1
Alvarez, R., Díaz, R.A., Barbero, N., Santanatoglia, O.J. Blotta, L. (1995). Soil organic carbon, microbial biomass and CO2-C production from three tillage systems. Soil and Tillage Research. 33, 17-28.
2
Aziz, I., Mahmood, T., Raut, Y., Lewis, W., Islam, R. Weil, R.R. (2013). Active organic matter as a simple measure of field soil quality. Soil and Tillage Research, 131, 28–35.
3
Barzegar, A. R., Asoodar, M. A. Khadish, A. & Hashemi. A. M. (2003) Soil physical characteristics and chickpea yield responses to tillage treatments. Soil and Tillage Research, 71: 49-57.
4
Bayer, C., Martin-Neto, L., Mielniczuk, J., Pillon, C.N. Sangoi, L. (2001). Changes in soil organic matter fractions under subtropical no-till cropping system. Soil Science Society of America Journal, 65, 1473-1478.
5
Bear, M.H. & Hendrix, P.F. (1994). Water stable aggregates and organic carbon fractions in conventional and no tillage soils. Soil Science Society of America Journal, 58: 777-786.
6
Beyaert, R.P., Schott, J.W. & White, PH,. (2002). Tillage effect on corn production in a Coarse-Textured soil in Southern Ontario. Agronomy Journal, 94: 767-774.
7
Bhattacharyya, R., Kundu, S., Pandey, S.C., Singh, K.P. Gupta, H.S. (2008). Tillage and irrigation effects on crop yields and soil properties under the rice-wheat system in the Indian Himalayas. Agriculture water management, 95, 993-1002.
8
Borie, F., Rubio, R., Rouanet, J.L., Morales, A., Borie, G., Rojas, C. (2006). Effects of tillage systems on soil characteristics, glomalin and mycorrhizal propagules in a Chilean Ultisol. Soil and Tillage Research, 88, 253-261.
9
Burr, I.W. Foster, L.A., (1972). A Test for Equality of Variances. University of Purdue, West Lafayette, USA (26 Mimeo series, 282).
10
Burt, R. (2004). Soil survey laboratory methods manual. NRCS Soil Survey Investigations Report No. 42.
11
Carbtree, R.J., Parter, J.D. & Mbolde, P. (1990). Long term wheat, soybean and grain sorghum double cropping under rain-fed conditions. Agronomy Journal, 82: 683-686.
12
Carter, M.R. & Rennie, D.A. (1982). Changes in soil quality under zero tillage farming system: distribution of microbial biomass and mineralizable C and N potential. Canadian journal of soil science, 62: 587-597.
13
Carter, M.R. Stewart, B.A. (1996). Structure and organic matter storage in agricultural soils. Advances in Soil Science. CRC Press, Boca Raton, FL. pp. 182-245.
14
Cassel, C.W. & Raczkowski, D.K. (1995). Tillage effects on corn production and soil physical conditions. Soil Science Society of America Journal, 59: 1436-1443.
15
Celik, I., Barut, Z.B., Ortas, I., Gok, M., Demirbas, A., Tulun, Y. & Akpinar, C. (2011). Impacts of different tillage practices on some soil microbiological properties and crop yield under semi-arid Mediterranean conditions. International Journal of Plant Production, 5 (3): 237-254.
16
Copeland, P. J., Allmaras, R. R., Crookston, R. H. & Nelson, W. W. (1993). Corn, Soybean rotation effects on soil water depletion. Agronomy Journal, 85: 203-210.
17
Duiker, S.W. & Curran, W.S. (2005) Rye cover crop management for corn production in the northern mid-atlantic region. Agronomy Journal, 97: 1413-1418.
18
Franchini, J.C., Debiasi, H., Balbinot Junior, A.A., Tonon, B.C., Boucas Farias, J.R., de Oliveira, M.C.N. Torres E. (2012). Evolution of crop yields in different tillage and cropping systems over two decades in southern. Brazil. Field Crops Research, 137:178–185.
19
Fuentes, M., Baigorri, R and González-gaitano, G. (2016). New methodology to assess the quantity and quality of humic substances in organic materials and commercial products for agriculture. Journal Soils Sediments, 11368-016-1514-2.
20
Ghanbaryan Alavijeh H. R., Ahmadi Chenarbon, H., Zand B. (2013). Effect of different tillage methods on soil physical properties and yield of two varieties of forage maize in varamin province. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 6-15:1092-1098.
21
Haddadi, MH., (2016). The effects of tillage system and varieties on yield and yield components of corn (Zea mays L.). International Journal of Farming and Allied Sciences,5-1: 16-20
22
Halvorson, A.D., Mosier, A.R., Reule, C.A., & Bausch, W.C. (2006). Nitrogen and tillage effects on irrigated continuous corn yields. Agronomy Journal, 98: 63-71.
23
Hammel, J.E. (1995). Long-term tillage and crop rotation effects on winter production in northern Idaho. Agronomy Journal, 87: 16-22.
24
Heenan, DP., WJ. Mcghie, & Thomson FM. (1995). Decline in soil organic carbon and total nitrogen in relation to tillage, stubble management and rotation. Australian Journal of Experimental Agriculture, 35 (7): 877-884
25
Heggenstaller, A.H., Anex, R.P., Liebman, M., Sundberg, D.N. & Gibson, L.R. (2008). Productivity and nutrient dynamics in bioenergy double-cropping systems. Agronomy Journal, 100: 1740-1748.
26
Hösl, R. & Strauss, P. (2016). Conservation tillage practices in the alpine forelands of Austria- Are they effective? Catena, 137 :44- 51.
27
Institute, S.A.S. (2001). Proprietary of Software, Version 8.2, 6th ed. SAS Institute, Cary, NC, USA.
28
Irfan, A., Tariq, M. Rafiq Islam, K., (2013). Effect of long term no-till and conventional tillage practices on soil quality. Soil and Tillage Research, 131, 28–35.
29
Izquierdo, I., Caravaca, F., Alguacil, M.M. Roldan, A. (2003). Changes in physical and biological soil quality indicators in a tropical crop system (Havana, Cuba) in response to different agro ecological management practices. Journal of Environmental Management, 32, 639-645.
30
Kalra, Y.P. Maynard, D.G. (1994). Particle-size analysis. Methods Manual for Forest Soil and Plant Analysis. Canadian Forest Service, Edmonton, Alberta, Canada. Inform Repo NOR-X-319, 42–53.
31
Lal, R. & Mahboubi, A. (1994). Long term tillage and rotation effects on properties of central Ohio soils. Soil Science Society of America Journal, J. 58: 517-522.
32
Licht, M.A. & Al-Kaisi, M. (2005). Strip-tillage effect on seedbed soil temperature and other soil physical properties.. Soil & Tillage Research, 80(1), 233-249.
33
Limon-Ortega, A., Sayer, K. D., Drijber, R. A. & Francis, C. A. (2002). Soil attributes in a furrow- irrigated bed planting system in north-west Mexico. Soil and Tillage Research, 63: 123-132.
34
Limon-Ortega, A., Sayre, K.D. & Francis, C.A. (2000). Wheat and maize yields in response to straw management and nitrogen under a bed planting system. Agronomy Journal, 92: 295-302.
35
López-Fando, C. & Pardo, M.T. (2009): Changes in soil chemical characteristics with different tillage practices in a semi-arid environment. Soil and Tillage Research, 104: 278–284.
36
Lund, M. G., Carter, P. R. and Oplinger, E. S. 1993. Tillage and crop rotation affect corn, soybean, and winter wheat yields. Journal of Production Agriculture, 6: 207 213.
37
Meisinger, J. J., Bandel, V. A., Stanford, G. & Legg, J. O. (1985). Nitrogen utilization of corn under minimal tillage and moldboard plow tillage. I. Four-year results using labeled N fertilizer on an Atlantic coastal plain soil. Agronomy Journal, 77(4): 602-611.
38
Mercau, J.L., Sadras, V.O., Satorre, E.H., Balbi, C., Uriblarrea, M. & Hall, A.J. (2001). On-farm assessment of regional and seasonal variation in sunflower yield in Argentina. Agricultural Systems, 67: 83-103.
39
Mock, J.J. & Erbach, D.E. (1977). Influence of conversation tillage environments on growth and productivity of corn. Agronomy Journal, 69: 337-340.
40
Mohammad Hossein Haddadi, (2016). The Effects of Tillage System and Varieties on Yield and Yield Components of Corn (Zea mays L.). International Journal of Farming and Allied Sciences, 16-20: 16-20.
41
Morachan, Y.B., Molden hauer, W.C. & Larson, W.E. (1972). Effects of increasing amounts of organic residue on continuous corn: I. Yield and soil physical properties. Agronomy Journal, 64: 199-203
42
Najafinezhad, A., Javaheri, MA., Gheibi, M. & Rostamia, MA. (2007). Influence of Tillage Practices on the grain yield of maize and some soil properties in maize-wheat cropping system of Iran. Journal of Agriculture and Social Science, 3(3): 1813-2235.
43
Nielsen, RL., Thomison, PR., Brown, GA. & Halter, AL. (1994). Hybrid maturity selection for delayed planting: Do GDD maturity ratings help? P. 191-205. In: Rep. Annual Corn and Sorghum Industry Res. Conf., 49th, Chicago. 7-8 Dec. American Seed Trade Association, Washigton, DC.
44
Omidi, H., Tahmasebi, Z., Torobi, H. Miransari, M. (2008). Soil enzymatic activities and available P and Zn as affected by tillage practices, canola (Brassica napus L.) cultivars and planting dates. European Journal of Soil Biology, 44, 443-450.
45
Ozpinar, S. & Cay, A. (2006). Effect of different tillage systems on the quality and crop productivity of a clay– loam soil in semi-arid north-western Turkey, Soil and Tillage Research, 88 (1–2): 95–106.
46
Raimbault, B.A. & Vyn. T.J. (1991). Crop rotation and tillage effects on corn growth and soil structural stability. Agronomy Journal, 83:979-985.
47
Rashidi, M. & Keshavarzpour, F. (2009). Effect of Different Tillage Methods on Grain Yield and Yield Components of Maize (Zea mays L.), International Journal of Agriculture and Biology, 9 (2): 274–277.
48
Schillinger, W. F., Young, D. L., Kennedy, A. C. paulitz, T. C., (2010). Diverse no-till irrigated crop rotations instead of burning and plowing continuous wheat. Field Crops Research, 115 (1): 39-49.
49
Shahkarami, G. & Rafiee, M. (2009). Response of corn (Zea mays L.) to planting pattern and density in Iran. American-Eurasian Journal of Agriculture and Environment Science, 5: 69-73.
50
Shapiro, S.S. Wilk, M.B. (1965). An analysis ofvariance test for normality. Biometrika, 52: 591–611.
51
Tebrügge, F., Düring, R.A., (1999). Reducing tillage intensity- a review of rusults from a long-term study in Germany. Soil and Tillage Research, 53, 15-28.
52
Webber, C.L., Gebhardt, M.R. & Kerr, H.D. (1987). Effect of tillage on soybean growth and production. Agronomy Journal, 79: 952-956.
53
Yang, X., Chen, C., Luo, Q., Li, L. Yu, Q. (2011). Climate change effects on wheat yield and water use in oasis cropland. International Journal of Plant Production, 5: 83-94.
54
ORIGINAL_ARTICLE
گروهبندی لاینهای برنج (Oryza sativa L.) با استفاده از روشهای آماری چند متغیره در شرایط تنش خشکی
به منظور ارزیابی و گروهبندی 150 اینبرد لاین برنج بر اساس صفات مورفولوژیک و فیزیولوژیک، آزمایشی در قالب طرح آگمنت بر پایه طرح بلوک کامل تصادفی با چهار تکرار در دانشکده علوم کشاورزی دانشگاه گیلان در سال زراعی 1393 اجرا شد. بررسی ضرایب همبستگی بین صفات مورد مطالعه نشان داد که همبستگی معنیداری بین عملکرد دانه با اکثر صفات وجود داشت. تجزیه به عاملها نشان داد که چهار عامل اصلی و مستقل 23/94 درصد از تغییرات کل دادهها را توجیه نمودند. عامل اول با دارا بودن 99/51 درصد از واریانس کل به عنوان عامل اجزای عملکرد و میزان باروری نامگذاری شدند. عامل دوم با اختصاص 41/25 درصد از واریانس کل به عنوان عامل میزان باروری، عملکرد و اجزای عملکرد، عامل سوم با اختصاص 50/11 درصد از واریانس کل به عنوان عامل صفات فیزیولوژیک، عامل چهارم با اختصاص 33/5 درصد از واریانس کل به عنوان عامل مرفولوژی گیاه نامگذاری شدند. تجزیه خوشهای با استفاده از روش وارد با احتمال صحت 7/92 درصد لاینهای مورد بررسی را در چهار خوشه مجزا گروه-بندی کرد. بنابراین، برای گزینش لاینهای با عملکرد دانه بالا و متحمل به تنش رطوبتی در برنج میتوان گزینشهای همزمانی را برای صفاتی نظیر تعداد کل خوشهچه در خوشه، تعداد دانه پر در خوشه، نرخ باروری، محتوای پرولین،کلروفیل a، b و کل کلروفیل و محتوای آب نسبی برگ (RWC) انجام داد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65384_dc36e48a825c0665e3b659bfa9d70ead.pdf
2018-02-20
1027
1039
10.22059/ijfcs.2017.217039.654188
همبستگی
تجزیه به مولفهها
تجزیه خوشهای
حداقل واریانس وارد
حبیب الله
سمیع زاده لاهیجی
hsamizadeh@yahoo.com
1
دانشگاه گیلان، دانشیار دانشکده کشاورزی
LEAD_AUTHOR
مریم
دانش گیلوایی
daneshg_maryam@yahoo.com
2
دانشگاه گیلان
AUTHOR
بابک
ربیعی
rabiei@guilan.ac.ir
3
دانشگاه گیلان
AUTHOR
Abarshahr, M., Rabiei, B. & Samizadeh-Lahigi, H. (2011). Assessing genetic diversity of rice varieties under drought stress conditions. Notulae Scientia Biologicae, 3: 114-123.
1
Bagheri, N., Babaeian-Jelodar, N. & Pasha, A. (2011). Path coefficient analysis for yield and yield components in diverse rice (Oryza sativa L.) genotypes. Biharean Biologist, 5 (1): 32-35.
2
Bates, I. S., Waldern R. P. & Teare, I. D. (1973). Rapid determination of free proline water stress studies. Plant and Soil, 39: 205-207.
3
Bonnet, M., Camares, O. & Veisseire, P. (2000). Effects of zinc and influence of Acremonium lolii on growth parameters, chlorophyll a fluorescence and antioxidant enzyme activities of ryegrass (Lolium perenne L. cv Apollo). Journal of Experimental Botany, 51: 945–953.
4
Bouman, B. A. M., Peng, S., Castaňeda, A. R. & Visperas, R. M. (2005). Yield and water use of irrigated tropical aerobic rice systems. Agricalture Water Management, 74: 87–105.
5
Chakravorty, A., Ghosh P. D. & Sahu, P. K. (2013). Multivariate analysis of phenotypic diversity of landraces of rice of west bengal. American Journal of Experimental Agriculture, 3(1): 110-123.
6
Cha-Um, S., Yooyongwech, S. & Supaibulwatana, K. (2010). Water deficit stress in the reproductive stage of four indica rice (Oryza sativa L.) genotypes. Pakistan Journal of Botany, 42(5): 3387-3398.
7
Fentie, D., Alemayehu, G., Siddalingaiah, M. & Tadesse, M. (2014). Genetic Variability, Heritability and Correlation Coefficient Analysis for Yield and Yield Component Traits in Upland Rice (Oryza sativa L.). East African Journal of Sciences, 8 (2): 147-154.
8
GenStat. (2009). GenStat for Windows 12th Edition. VSN International, Hemel Hempstead, UK.
9
Ghiasy, M., Farahbakhsh, H., Sabouri, H. & Mohamadi nejad, GH. (2013). Evaluation of rice cultivars in drought and normal conditions based on sensitive and tolerance indices. Electronic Journal of Crop Production, 6 (4): 55-75. (In Farsi)
10
Ghorbani, H., Samizadeh Lahiji, H. A., Rabiei, B. & Allahgholipour, M. (2011). Grouping different rice genotypes using factor and cluster analyses. Journal of Sustainable Agriculture and Production Science, 21(3): 89-104. (In Farsi)
11
Lanceras, J. C., Griengrai, P., Boonrat, J. & Theerayut, T. (2004). Quantitative trait loci associated with drought tolerance at reproductive stage in rice. Plant Physiology, 1: 384-399.
12
Lichtenthaler, H. K. & Wellburn, A. R. (1983). Determinations of total carotenoids and chlorophylls a and b of leaf extracts in different solvents. Biochemical Society Transactions, 11: 591 - 592.
13
Majidimehr, A., Amiri-Fahliani, R. & Masoumiasl, A. (2014). Study of biochemical and chemical traits of different rice genotypes under salinity stress. Cereal Research, 4 (1): 45-58. (In Farsi)
14
Nam, N. H., Chauhan, Y. S. & Johansen, C. (2001). Effect of timing of drought stress on growth and grain yield of extra-short-duration pigeonpea lines. Journal of Agricultural Science, 136: 179–189.
15
Nandan, R., Sweta, D. & Singh, S. K. (2010). Character association and path analysis in rice (Oryza sativa L.) genotypes.World Journal of Agricultural Sciences, 6 (2): 201 - 206.
16
Rahimi, M., Rabiei, B. Ramezani, M. & Movafegh, S. (2010). Evaluation of agronomic traits and determine the variables to improve rice yield. Iranian Journal of Field Crops Research, 8(1): 111-119. (In Farsi)
17
Raychaudhuri, S., Stuart, J. M. & Altman, R. B. (2000). Principal components analysis to summarize microarray experiments: Application to sporulation time series. Pacific Symposium on Biocomputing, 455-466.
18
Safaei Chaeikar, S., Samizadeh, H., Rabiei, B. & Esfahani, M. (2009). Correlation of agronomic traits under optimum irrigation and water stress in rice (Oryza sativa L.). Journal of Sciences and Technology of Agriculture and Natural Resources, 13(48): 91-105. (In Farsi)
19
Sanni, K. A., Fawole, I., Ogunbayo, A., Tia, D., Somado, E. A., Futakuchi, K., Sié, M., Nwilene, F. E. & Guei, R. G. (2010). Multivariate analysis of diversity of landrace rice germplasm. In: Innovation and Partnerships to Realize Africa’s Rice Potential. Proceedings of the Second Africa Rice Congress, Bamako, Mali, 22–26 March 2010. Africa Rice Center (AfricaRice), Cotonou, Benin. pp. 1.1.1-1.1.8.
20
SES. (2002). Standard evaluation system for rice. International Rice Research Institute Manila, Philippines.
21
SPSS-Inc. (2010). IBM SPSS statistics 19 core system user’s guide. USA: SPSS Inc., an IBM Company Headquarters.
22
Tao, H., Brueck, H., Dittert, K., Kreye, C., Lin, S. & Sattelmacher, B. (2006). Growth and yield formation for rice (Oryza sativa L.) in the water-saving ground cover rice production system (GCRPS). Field Crops Research, 95: 1–12.
23
Venkata Lakshmi, M., Suneetha, Y., Yugandhar, G. & Venkata Lakshmi, N. (2014). Correlation studies in rice (Oryza sativa L.). International Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 5(2): 121-126.
24
Worede, F., Sreewongchai, T., Phumichai, Ch. & Sripichitt, P. (2014). Multivariate analysis of genetic diversity among some rice genotypes using morpho-agronomic traits. Journal of Plant Science, 9(1):14-24.
25
Yan, W. & Rajcan, I. (2002). Biplot analysis of test sites and trait relations of soybean in Ontario. Crop Science, 42: 11-20.
26
Yazdani, M., Kochak, M. & Bagheri, H. (2014). Segregating rice genotypes by cluster analysis procedure at different salt stress condition. Advances in Environmental Biology, 8(10): 383-387.
27
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تأثیر رطوبت خاک بر زمستانگذرانی علف هرز پیزور (Bolboschoenus maritimus) و پیشبینی دماهای مهم آن
پیزور از جگنهای چندساله و پس از سوروف مهمترین علفهرز شالیزار است. دو آزمایش گلدانی و آزمایشگاهی به منظور مطالعه برخی ویژگیهای اکوفیزیولوژیکی این علفهرز جهت ارائه راهکاری برای مدیریت آن اجرا شد. در تحقیق نخست تأثیر سطوح رطوبت خاک (6، 12، 24، 34 درصد رطوبت وزنی و شاهد غرقاب دائم) بر زمستانگذرانی غدههای پیزور و رشد آنها در سال بعد و در آزمایش دوم دمای کاردینال جوانهزنی آن بررسی گردید. نتایج نشان داد که زندهمانی و زمستانگذرانی غدههای پیزور در سطوح رطوبتی 6، 12 و 24 درصد خاک بهترتیب 10، 30 و 82 درصد بود، امّا در رطوبتهای بالاتر به شدت کاهش یافت. بعلاوه صفات تعداد غده تولیدی، وزن تر غده و نیز طول و وزن تر ریزوم پیزور در رطوبت 6 درصد خاک به ترتیب 100، 58، 70 و 92 درصد نسبت به سطح رطوبتی 24 درصد (ظرفیت زراعی) کمتر بود. حداکثر جوانهزنی در دماهای 25 تا 30 درجه سانتیگراد و کمترین جوانهزنی در دمای 40 درجه سانتیگراد و بیشترین سرعت جوانهزنی نیز در دمای 30 درجه سانتیگراد بود. دماهای کمینه، بهینه و بیشینه سبزشدن غدههای پیزور بهترتیب 5، 25 و 40 درجه سانتیگراد بود. باتوجه به زندهمانی اندک و کاهش شدید شاخصهای رشد رویشی پیزور در رطوبتهای پایین، زهکشی و شخم اراضی شالیزاری پس از برداشت برنج بهعنوان راهکاری جهت کاهش جمعیت زمستانگذران این علفهرز و مدیریت زراعی آن پیشنهاد میشود
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65385_b8735c9dc0c7eeccc376d38e6ce51599.pdf
2018-02-20
1041
1053
10.22059/ijfcs.2017.109729.653763
شالیزار
علف هرز پیزور
زهکشی
رطوبت
دمای کاردینال
معصومه
خجسته فر
khojasteh_2012@ut.ac.ir
1
دانشجوی ارشد دانشگاه تهران
AUTHOR
حسن
علیزاده
malizade@ut.ac.ir
2
استاد گروه زراعت و اصلاح نباتات دانشگاه تهران
LEAD_AUTHOR
بیژن
یعقوبی
byaghoubi2002@gmail.com
3
عضو هیئت علمی موسسه تحقیقات برنج
AUTHOR
Alizade, A. (2006). Soil, plant and water relationships. Ferdowsi University of Mashhad. Press. P. 483. (In Farsi).
1
Ampong-Nyarko, K. & De Datta, S. K. (1991). A handbook for weed control in rice. International Rice Research Institiute (IRRI). Pp 113.
2
Cao, N. & Mercado, B. (1975). Growth behavior of Scirpus maritimus L, Proceedings, 5th Asian-Pacific Weed Science Society Conference. Pp 50-53.
3
Chung, I. M., Ahn, J. K. & Yun, S. J. (2001). Assessment of allelopathic potential of barnyard grass (Echinochloa crus-galli) on rice (Oryza sativa L.) cultivars. Crop Protection, 20, 921-928.
4
Clevering, O., Vierssen, W. V. & Blom, C. (1995). Growth, photosynthesis and carbohydrate utilization in submerged Scirpus maritimus L. during spring growth. New Phytologist. 130, 105-116.
5
Covell, S., Ellis, R., Roberts, E. & Summerfield, R. (1986). The influence of temperature on seed germination rate in grain legumes I. A comparison of chickpea, lentil, soyabean and cowpea at constant temperatures. Journal of Experimental Botany. 37, 705-715.
6
Dastghieb, F. & Beibi, M. (1988). Weed flora and their effect on rice in Fars province. Iran Journal. Agriculture Research. 7(2), 135-142. (In Farsi)
7
De Datta, S. K. & Jereza, H. C. (1976). The use of cropping systems and land and water management to shift weed species. Philippine Journal of Crop Science. 1, 173-178.
8
De Datta, S. K. & Lacsina, R. (1974). Herbicides for the control of perennial sedge Scirpus maritimus L. in flooded tropical rice. PANS Pest Articles & News Summaries. 20, 68-75.
9
Ghanbari, A., Rahimian Mashhadi, H., Nassiri Mahallati, M., Kafi, M. & Rastgoo, M. (2006). Ecophysiological aspects of Liquorice (Glycyrrhiza glabra L.) germination under different temperatures. Iranian Journal of Field Crop Research, 3, 275-263. (In Farsi).
10
Haji boland, R., Aghajan zade, T. & Talebpour, A. H. (2005). Study on seed germination and estabilishmentof seedling in plant. Journal of biology. No. 4. Volume.
11
Iannucci, A., Di Fonzo, N. & Martiniello, P. (2000). Temperature requirements for seed germination in four annual clovers grown under two irrigation treatments. Seed Science and Technology, 28, 59-66.
12
Ismail, B. S., Chuah, T. S., Salmijah, S., Teng, Y. T. & Schumacher, R. W. (2002). Germination and seedling emergence of glyphosate-resistant and susceptible biotypes of goosegrass (Eleusine indica (L) Gaertn.). Weed Biology and Management. 2:177-185.
13
Kim, K. U. & De Datta, S. K. (1974). An approach to eradicate Scirpus maritimus weed in flooded rice. Philippine Weed Science Bulletine.
14
Knapp, A. (2000). An overview of seed dormancy in native warm-season grasses. In: K. J. Moore, & B. E. Anderson, (Eds.), Native Warm-season Grasses: Research Trends and Issues. (Pages 107-123) Madison, WI: CSSA.
15
Lieffers, V. & Shay, J. (1981). The effects of water level on the growth and reproduction of Scirpus maritimus var. paludosus. Canadian Journal of Botany. 59, 118-121.
16
Mirkamali, S. M. (1985). Weed management: Country Status Paper—Iran. In: FAO. editor. Proceedings of Improved Weed Management in the Near East, Necosia. Pp 104-116. (In Farsi).
17
Mohammad Sharifi, M. (2001). Practical guide of paddy weeds in Iran. Deputy for Education and Development of Agricultural Jihad. Pp 114. (In Farsi).
18
Mohammadvand, E., Koocheki, A., Nassiri Mahallati, M. & Shahdi, A. (2015). Investigating the germination response of two echinochloa species to temperature and photoperiod with emphasis on invasiveness. Iranian journal of field crop science. 45, 4: 639-648.(In Farsi).
19
Moody, K. & De Datta, S. K. (1977). Integration of weed control practices for rice in tropical Asia. Proceedings of the Workshop on Weed Control in Small Farms, 15- 16 July., Jakarta, Indonesia, Pp 37-47.
20
Naylor, R. (1996). Herbicides in Asian rice, transitions in weed management. Stanford University. Pp 270.
21
Nourmohammadi, G. H. Siyadat, A. & Kashani, A. (2000). Agronomy: cereals. Ahvaz University Press. First Volum. Pp 446. (In Farsi).
22
Seefeldt, S. S., Jensen, J. E. & Fuerst, E. P. (1995). Log-logistic analysis of herbicide dose-response relationships. Weed Technology. 9, 218–227.
23
Singh Y., Singh V. P., Chauhan B., Orr A., Mortimer A. M., Johnson D. E. & Hardy, B. (2008). Edited. Direct seeding of rice and weed management in the irrigated rice-wheat cropping system of the Indo-Gangetic Plains. Pp 272.
24
Singh, G. (2008). Integrated weed management in direct-seeded rice. Direct seeding of rice and weed management in the irrigated rice-wheat cropping system of the indo-gangetic Plains. International Rice Research Institute (IRRI). Pp 161-176.
25
Smith, W. & Dilday, R. (2003). Rice: Origin, History, Technology and Production. John Wiley & Sons, Inc. Pp 642.
26
Spencer, D. F. & Ksander, G. G. (2000). Emergence of vegetative propagules of Potamogeton nodousus, Potamogeton pectinatus Vallisneria americana, and Hydrilla verticillata based on accumulated degree-days. Aquatic Botany. 67, (3): 237-249.
27
Steckel, L. E., Sprague, C. L., Stoller, E. W. & Wax, L. M. (2004). Temperature effects on germination of nine Amaranthus Species. Weed Science, 52, 217-221.
28
Vega, M., Paller, E. & Lubigan, R. (1971). The effect of continuous herbicide application on weed population and on yield of lowland rice. Philippine Agriculturist. 55, 204-209.
29
Visperas, R. & Vergara, B. (1976). Autecology of Scirpus maritimus L. 2. Effect of light, temperature and moisture. Philippine Weed Science Bulletin. 3, 15-19.
30
Yaghoubi, B., (2016). Chemical Control of Pondweed (Potamogeton nodosus) and Barnyardgrass (Echinochloa crus-galli) in Paddy Fields. Iranian Journal of weed Science. 11, 195-207. (In Farsi with English abstract).
31
Yaghoubi, B., Alizadeh, H., Rahimian, H., Baghestani, M. A., Sharifi, M. M. & Davatgar, N. (2010). Key paper. A review on researches conducted on paddy field weeds and herbicides in Iran (Flora change, bioassay of herbicide degradation and dwarfism in rice). 3th Iranian weed science congress Babolsar, Mazandaran, Iran, Pp 2-11. (In Farsi).
32
Yaghoubi, B. & Farahpour, A. (2012). Time of emergence of paddy weeds. 5Th Iranian Weed Science Congress. Karaj, Iran. Pp 498-501.
33
Yamasaki, S. & Tange, I. (1981). Growth responses of Zizania latifolia, Phragmites australis & Miscanthus sacchariflorus to varying inundation. Aquatic Botany. 10, 229-239.
34
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اثر مالچ گندم و سطوح مختلف کود نیتروژن بر رشد علفهایهرز و برخی صفات زراعی بادرشبو
به منظور شبیه سازی اثر نیتروژن و مالچ گندم بر آلودگی علفهای هرز، عملکرد بادرشبو آزمایشی به صورت فاکتوریل در بهار 1393 انجام شد. فاکتور اول کود نیتروژن در3 سطح عدم کوددهی، و افزودن 50 و 100 کیلوگرم در هکتار به صورت کود اوره به خاک جهت ایجاد سطوح مختلف نیتروژن و فاکتور دوم مالچ گندم در 4 سطح، عدم استفاده از مالچ به عنوان شاهد، مالچ با وزن 1 ، 5/1 و 2 کیلوگرم در مترمربع بود. یک تیمار نیز به عنوان شاهد عاری از علف هرز (وجین علفهای هرز تا آخر فصل) در نظر گرفته شد. نتایج نشان داد که زیست توده و تراکم علفهای هرز پهن برگ و مجموع علفهای هرز در 70 روز پس از کاشت بطور معنی دار تحت تاثیر مقدار مالچ و اثر متقابل مالچ و نیتروژن قرار گرفت. زیست توده و تراکم علفهای هرز باریک برگ فقط تحت تاثیر مالچ قرار گرفت. در نمونه برداری آخر فصل بالاترین زیست توده علفهای هرز در کاربرد 100 کیلوگرم نیتروژن و در شرایط عدم استفاده از مالچ دیده شد. بطور کلی بالاترین تراکم و زیست توده علفهای هرز در تیمار عدم استفاده از مالچ و کمترین آن در تیمار 2 کیلوگرم در مترمربع مالچ گندم مشاهده شد. تداخل علفهای هرز عملکرد بیولوژیک بادرشبو را از 5495 کیلوگرم در هکتار در تیمار شاهد به 852 کیلوگرم در هکتار کاهش داد. بعد از شاهد عاری از علف هرز، بیشترین عملکرد دانه و بیولوژیک در تیمار کاربرد 100 کیلوگرم نیتروژن و کاربرد یک کیلوگرم مالچ گندم دیده شد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65436_2a7c8a6f1711027c050f101ce3b4f3a6.pdf
2018-02-20
1055
1068
10.22059/ijfcs.2017.128781.653911
واژه های کلیدی: زیست توده
مالچ کاه و کلش
مدیریت علفهای هرز
افسانه
مرادیان
moradianafsaneh@znu.ac.ir
1
دانشجوی کارشناسی ارشد زراعت
LEAD_AUTHOR
علیرضا
یوسفی
yousefi.alireza@znu.ac.ir
2
هیئت علمی دانشگاه زنجان
AUTHOR
خلیل
جمشیدی
jamshidi_k @znu.ac.ir
3
سرپرست دانشگاه زنجان
AUTHOR
بابک
عندلیبی
andalibi@znu.ac.ir
4
عضو هیات علمی دانشگاه زنجان
AUTHOR
Mozaffarian V-A (1996) Lexicon of Iranian plant names. Publishing Contemporary Vocabulary, Tehran Press: Tehran, Iran.
1
Abtahi, S. M., Seyed Sharifi, R. & Qaderi, R. (2015). Influence of nitrogen fertilizer rates and seed inoculation with plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) on yield, fertilizer use efficiency, rate and effective grain filling period of soybean (Glycine max L.) in second cropping. Journal of Agricultural Science and Sustainable Production, 24(3), 2014.
2
Allelopathic effects of crop plants on other crop plants. In: Proceedings of 3rd Congress Crop Production Breeding Science, Tabriz University Press,Tabriz, Iran, p. 7 (In Farsi with English Abs.)
3
Ataure Rahman, M., Chikushi, J., Saifizzaman, M. & Lauren, J. G. (2005). Rice straw mulching and nitrogen of no-till wheat following rice in Bangladesh. Field Crop Research, 91, 71- 81.
4
Bagheri, A., Nezami, A. & Soltani, M. (2000). Breeding of cool season legumes for tolerance to stress. Publishing Research Organization, Education and Agricultural Extension. 445 pp. (In Farsi).
5
Bohrani, M.J. (1995). Allelopathic effects of crops on each other. Key articles of the 3rd Iranian Congress of Agronomy and Plant Breeding. Tabriz University. Tabriz. Iran
6
Bais, H. P., Vepachedu, R., Gilbory, S., Calaway, R. M. & Vivanco,J M. (2003). Allelopathy and exotic plant invasion: from molecules and genes to species interactions. Science, 301, 1377-1380.
7
Bewley, J. D. & Black, M. (1994). Seeds: Physiology of development and germination. 2nd Ed. (Pp.445)New York and London, Plenum Press.
8
Bilalis, D., Sidiras, N., Economou, G. & Vakali, C. (2003). Effect of different levels of wheat straw soil surface coverage on weed flora in Vicia faba L. crops. Journal of Agronomy and Crop Science, 189, 233-241.
9
Blackshaw, R. E., Brandt, R. N., Janzen, H. H., Entz, T., Grant, C. A. & Derksen, D. A. (2003). Differential response of weed species to added nitrogen. Weed Science, 51, 532-539.
10
Blackshaw, R. E., Moyer, J. R., Doram, R. C. & Boswell, A. L. (2001). Yellow sweet clover, green manure, and its residues effectively suppress weed during fallow. Weed Science, 49, 406- 413.
11
Bouwmeester, H. J., Derks, L., Keizer, J. J., Karssen, C. M. (1994). Effects of endogenous nitrate content of sisymbrium officinale seeds on germination and dormancy. Acta Botanica. Neerlandica. 43, 39–50.
12
Dahiya, R., Ingwersen, J. & Streck, T. (2007). The effect of mulching and tillage on the water and temperature regimes of a loess soil: Experimental findings and modeling. Soil and Tillage Research, 96 (1-2), 52-63.
13
Dastmalchi, K., Dorman, H. G., Kosar, M. & Hiltunen, R. (2007). Chemical composition and in vitro antioxidant evaluation of a water soluble moldavian balm (Dracocephalum moldavica L.) extract. Food Science Technology, 40(2), 239-248.
14
Dhima, K. V., Vasilakoglou, I. B., Eleftherohorinos, I. G. & Lithourgidis, A. S. (2006). Allelopathic potential of winter cereals and their cover crop mulch effects on grass weed suppression and corn development. Crop Science, 46, 345-352.
15
Dotzenko, A. D., Ozkan, M. & Storer, K. R. (1969). Influence of crop sequence, nitrogen fertilizer and herbicides on weed seed populations in sugar beet fields. Agronomy Journal, 61, 34–37.
16
Eagle, A. J., Bird, J. A., Hill, J. E., Horwath, W. R. & Kessel, C. V. (2001). Nitrogen dynamics and fertilizer use efficiency in rice following straw incorporation and winter flooding. Agronomy Journal, 96, 1346-1354.
17
Elliot, L. F., McCalla, T. M. & Waiss, A. (1978). Phytotoxicity associated with residue management. In: W. R. Oschwald (Ed), Cropresidue management systems. (pp. 131-146.)
18
Halasz-Zelnik, K., Hornok, L. & Domokos, J. (1988). Data on the cultivation of Dracocephalum moldavica L. in Hungary. Herba Hungarica, 28(1), 49-8.
19
Harris, D. (2006). Development and testing of ‘on-farm’ seed priming Advan. Agronomy Journal, 90, 129-178.
20
Hosseini, A., Rashed Mohassel, M. H., Nasiri Mahalati, M. & Haj Mohammad Nia Ghali Baf, K. (2006). Effects of nitrogen and duration of weed interference on performance corn yield components. Journal ofPlant Protection (Agricultural Science and Technology), 23(1), 97-105. (In Farsi)
21
Jain, P. M., (1990). Effect of split application of nitrogen on fennel. Indian Journal Agronomy, 35, 111-121.
22
Losak, T. & Richter, R., (2004). Split nitrogen doses and their efficiency in poppy (Papaver somniferum L.) nutrition. Plant Soil and Environment, 50(11), 484-488.
23
Machado, S. (2007). Allelopathic potential of various plant species on downy brome. Agronomy Journal, 99, 127-132.
24
Marianne, K., Morten, S. & Beate, S. (2000). Ecological effects of allelopathic plants, a review. NERY.Technical Report No.315.
25
Meskar bashi, M. A., Bakhshande, M., Nabipour, V. & kashani, A. (2006). The effects of chemical fertilizer residue levels on seed yield and yield components of two type wheat in Ahvaz. Agricultural Scientific Journal, 29(1), 53-67. (In Farsi)
26
Monzon, J. P., Sadras, V.O. & Andrade, F. H. (2006).Fallow soil evaporation and water storage as affected by stubble in sub-humid (Argentina) and semi-arid (Australia) environments. Filed Crops Research, 98 (2-3), 83-90.
27
Omodbeigi, R. (2005) Production and processing of medicinal plants (4th ed.). Mashhad: Astan Ghods Razavi Press.. (In Farsi)
28
Pavlikova, D., Balik, J., Vanek, V., Vostal, J. & Sattin, S. (1994). Influence of different forms of N fertilizers on N uptake by poppy (Papaver somniferum L.). In: Proceedings of 3rd Congress of the European Society for Agronomy, 18-22 Sept., Padova University, Abano- Padova, Italy, pp. 204-205.
29
Schillinger, W. F. & Young, D. L. (2004). Cropping systems research in the world’s driest rainfed wheat region. Agronomy Journal, 96, 1182-1187.
30
Shen H., Guo, H. & Huang, G. (2005). Allelopathy of different plants on wheat, cucumber and radish seedlings. Journal of Applied Ecology, 16(4), 740-743.
31
Singer, J. W., Kohler, K. A., Liebman, M., Richards, T. L., Cambardella, S. C. A. & Buhler, D. D. (2004). Tillage and compost affect yield on corn, soybean and wheat and soil fertility. Agronomy Journal, 96, 531-537.
32
Thuy, N. H., Shan, Y., Singh, B., Wang, K., Cai, Z., Singh, Y. & Buresh, R. J. (2008). Nitrogen supply in rice-based cropping systems as affected by crop residue management. Soil Science Agronomy Journal, 72, 514-523.
33
Venskutionis, P. R., Dapkevicius, A. & Baranuauskiene, M. (1995). Flavour composition of some lemon-like aroma herbs from Lithuania. Development in Food Science, 37(1), 833-847.
34
Zargari, A. (1997). Medicinal Plants (6th ed.). Tehran : Tehran University Publication, pp. 249–265. (In Farsi)
35
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر سطوح مختلف تنش خشکی و نیتروژن بر عملکرد دانه و برخی صفات زراعی دو رقم لوبیا قرمز
به منظور بررسی اثر سطوح مختلف کم آبیاری و نیتروژن بر عملکرد و اجزاء عملکرد لوبیا قرمز، آزمایشی به صورت خرده شده فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با چهار تکرار در مزرعه پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران در سال زراعی 94-1393 اجرا گردید. تنش خشکی در سه سطح شامل آبیاری نرمال (60 میلیمتر تبخیر از تشتک تبخیر)، تنش خفیف و شدید خشکی پس از مرحله 4 برگی (به ترتیب90 و 120 میلیمتر تبخیر از تشتک تبخیر) به عنوان فاکتور اصلی بود و تیمار کودی در چهار سطح صفر(شاهد)، 50، 100 و 150 کیلوگرم نیتروژن در هکتار و دو رقم لوبیا (رقم اختر و لاین D81083) به صورت فاکتوریل در کرتهای فرعی قرار گرفتند. نتایج نشان داد که تنش خشکی به طور معنیداری سبب کاهش تعداد غلاف در بوته، تعداد دانه در غلاف، وزن صد دانه، عملکرد دانه، عملکرد زیستی، شاخص برداشت و ارتفاع بوته گردید. اعمال کود نیتروژن نیز به جز شاخص برداشت و ارتفاع، موجب افزایش مقادیر سایر صفات گردید. دو رقم لوبیا قرمز در تمام صفات با یکدیگر اختلاف معنیدار داشتند به طوری که لاین D81083 نسبت به رقم اختر از لحاظ عملکرد دانه، عملکرد زیستی و سایر اجزای عملکرد برتری داشت. با توجه به نتایج این پژوهش و ویژگیهای اقلیم شهر کرج توصیه می شود میزان 100 کیلوگرم کود نیتروژنی از منبع اوره در شرایط تنش خشکی ( 120 میلی متر تبخیر) ، برای کشت لوبیا بکار برده شود این مدیریت می تواند از شدت تنش خشکی و صدمات وارده بکاهد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65475_bc30e114860e656cd368ae79270c80f2.pdf
2018-02-20
1069
1081
10.22059/ijfcs.2017.205386.654094
تنش خشکی
عملکرد و اجزاء عملکرد
کود نیتروژن
لوبیا قرمز
خیرالله
بیاتی
khbaiaty@gmail.com
1
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران
AUTHOR
ناصر
مجنون حسینی
mhoseini@ut.ac.ir
2
استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
LEAD_AUTHOR
حسین
مقدم
moghaddam@mailinator.com
3
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران
AUTHOR
رضا
بصیری
rezabasiri@gmail.com
4
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران
AUTHOR
Acosta Gallegos, J.A. & Shibata, J.K. (1989). Effect of water stress on growth and yield of indeterminate dry-bean (Phaseolus vulgaris) cultivars. Field Crops Res., 20: 81-93.
1
Anibal R.L., González, P., Hernández, A., Balague, L.J. & Favelukes, G. (2000). Comparison of drought tolerance in nitrogen-fixing and inorganic nitrogen-grown common beans. Plant Science, 154: 31 – 41.
2
Ayaz, S., McKenzie, B.A., Hill, G.D. & McNeil, D.L. (2004). Nitrogen distribution in four-grain legumes. The Journal of Agricultural Science, 142(3): 309-317.
3
Bahavar, N., Ebadi, A., Tobeh, A. & Jamaati-e-Somarin, Sh. 2009. Effects of Nitrogen Application on Growth of Irrigated Chickpea (Cicer arietinum L.) under Drought Stress in Hydroponics Condition. Research Journal of Environmental Sciences, 3: 448-455.
4
Bayat, A.A., Sepehri, A., Ahmadvand, G. & Dorri, H.R. (2010). Effect of water deficit stress on yield and yield components of pinto bean (Phaseolus vulgaris L.) genotypes. Iranian Journal of Crop Sciences, 12(1): 42-54 (In Farsi).
5
Behboudian, M.H., Ma, Q., Turner, N.C. & Palta, J.A. (2001). Reactions of chickpea to water stress: yield and seed composition. Journal of the Science of Food and Agriculture, 81(13): 1288-1291.
6
Boutraa, T. & Sanders, F. E. (2001). Influence of water stress on grain yield and vegetative growth of two cultivars of bean (Phaseolus vulgaris L.). Journal of Agronomy and Crop Science, 187(4), 251-257.
7
Branch, A. (2009). Effects of nitrogen application on growth of irrigated Chickpea (Cicer arietinum L.) under drought stress in hydroponics condition. Research Journal of Environmental Sciences, 3(4), 448-455.
8
Chuan Lee, M., Chio-Mei, S. & Shan-Tai, A. (1999). The Effect of Different Nitrogen Application Levels on the Growth and Yield of Adzuki Bean Inoculated with Rhizobia. Research Bulletin of KAOHSIUNG District Agricultural Improvement Station. Volume 10, Number 2.
9
Emam, Y., Shekoofa, A., Salehi, F., Jalali, A. H. & Pessarakli, M. (2012). Drought stress effects on two common bean cultivars with contrasting growth habits. Archives of Agronomy and Soil Science, 58(5), 527-534.
10
Hayati, R., Egli, D.B. & Crafts-Brandner, S.J. (1996). Independence of nitrogen supply and seed growth in soybean: studies using an in vitro culture system. Journal of Experimental Botany, 47(1): 33-40.
11
Hu W.H., Yan X.H., Xiao Y.A., Zeng J.J., Qi H.J. & Ogweno J.O. (2013). 24-Epibrossinosteriod alleviate drought-induced inhibition of photosynthesis in Capsicum annum. Scientia Horticulturae., 150: 232-237.
12
Kocon, A. (2010). The effect of foliar or soil top-dressing of urea on some physiological processes and seed yield of faba bean. Polish Journal of Agronomy, 3:15-19.
13
Leport, L., Turner, N.C., French, R.J., Barr, M.D., Duda, R. & Davies, S.L. (1999). Physiological Responses of chickpea genotypes to terminal drought in a Mediterranean-type environment. European Journal of Agronomy, 11(3): 279-291.
14
Levitt, J. (1980). Responses of Plant to Environmental Stress: Water, Radiation, Salt and Other Stresses. Academic Press, New York, 365.
15
Machado, N.N.B & Duraes M.A.B. (2006). Physiological and biochemical response of common bean varieties treated with salicylic acid under water stress. Crop Breeding and Applied Biotechnology., 6: 269-277.
16
Majnoun Hosseini, N. (2008). Grain Legume Production. Jihad-Daneshghahi Pub. University of Tehran. Pp. 283 (In Farsi).
17
McKenzie, R.H., Middleton, A.B., Seward, K.W., Gaudiel, R., Wildschut, C. & Bremer, E. (2001). Fertilizer responses of dry bean in southern Alberta. Canadian Journal of Plant Science: 343–350.
18
Molina, J.C., Moda-Cirino, V., da Silva Fonseca Júnior N., de Faria, R.T. & Destro, D. (2001). Response of common bean cultivars and lines to water stress. Crop Breeding and Applied Biotechnology, 1(4): 363-372.
19
Moradi, A. (2005). Physiological response of Mungbean to severe and moderate water stress applied at different growth stage. M.Sc. thesis, University of Tehran (In Farsi).
20
Nazeri, M. (2005). Study on response of triticale (X Triticosecale Wittmack) genotypes to water limited conditions at different developmental stages. Ph.D. Thesis, University of Tehran (In Farsi).
21
Nielsen, D.C. & Nelson, N.O. (1998). Black bean sensitivity to water stress at various growth stages. Crop Science, 38(2), 422-427.
22
Parsa, M. & Bagheri, A. (2008). Pulses. University of Mashhad (In Farsi).
23
Ramírez V., Agorio A., Coego A., García-Andrade J., Hernández M.J., Balaguer B., Ouwerkerk P.B.F., Ignacio Zarra I. & Vera P. (2011). MYB46 Modulates Disease Susceptibility to Botrytis cinerea in Arabidopsis In: Plant Physiology Preview. American Society of Plant Biologists. https://doi.org/10.1104/pp.110. 171843.
24
Saman, M., Sepehri, A., Ahmadvand, G. & Sabaghpour, S.H. (2010). Effect of terminal drought on yield and yield components of five chickpea genotypes. Iranian Journal of Field Crop Science, 41(2), 259-269.
25
Shafie Khorshidi, M., Bihamta, M., Khialparast, F. & Naghavi, M.R.) 2013(. Genetic diversity and correlation between different traits of common bean (Phaseolus vulgaris L.) genotypes in normal and limit irrigation conditions. Seed and Plant Improvement Journal, 29(1): 349-367 (in Persian).
26
Sinclair, T.R. & de Wit, C.T. (1999). Photosynthate and nitrogen requirements for seed production by various crops. Science. 38:565-567.
27
Szilagyi, L. (2003). Influence of drought on seed yield components in common bean. Bulgarian Journal of Plant Physiology, Special Issue (9): 320-330.
28
Thomas, M.J.R., Fukai, S. & Peoples, M.B. (2003). The effect of timing and severity of water deficit on growth development, yield accumulation and nitrogen fixation of mung bean. Field crops research, 82: 13-20.
29
Van Herwaarden, A. F., Farquhar, G. D., Angus, J. F., Richards, R. A. & Howe, G. N. (1998). Haying, the negative grain yield response of dryland wheat to nitrogen fertilizer: I. Biomass, grain yield, and water use. Aust. J. Agric. Res., 49: 1067-1081.
30
Westermann, D. Y. & Kolar, J. J. (1978). Simbiotic N2 fixation by bean. Crop science, 18(6): 986-990.
31
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه تاثیر تنش کمآبی برخی صفات فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی چند ژنوتیپ سورگوم علوفهای
این پژوهش به منظور بررسی اثر تنش کمآبی بر فعالیت برخی آنزیمهای آنتیاکسیدان، شاخصهای سازگاری و رنگدانههای فتوسنتزی ژنوتیپهای سورگوم علوفهای بهصورت فاکتوریل و بر اساس طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار در شرایط گلخانهای در دانشگاه محقق اردبیلی در سال 1393 اجرا شد. تیمارهای آزمایش شامل چهار سطح آبیاری (85، 65، 45 و 25 درصد ظرفیت زراعی) و سه ژنوتیپ سورگوم علوفهای (KFS2، KFS6، KFS17) بودند. فعالیت کاتالاز، پراکسیداز، پلی فنل اکسیداز و قندهای محلول، پرولین و کارتنوئیدها در تنش شدید (25 درصد ظرفیت زراعی) افزایش یافتند، درحالیکه محتوای کلروفیل a و کلروفیل b کاهش پیدا کرد. ژنوتیپ KFS6 دارای بیشترین میزان کلروفیل a، کلروفیل b و کلروفیل کل بود؛ اما بیشترین بیوماس، پرولین، قندهای محلول، فعالیت آنزیم پراکسیداز، پلی فنل اکسیداز و میزان کارتنوئیدها در ژنوتیپ KFS2 مشاهده شد. بیوماس با کلروفیلها همبستگی مثبت و با کارتنوئیدها، پرولین، قندهای محلول، کاتالاز، پراکسیداز و پلی فنل اکسیداز دارای همبستگی منفی بود. در بین شاخصهای فتوسنتزی، کلروفیل a و در بین شاخصهای سازگاری، پراکسیداز بیشترین سهم را در پیشبینی بیوماس داشتند. همچنین این شاخصها در ژنوتیپKFS2، سهم بیشتری در پیشبینی بیوماس داشتد. به طور کلی میتوان ژنوتیپ KFS2 را بهعنوان ژنوتیپ سازگار به تنش کمآبی در مقایسه با دو ژنوتیپ دیگر معرفی کرد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65476_42bfde5de570cd81250f45608e82bca2.pdf
2018-02-20
1083
1097
10.22059/ijfcs.2017.136834.653983
کاتالاز
پراکسیداز
فتوسنتز
پرولین
بیوماس
معصومه
قهرمانی
ghahremani.m@yahoo.com
1
دانشگاه محقق اردبیلی
AUTHOR
علی
عبادی
ebadi@uma.ac.ir
2
دانشگاه محقق اردبیلی
AUTHOR
قاسم
پرمون
ghasem.parmoon@gmail.com
3
دانشگاه محقق اردبیلی
LEAD_AUTHOR
سدابه
جهانبخش
jahanbakhsh@uma.ac.ir
4
دانشگاه محقق اردبیلی
AUTHOR
Abbas-Zade, B., Sharifi. A., Abadi, A., Lebaschi, M.H., Naderi, M. & Maghdami, F. (2007). Effect of drought stress on proline, soluble sugars, chlorophyll and relative water content of Melissa officinalis L. Journal Research Agronomic Plants Iran, 23, 504-513.
1
Abdelgawad, Z. A. Khalafaallah, A. A. & Abdallah M. M. (2014). Impact of Methyl Jasmonate on Antioxidant Activity and Some Biochemical Aspects of Maize Plant Grown under Water Stress Condition. Agricultural Sciences, 5,1077-1088
2
Ariano, S., Bartolomeo, D., Cristos, X. & Andras, M. (2005). Antioxidant defenses in Olive trees during drought stress: changes in activity of some antioxidant enzymes. Functional Plant Biology, 32, 45- 53.
3
Arnon, A.N. (1967).Method of extraction of chlorophyll in the plants. Agronomy Journal, 23, 112- 121.
4
Bajji, M., Lutts, S. & Kinet, J.M. (2001). Water deficit effects on solute contribution to osmotic adjustment as a function of leaf ageing in three durum wheat (Triticum durum Desf.) cultivars performing differently in arid conditions. Plant Science, 160, 669- 681.
5
Bates, I.S., Waldern, R.P. & Teare, I.D. (1973). Rapid determination of free Proline for water stress studies. Plant and Soil, 39, 205- 207.
6
Bessembinder, J.J.E., Leffelaar, P.A., Dhindwal, A.S. & Ponsioen, T.C. (2005). Which crop and which drop, and the scope for improvement of water productivity. Agricultural Water Management, 73, 113- 130.
7
Bradford, M.M. (1976).A rapid and sensitive for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemist,72, 248-254
8
Cattivelli, L., Rizza, F., Badeck, F.W., Mazzucotelli, E., Mastrangelo, A.M., Francia, E., Mare, C., Tondelliand A. & Stanca M.(2008). Drought tolerance improvement in crop plants: An integrated view from breeding to genomics. Field Crops Research, 105, 1-14.
9
Dehqanzadeh, H., Khajehpour, M.R., Heidari Sharif Abad, H. & Soleimani, A.S. (2008).Effect of limited irrigation on the accumulation of proline, free soluble sugars and potassium in bread wheat cultivars. 10th Iran. Cong Agron. Plant Breed Science, 430p.
10
Devnarain, N, Crampton, BG, Chikwamba, R, Becker, JVW. & O’Kennedy, MM. (2016). Physiological responses of selected African sorghum landraces to progressive water stress and re-watering. The South African Journal of Botany, 103, 61-69.
11
Foyer, C. & Noctor, G. (2003). Redox sensing and signaling associated with reactive oxygen in chloroplasts, peroxisomes and mitochondria. PhysiologyPlanetarium, 119, 355- 364.
12
Garg, N. & Manchanda, G. (2009). ROS generation in plants: boon or bane. Plant Biopsy, 143, 8- 96.
13
Ghorbanli, M. & Niakan, M. (2005). Effect of drought stress on soluble sugar, protein, proline, phenolic compounds and nitrate reductase enzyme activity in soybean varieties in Gorgan. Journal of Science Teacher Education, 5, 537-549. (In Farsi).
14
Gunes, A., Inal, A., Adak, M.S., Bagci, E.G., Cicek, N. & Eraslan, F. (2008). Effect of drought stress implemented at pre-or post-anthesis stage on some physiological parameters as screening criteria in chickpea cultivars. Russian Journal Plant Physiology, 55, 59- 67.
15
Haj Hosseini Asl, N., Moradi Aghdam, A., Shirani Rad, A.H., Hosseini, N. & Resay Far, M. (2010). Effects of drying stress on yield and agronomic traits of millet, sorghum and maize relay intercropping. Journal of Agricultural Research, 1, 63-74. (In Farsi)
16
Hassanzadeh, M., Ebadi, A., Panahyan-e-Kivi, M., Eshgih, A.G., Jamaati-e-Somarin, Sh., Saeidi, M. & Zabihie Mahmoodabad, R. (2009). Evaluation of drought stress on relative water content and chlorophyll content of Sesame (Sesamum indicum L.) genotypes at early flowering stage. Research Journal of Environmental Sciences,3(3), 345-350.
17
Ingram, J. & Bartles, D. (1996).The molecular basis of dehydration tolerance in plants. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 47, 377- 403.
18
Irigoyen, J.J., Emerich, D.W. & Sanchez- Diaz, M. (1992). Alfalfa leaf senescense induced by drought stress: photosnthesis, hydrogen peroxide metabolism, lipid peroxidation and athylene evoluation. Physiology Planetarium, 84, 67- 72.
19
Jabari, f., Ahmadi, A., Poustini, K. & Alizadeh, H. (2006). Evaluation of some antioxidant enzyme effects on chlorophyll and cell membrane in drought susceptible and tolerant wheat varieties. Iranian Journal Agriculture Science,37, 307-316.
20
Karo, M. & Mishra, D. (1976). Catalase, peroxidase and polyphenol oxidase activity during rice leaf senescence. Plant Physiology 57: 315-319.
21
Koyro, H.W. (2006). Effect of salinity on growth, photosynthesis, water relations and solute composition of potential cash crop halophyte Plantago coronopus (L.). Environmental and Experimental Botany, 56, 136-149.
22
Liu, H., Sultan, M.A.R.F., Liu, X.L., Zhang, J., Yu, F. & Zhao, H.X., (2015). Physiological and comparative proteomic analysis reveals different drought responses in roots and leaves of drought-tolerant wild wheat (Triticum boeoticum). PLoS One, 10(10), 25-36.
23
Mittler, R. (2002). Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance. Trends in Plant Science, 7, 405-410.
24
Mittler, R., Vanderauwera, S., Gollery, M. & Breusegem, F.V. (2004). Reactive oxygen gene network of plants. Trends in Plant Science, 9, 490- 498.
25
Mohsenzade, S., Malboobi, M.A., Razavi, K., & Farrahi Aschtiani, S. (2006). Physiological and molecular responses of Aeluropus lagopoides (poaceas) to water deficit. Environmental and Experimental Botany, 56, 374-322.
26
Movludi, A. Ebadi, A. Jahanbakhsh, S. Davari, M. & Parmoon. Gh. (2014). The effect of water deficit and nitrogen on the antioxidant enzymes’ activity and quantum yield of barley (Hordeum vulgare L.). Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 42(2), 398-404.
27
Mureiel, J. (1984). Free proline and reducing sugars accumulation in water stress. Ser-Agrincola, 29, 39- 46.
28
Oncel, I., Keles, Y. & Ustun, A.S. (2000). Interactive of temperature and heavy metal stress on the growth and some biological compounds in wheat seedling. Environmental Pollution, 107, 15-320.
29
Pagter, M., Bragato, C. & Brix, H. (2005). Tolerance and physiological responses of phragmites australis to water deficit. Aquatic Botany, 81, 285-299.
30
Polidoros, N.A. & Scandalios, J.G. (1999). Role of hydrogen peroxide and different classes of antioxidants in the regulation of catalase and glutathione S-transferees gene expression in maize (Zea mays L.). Physiology Planetarium, 106, 112- 120.
31
Ranjan, R., Bohra, S.P. & Jeel, A.M. (2001). Book of plant senescence. Jodhpur, Agrobios New York, PP. 18- 42.
32
Riahani Nia, SH., Khazaei H. R. Kafie, M. & Nezami, A. (2012). Effect of soil drought stress and different nitrogen levels on some biochemical characteristics of grain sorghum cultivars in greenhouse conditions. Journal of Science and Technology of Greenhouse Culture, 70, 14-60. (In Farsi).
33
Sajjadinia, A., Ershadi, A., Hokmabadi, H., Khayyat, M. & Gholami, M. (2010). Gas exchange activities and relative water content at different fruit growth and developmental stages of on and off cultivated pistachio trees. American Journal of Agricultural Economics, 1, 1- 6.
34
Sudhakar, C., Lakshmi, A. & Giridara kumar, S. (2001). Changes in the antioxidant enzyme efficacy in two high yielding genotypes of mulberry (Mours alba L.) under NaCl salinity, Plant Science, 167, 613-619.
35
Turkan, I., Bor, M., Ozdemir, F. & Koca, H. (2005). Differential responses of lipid peroxidation and antioxidants in the leaves of drought tolerant P. acutifolius Gray and drought sensitive P. vulgaris L. subjected to polyethylene glycol mediated water stress. Plant Science, 168, 223- 231
36
Umar, SH. (2006).Alleviating adverse effects of water stress on yield of sorghum, mustard and groundnut by potassium. Pakistan Journal of Botany, 38, 1373-1380.
37
ORIGINAL_ARTICLE
پاسخهای فیزیولوژی زیره سبز (Cuminum cyminum L) به تنش کمآبی
به منظور مطالعه اثر تنش کم آبی بر برخی از صفات فیزیولوژی، آزمایشی در قالب طرح لاتیس ساده با استفاده از 49 اکوتیپ بومی زیره سبز (Cuminum cyminum) در دو تکرار تحت شرایط تنش کمآبی و نرمال در سال زراعی 92-1391 در مزرعه تحقیقاتی پردیس ابوریحان دانشگاه تهران اجرا گردید. صفاتی از قبیل غلظت اسیدآمینه پرولین، محتوای قندهای محلول، اسانس، کلروفیلa، کلروفیلb، کاروتنوئید، محتوی نسبی آب برگ و عملکرد دانه اندازهگیری شد. نتایج نشان داد که اثر تنش کمآبی بر کلیه صفات مورد بررسی معنیدار (0.01≥p) بود. با اعمال تنش، به ترتیب غلظت کلروفیل a، b، کاروتنوئید، محتوی نسبی آب برگ و عملکرد دانه 40، 32، 52، 9 و 19 درصد کاهش یافت و بر غلظت پرولین، قندهای محلول و اسانس 30، 55 و 56 درصد افزوده شد. با توجه به نتایج مقایسات میانگین نیز به ترتیب اکوتیپ های کاشمر، چترود، ایوانکی، گنبد، اردکان، سیوند، قائن و بانه بیشترین مقدار کاروتنوئید، کلروفیلa، کلروفیلb، محتوی نسبی آب برگ، قندهای محلول، پرولین، درصد اسانس و عملکرد دانه را داشتند. به طور کلی گیاه دارویی زیره سبز بهعنوان یک گیاه نیمه مقاوم به تنش کمآبی از سازوکارهای فیزیولوژیکی مختلفی برای مقابله با تنش استفاده میکند که با روشهای بهنژادی میتوان در جهت تولید ارقام متحمل با عملکرد کافی از آنها بهره جست.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65477_2eeacba4d994be608bb55d486f92f2b4.pdf
2018-02-20
1099
1113
10.22059/ijfcs.2017.211455.654151
اسانس
پرولین
تنش کمآبی
زیره سبز
صفات فیزیولوژی
حسین
کاظمی
h.kazemi68@ut.ac.ir
1
دانشجوی سابق کارشناسی ارشد اصلاح نباتات پردیس ابوریحان دانشگاه تهران
AUTHOR
سیدمحمدمهدی
مرتضویان
mortazavian@ut.ac.ir
2
عضو هیات علمی دانشگاه تهران - پردیس ابوریحان
LEAD_AUTHOR
مجید
قربانی جاوید
mjavid@ut.ac.ir
3
استادیار گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات پردیس ابوریحان دانشگاه تهران
AUTHOR
Abdul Wasea, A. A. & Khalid., M.E. (2011). Alleviation of drought stress of marigold (Tagetes erecta) plant by using arbuscular mycorrhizal fungi. Saudi Journal of Biological Sciences, 18, 93-98.
1
Akbari, SH., Kafi, M. & Rezvan Bidokhti, S.H. (2016). Effects of drought and plant density on some biochemical and physiological characteristics of two ecotypes of garlic )Allium sativum L .(Iranian agricultural research, 14(4). (In Farsi).
2
Andalibi, B., Zehtab Salmasi, S., Ghassemi Gholezani, K. & Saba, J. (2010). Changes in essential oil yield and composition at different parts of dill (Anethum graveolens L.) under limited irrigation conditions. Journal of Agricultural Science (University Of Tabriz), 21, 11-22. (In Farsi).
3
Arnon, D.I. (1949). Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology,24, 1-15.
4
Azari Nasrabad, AS., Mousavi Nick, SM., Golavi, M., Beheshti, AS. & Sirus Mehr, AS. (2016). Effect of drought stress in different growth stages on yield and its components and biochemical characteristics of grain sorghum genotypes. Iranian agricultural research, 15(3). (In Farsi)
5
Bates, L.S., Waldren, R.P. & Teare, L.D. (1973). Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and Soil, 39, 205-207.
6
Beltrano, J. & Ronco, M.G. (2008). Improved tolerance of wheat plants (Triticum aestivum L.) to drought stress and rewatering by the arbuscular mycorrhizal fungus Glomus claroideum: Effect on growth and cell membrane stability. Brazilian Journal of Plant Physiology, 20(1), 29-37.
7
Blum, A. (1996). Crop responses to drought and the interpretation of adaptation. Plant Growth Regulation, 20, 135-148.
8
Damayanthi, M.M.N., Mohtti, A.J. & Nissanka, S.P. (2010). Comparison of tolerant ability of mature field grown tea (Camellia sinensis L.) cultivars exposed to a drought stress in Passara Area. Tropical Agriculture Research, 22, 66-75.
9
Einizade, P., Dehghani, H. & Khodadadi, M. (2016). Investigation of drought stress tolerance and adaptation in iranian endemic coriander (Coriandrum sativum L.) populations. Iranian Journal of Horticultural Science, 47(2), 317-327. (In Farsi).
10
Farahani, H.A., Valadabadi, A. & Rahmani, N. (2008). Effects of nitrogen on oil yield and itscomponent of Calendula (Calendula officinalis L.) min drought stress conditions. African Journal of Traditional, Complementary and Alternative medicines, Abstracts of the World Congress on Medicinal and Aromatic Plants, 364p. (In Farsi).
11
Ghafari, M., Torchi, M., Valizadeh, M. & Shakiba, M.R. (2014). Grain Yield Stabilizing Physiological Characteristics of Sunflower under Limited Irrigation Condition. Journal of agricultural science and sustainable production, 24(4), 98-108. (In Farsi).
12
Gholi Nejad, R., Sirousmehr, AS. & Fakheri, B. (2014). Effects of drought and organic fertilizers on the activity of antioxidant enzymes, photosynthetic pigments, proline and performance of borage (Borago officinalis L.). Journal of Horticultural Science, 28(3), 338-346.
13
Heidary, N., PoorYousefi, M. & Tavakoli, A. (2014). Effects of drought stress on photosynthesis, its parameters and relative water content of anise (Pimpinella anisum L.). Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 27(5), 829-839. (In Farsi).
14
Imam, Y. & Zavarehi, M. (2005). Drought tolerance in Higher plants (Genetically, Physiological and Molecular Biological Analysis). Academic Publishing Center of Tehran, Iran. 186 pp. (in Farsi).
15
Irrigoyen, J.H., Emerich, D.W. & Sanchez Diaz, M. (1992). Water stress induced changes in concentration of proline and total soluble sugars in modulated alfalfa (Medicago sativa). plant Physiological Pantarum, 84, 55-60.
16
Jafarzadeh, L., Omidi, H. & Bostani, A.S. (2014). The study of drought stress and Bio fertilizer of nitrogen on some biochemical traits of Marigold medicinal plant (Calendula officinalis L.). Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 27(2), 180-193. (In Farsi).
17
Jiang, Y. & Huang, N. (2001). Drought and heat sress injury to two cool-season turfgrasses in relation to antiaxdant metabolism and lipid peroxidation. Crop Science, 41, 436-442.
18
Jian Yong, W., Neil, T., Ying Xia, L., Kadambot, M.H. & YouCai, Xi. (2016). Effects of drought stress on morphological, physiological and biochemical characteristics of wheat species differing in ploidy level. Plant function and evolutionary biology, 44(2), 219-234.
19
Kabiri, R., Farahbakhsh, H. & Nasibi F. (2014). Effect of drought stress on physiological and biochemical characteristics of Nigella sativa L. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants,30(4), 600-609.
20
Kafi, M., Borzoee, A., Salehi Kamandi, A., Masoumi, A. & Nabati, A. (2009). Physiology of Environmental Stresses in Plant. Ferdowsi University of Mashhad Publication, Iran. 502 pp (In Farsi).
21
Kafi, M. & Damghani, A. (2000). Mechanism of Environmental Stress Resistance in Plants. Ferdowsi University of Mashhad Publication, Iran. 467 pp. (In Farsi).
22
Karimzadeh, Kh., Sefidkon, F., Majnoon Hosseini, N. & Peighambari, AS. (2014). The effect of different levels of soil moisture, zeolite and biofertilizers on physiological characteristics, yield and essential oil of dragonhead (Dracocephalum moldavica L.). Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 30(1), 158-173.
23
Khazaei, Z. & Sayari, M. (2014). Effect of foliar application of 5- aminolevulinic acid on growth, some physiological factors and yield of sweet pepper (Capsicum annuum L.) under drought stress. Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 28(5). 952-961. (In Farsi).
24
Khezri Afravi, M., Hosseinzade, A., Mohammadi, V.A. & Ahmadi, A. (2010). Evaluation of drought resistance in native varieties of durum wheat under water stress and normal irrigation. Journal of Science Crop Iran, 4, 741-753.
25
Kuznetsov, V.I. & Shevykova, N.I. (1999). Proline under stress: Biological role, metabolism, and regulation. Russian Journal of Plant Physiology, 46, 274-287.
26
Loggini, B., Scartazza, A., Brugnoli, E., & Navari Izzo, F. (1999). Antioxidative defense system pigment composition and photosynthetic efficiency in two wheat cultivars subjected to Drought. Plant Physiology, 119, 1091-1100.
27
Mahmood, S., Iram, S. & Athar, H.R. (2003). Intra- specific various quantitative and qualitative attributes under differential salt region. Journal of Research in Science Teaching, 14, 177-186.
28
Moghaddam, M., Alirezaei, M., Salahvarzi, Y. & Goldani, M. (2014). The effect of drought stress on some morphological and physicochemical characteristics of three cultivars of basil (Ocimum basilicum L.). Iranian Journal of Horticultural Science, 46(3), 509-521.
29
Moghaddam, R., Khodarahmi, M. & Ahmadi, GH.H. (2011). Study of genetic diversity and factor analysis for grain yield and other morphological traits under drought stress condition. Journal of Agronomy and Plant Breeding, 7(1), 133-147. (In Farsi).
30
Omidbaigi, R. (2007). Production and processing of medicinal plants. Journal of Agricultural Knowledge and sustainable production, Astan Ghods Publication, Vol. 2, 438 p. (In Farsi).
31
PoorYousefi, M. (2013). Effects of terminal drought stress and harvesting time on seed yield and essential oil content of fennel (Foeniculum vulgare L.). Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 30(6), 889-897. (In Farsi).
32
Rezaei Chyanh, A., Zehtab, S., Ghasemi Golezani, K. & Delazar, A. (2012). Physiological reaction fennel (Foeniculum vulgarL) to water limitation.Journal of Agricultural Ecology, 4, 347-355. (In Farsi).
33
Rezapor, A.R., Heidari, M., Galavi, M. & Ramrodi, M. (2011). Effect of water stress and different amounts of sulfur fertilizer on grain yield, grain yield components and osmotic adjustment in Nigella sativa L. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 27, 384-396.
34
Rizopoulou, S. & Diamantoglon, S. (1991). Water stress, induced diurnal variation in leaf water relation stomatal conductance, soluble sugar, lipids and essential oil content of Origanum majorana L. Journal of Horticulture Science, 66, 119-125.
35
Sato, F., Yoshioka, H., Fujiwara, T., Higashio, H., Uragami, A., and Tokuda, S. 2004. Physiological responses of cabbage plug seedlings to water stress during low-temperature storage in darkness. Journal of Horticulture Science, 101, 349-357.
36
Sabet Teimouri, M., Kafi, M., Avarseji, Z. & Orooji, K. (2010). Effect of drought stress, corm size and corm tunic on morphoecophysiological characteristics of saffron (Crocus sativus L.) in greenhouse conditions. Journal of Agroecology, 2, 323-334. (In Farsi).
37
Sanchez, F.J., Manzanares, M., Andres, E.F., Ternorio, J.L., Ayerbe, L. & De Andres, E.F. (1998). Turgor maintenance. Osmotic adjustment and soluble sugar and proline accumulation in 49 Pea cultivars in response to water stress. Field Crops Research, 59, 225-235.
38
Schutz, M. & Fangmeir, E. (2001). Growth and yield responses of spring wheat (Triticum aestivum L.) to elevated CO2 and water limitation. Environmental Pollution, 114, 187-194.
39
Sefid kon, F. & Rahimi Bidgoli, A. (2002). Quantitative and qualitative variation assessment of Thymus kotschyanus essence in plant growth duration and using several instillation methods. JMed Aromatics Plant Research, 15, 1-22.
40
Setayeshmehr, Z. & Ganjali, AS. (2013). Effects of drought stress on growth and physiological characteristics of dill (Anethum graveolens L.). Journal of Horticultural Science, 27(1), 27-35. (In Farsi).
41
Smirnoff, N. (1993). The role active oxygen in the response of plants to water tolerance, Plant Science, 6, 431- 438.
42
Suriyan, C. & Chalermpol, K. (2009). Proline accumulation, photosynthetic abilities and growth characters of sugarcane (Saccharum officinarum L.) plantlets in response to iso-osmotic salt and water deficit stress. Agricultural Sciences in China, 8, 51- 58.
43
Talebi, R., Ensafi, M.H., Baghbani, N., Karami, E. & Mohammadi, K.H. (2013). Physiological responses of chickpea (Cicer arietinum L.) genotypes to drought stress. Environmenatal and Experimental Biology, 11, 9-15.
44
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تنوع ژنتیکی اکوتیپ های خار مریم Silybum marianum L.)) با استفاده از نشانگرهای ISSR
به منظور بررسی تنوع ژنتیکی 77 نمونه خارمریم جمع آوری شده از 20 منطقه کشور ایران (7 استان)و یک رقم خارجی از بوداپست مجارستان، آزمایشی در قالب طرح بلوک های کامل تصادفی در مزرعه دانشکده کشاورزی دانشگاه زنجان با سه تکرار اجرا شد. در این مطالعه تنوع ژنتیکی و گروه بندی اکوتیپ های مختلف خارمریم با استفاده از نشانگرهای ISSR انجام شد. از 12 آغازگر مورد استفاده 10 آغازگر توانستند نوار چندشکل ایجاد کنند. بیشترین میزان محتوای چندشکلی (PIC) مربوط به آغازگرهای((0.492 UBC809 ، 0.487)) UBC 842 و UBC 826 (0.443) کمترین مقدار آن مربوط به آغازگر UBC1 (0.121) بود. تجزیه خوشه ای براساس الگوریتم UPGMA نمونه های مورد مطالعه را در 9 گروه قرار داد. به منظور تجزیه واریانس مولکولی یک تقسیم بندی اولیه بر اساس منطقه جغرافیایی اکوتیپ ها را در 8 گروه تقسیم بندی نمود. نتایج آن برای کل جمعیت (77 نمونه) و برای گروه های مورد مطالعه نشان داد که واریانس درون جمعیت (84 درصد) نسبت به واریانس بین جمعیت (16 درصد) بیشتر بود طبیعت دگرگشن این گیاه و گرده افشانی باز دلیل تنوع بیشتر درون گروهی نسبت به بین گروهی می باشد. تجزیه به مولفه های اصلی، در مجموع شش مولفه با 5/87 درصد از تغییرات کل داده ها را توجیه نمود. توجیه در صد کمی از تغییرات کل توسط هر مولفه می تواند بیانگر پوشش ژنومی مناسب نشانگرهای ISSR انتخاب شده باشد. در مجموع نتایج حاصل از ISSR نشان داد که این تکنیک روش مناسبی برای مطالعه ساختار ژنتیکی جمعیت خارمریم است
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65478_1bda5ec2b4321d34ff62390c27eb3a8a.pdf
2018-02-20
1115
1124
10.22059/ijfcs.2017.225444.654255
نشانگر ISSR
محتوای اطلاعات چندشکلی
تجزیه خوشه ای
تجزیه به مولفه های اصلی
علیه
گنج خانلو
aliehganjkhanloo@yahoo.com
1
دانشجوی دکتری اصلاح نباتاتوگروه زراعت و اصلاح نباتات, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی, دانشگاه تهران.
AUTHOR
علیرضا
طالعی
ataleei@ut.ac.ir
2
استاد دانشگاه تهران
LEAD_AUTHOR
پرویز
مرادی
parvizmoradi@gmail.com
3
مرکز تحقیقات زنجان
AUTHOR
منیژه
سبکدست
msabokdast@ut.ac.ir
4
گروه زراعت و اصلاح نباتات, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی, دانشگاه تهران
AUTHOR
Ahmadi, H., Rahimmalek, M. & Zeinali, H,. (2014). Assessment of the genetic variation of chamomile (Matricaria chamomilla L.) populations using phytochemical, morphological and ISSR markers. Biochemical Systematics and Ecolog. Vol 54. Pp 190-197.
1
Aminjorabadi, F., Cheghamirza, K. & Bahraminejad, S. (2012). Assessment of Genetic Variation in Silybum marianum Using Mollecular Markers, 12 th Iranian Genetics Congress, Sh Beheshti University.(In Farsi)
2
Asghari-Zakaria, R., Kazemi, H., Aghayev, Y.M., Valizadeh, M. & Moghaddam, M., (2002). Karyotype and C-banding patterns of mitotic chromosomes in Henrardia persica (Boiss.) C.E. Hubb. Caryologia 55(4): 289-293.
3
Azdet, T., Iglesias, J., & Martinez, F., (1993). Flavnolignans in the fruits of Silybum genus taxa: A chromatographic and mass spectrometric survey. Plants Medicianales. 26 :117- 129
4
Bramwell, D. (2002). How many plant species are there? Plant Talk Science. 28: 32–34.
5
Chen, J., Gituru, W., Wang, Y. & Wang, Q. (2006). The extent of clonality and genetic diversity in the rare Caldesia grandis (Alismataceae): comparative results for RAPD and ISSR markers. Aquatic Botany 27: 45-52.
6
Fazeli, F & Cheghamirza, K . (2011). Investigation of genetic diversity in iranian landrace chickpea bulks using ISSR marker. Modern genetic, vol6(2), 97-104.
7
Garayalde, A. F., Poveren, M. & Carrera, A. D. (2011). Wild sunflower diversity in Argentina reveald by ISSR and SSR markers an approach for conservation and breeding programmers. Annals of Applied Biology 158: 305-317.
8
Gahreman, A. (1983). Collered Flore of Iran. Research Institute of Forests and Rangelands. 9: 1095-1099.
9
Gharibi, Sh., Rahimmalek, M., Mirlohi, A. & Majidi, M. (2011). Assessment of genetic diversity in Achillea millefolium subsp. Illefolium and Achillea illefolium subsp. Elbursensis using morphological and ISSR markers . Jornal Medici Research vol .5 (11): 2413-2423.
10
Golkar , P., Arzani , A. & Abdolmajid, R. (2011). Genetic Variation in Safflower (Carthamus tinctorious L.) for Seed Quality-Related Traits and Inter-Simple Sequence Repeat (ISSR) Marker. Molecular Sciences. 12: 2664-2677.
11
Hamrick, J.L. & Godt, M.J.W. (1997). Effects of life history traits on genetic diversity in plant species. 102-118. In: Silvertown J., (ed.). Plant LifeHistories. Ecology, Phylogeny and Evolution.Cambridge University Press, Cambridge, UK. 307.
12
Hatami Maleki, H., Darvishzadeh, R. & Mohseni, Z., (2014). Evalution of genetic diversity and classification of advanced sun flower lines using ISSR markers, Agricultural Biotechnology, 6(3), 33-45. .(In Farsi)
13
Krasnikov, A.A., Zhirova, O.S., Lomonosova, M.N. & Smirnov, S.V. (2003). Chromosome numbers of Asteraceae from the southern Siberia and Kazakstan. Euphytica. 88: 151–153.
14
Kren V, Ulrichova J, Kosina P, Stevenson D, Sedmera P, Prikrylova V, Halada P. & Simanek V.,( 2000). Chemoenzymatic preparation of silybin β- glucoronides and their biological evaluation. Drag Metabolism and Disposition.; 28: 1513-1517.
15
Lopez-Pujol, J., Bosch, M., Simon, J. & Blanche, C. (2004). Allozyme diversity in the tetraploid endemic Thymus loscosii (laminaceae). Annals of Botany, 93,0323-332.
16
17. Mohammadi, S., Shokrpour , M., Moghaddam, M. & Javanshir , A.,( 2011). AFLP-based molecular characterization and population structure analysis of Silybum marianum L. Plant Genetic Resources 9 (3) : 445-453.
17
Mohammadi,, S.A. & Prassanna, B. M. (2003). Analysis of genetic diversity in crop plants – salient statistical tools and considerations. Crop Science, 43, 1235-1248.
18
Moraga, A., Trapero-Mozos, A., Gómez-Gómez, L. & Ahrazem, O. ,(2010). Intersimple sequence repeat markers for molecular characterization of Crocus cartwrightianus cv. albus. Ind. Crop Science. 123–132 .
19
Powell, W., Morgante, M., Andre, C., Vgel, J., Tingey, S., and Rafalaski, A. (1996). The comparison of RFLP, RAPD, AFLP and SSR (microsatelite) markers for germplasm analysis. Molecular Breeding, 2, 225-238.
20
Rainone , F.,( 2005). Milk thistle. American Family Physician; 72(7): 1285-1288
21
Ram, G. Bhan, M.K. Gupta, K.K. Brijesh Thaker,U. Jamwal, S. Pal. 2005. Variability pattern and correlation studies in Silybum marianum Gaertn. Fitoterapia. 76: 143-147.
22
Rasmieh, H., Siahposh, M., Mameghani, R. & Siahposh, M.R. (2014). Assessment of Genetic Variation in ten Ecotype Silybum marianum Using Morphologic, phenologic and phytochemical characters,Plant Production technology, 1(37), 35-45 .(In Farsi)
23
Sepehry Javan, Z., Rahmani, F. & Heidari, R.,( 2012). Assessment of genetic variation of genus Salvia by RAPD and ISSR markers. Australian Journal of Crop Science, 6(6):1068-1073.
24
Sharaf1. A., Ahmed Bahieldin. A., Ibrahim. S . & Khalil, A.( 2010). Biochemical and genetic characterization of 12 Silybum marianum accessions collected from Borg El-Arab, an Egyptian Habitat, Functional Plant Science and Biotechnolog. 12 (5) : 22-27
25
Shokrpour, M., Mohammadi, S.A., Moghaddam, M., Ziai, S.A. & Javanshir, A.( 2008). Variation in flavonolignan concentration of milk thistle (Silybum marianum) fruits grown in Iran. Journal of Herbs, Spices & Medicinal Plants( In Farsi).
26
Wang, X., Zhao, F., Hu, Z. & Critchley, A. (2008). Inter-simple sequence repeat (ISSR) analysis of genetic variation of Chondrus crispus populations from North Atlantic. Aquatib Botany.31: 145-154.
27
ORIGINAL_ARTICLE
صفات مهم در گزینش جمعیتهای سورگوم جارویی برای عملکرد جارو
به منظور ارزیابی هفت توده بومی سورگوم جارویی و تعیین صفات موثر در گزینش ژنوتیپهای برتر از نظر عملکرد جارو، آزمایشی طی دو سال زراعی 1393 و 1394 در مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان آذربایجانشرقی اجرا شد. تجزیه واریانس دادههای اندازهگیری شده مربوط به جمعیت پایه در سال 1393 نشان داد که بین جمعیتهای مورد مطالعه از نظر اکثر صفات مورد ارزیابی اختلاف معنیداری وجود دارد. در جمعیت حاصل از ژنوتیپهای برتر، در میانگین بسیاری از صفات نسبت به جمعیت پایه اختلاف معنیدار مشاهده گردید. بیشترین و کمترین برآورد وراثت پذیری به ترتیب با 89 و 41 درصد برای صفات قطر ساقه و تعداد برگ برآورد شد. تجزیه علّیت در مرحله پس از برداشت، نشان داد که صفات وزن تر ساقه، طول برگ پرچم و قطر پدانکل، اثرات مستقیم معنیداری بر عملکرد پانیکول دارند که وزن تر ساقه را میتوان به عنوان مهمترین صفت در گزینش عملکرد جارو تلقی نمود. در تجزیه علّیت برای عملکرد پانیکول در شرایط قبل از برداشت از مزرعه و بدون نیاز به اندازهگیری وزن ساقه و طول پانیکول و قطر پدانکول، بیشترین اثرات مستقیم به ترتیب با مقادیر 559/0، 231/0، 191/0 و 090/0 متعلق به صفات طول برگ پرچم، تعداد برگ، قطر ساقه و ارتفاع بوته بود. به نظر میرسد برای صرفهجویی در هزینهها در مراحل اولیه گزینش و قبل از برداشت سورگوم جارویی از مزرعه، میتوان از معیار طول برگ پرچم برای گزینش ژنوتیپهای برتر استفاده نمود.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65479_305137ac92f69d4ea6e814be608a96c3.pdf
2018-02-20
1125
1137
10.22059/ijfcs.2017.220416.654216
تجزیه علّیت
رگرسیون
سورگوم جارویی
وراثت پذیری
حسن
منیری فر
monirifar@yahoo.com
1
مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان آذربایجان شرقی
LEAD_AUTHOR
Aba, D. A., Nwasike, C. C., Yeye, M. & Zaria, A. A. (2001). Studies on genetic variations in sorghum variety irradiated with cobalt-60 (CO60). Crop Science, 9: 377-384.
1
Abbasi, M. R. & Nakhfroush, A. R. (2007). Identification of salinity tolerance in sorghum germplasm in National Plant Gene Bank of Iran. Iranian Journal of Crop Sciences, 10(2), 191-207. (in Farsi)
2
Abu-Gasim, E. H. & Kambal, A. E. (1985). Variability and interrelationship among characters in indigenous grain sorghum of the Sudan. Crop Science, 11, 308-309.
3
Ali, M., Jabran, K., Awan, S., Abbas, A., Zulkiffal, E. M., Acet, T., . . . Rehman, A. (2011). Morpho-physiological diversity and its implications for improving drought tolerance in grain sorghum at different growth stages. Australian Journal of Crop Science, 5(3), 311-320.
4
Arunkumar, B., Biradar, B. D. & Salimath, P. M. (2004). Genetic Variability and Character Association Studies in Rabi sorghum. Karnataka Journal of Agricultural Science, 17(3), 471-475.
5
Basu, A. K. (1981). Variability and heritability estimate from Inter-season Sorghum Cross. Indian Journal of Agricultural Science, 41, 116-117.
6
Bello, D., Kadams, A. M., Simon, S. Y. & Mashi, D. S. (2007). Studies on genetic variability in cultivated sorghum (Sorghum bicolor L. Moench) cultivars of Adamawa State, Nigeria. Am-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Science, 2, 297-302.
7
Berenji, J., Dahlberg, J., Sikora, V. & Latkovic, D. (2011). Origin, History, Morphology, Production, Improvement, and Utilization of Broomcorn (Sorghum bicolor (L.) Moench) in Serbia. Economic Botany, 65(2), 190-208.
8
Biswas, B.K., Hasanuzzaman, M., Eltaj, F., Alam, M. S. & Amin, M. R. (2001). Simultaneous selection for fodder and grain yield in sorghum. Journal of Biological Science, 1: 319-320.
9
Brown, P. J., Klein, P. E., Bortiri, E., Acharya, C. B., Rooney, W. L. & Kresovich, S. (2006). Inheritance of inflorescence architecture in sorghum. Theoretical and Applied Genetics, 10, 931-942.
10
Carter, P. R., Hicks, D. R., Kaminski, A. R., Doll, J. D., Kelling, K. A. & Worf, G. L. (2016). Broomcorn. Retrieved September 24, 2016, from https://hort.purdue.edu/newcrop/afcm/broomcorn.html
11
Chavan, S. K., Mahajan, R. C. & Fatak, S. U. (2010). Genetic variability studies in sorghum. Karnataka Journal of Agricultural Science, 23, 322-323.
12
Cox, T. S. & Frey, K., J. (1984). Genetic variation for grain yield and related traits in sorghum introgression populations. Theoretical and Applied Genetics, 68, 145-153.
13
Dahlberg, J. & Wolfrum, E. (2011). Compositional and agronomic evaluation of sorghum biomass as a potential feedstock for renewable fuels. Journal of Bio based Materials and Bioenergy, 4, 1-7.
14
Doggett, H. (1988). Sorghum. London: Longman Scientific & Technical.
15
Emam, Y. (2003) Cereal grain crops. Shiraz University Press. 133-142. (in Farsi)
16
Estilai, A., Ehdaie, B., Nagavi, H., Dierig, D. A., Ray, D. T. & Thompson, A. E. (1992). Correlations and path analysis of agronomic traits in guayule. Crop Science, 32, 953-957.
17
Godbharle, A. R., More, A. W. & Ambekar, S. S. (2010). Genetic variability and correlation studies in elite ‘B’ and ‘R’ lines in Kharif sorghum. Electronic Journal of Plant Breeding, 1, 989-993.
18
Hmon, K. P. W., Shehzad, T. & Okuno, K. (2014). QTLs underlying inflorescence architecture in sorghum (Sorghum bicolor (L.) Moench) as detected by association analysis. Genetic Resources and Crop Evolution, 61, 1545-1564. doi: 10.1007/s10722-014-0129-y
19
Kamala, V., Bramel, P. J., Sivaramakrishnan, S., Chandra, S., Kannan, S., Harikrishna, S. & Manohar Rao, D. (2006). Genetic and phenotypic diversity in downy-mildew-resistant sorghum (Sorghum bicolor (L.) Moench) germplasms. Genetic Resources and Crop Evolution, 53, 1243-1253.
20
Kimber, C. T. (2000). Origins of Domesticated Sorghum and its Early Diffusion to India and China. In C. W. Smith. & R. A. Frederiksen (Eds.), Sorghum: Origin, History, Technology, and Production (pp. 3-98). New York: John Wiley & Sons Inc.
21
Morris, G. P., Ramu, R., Deshpande, S. P., Hash, C. T., Shah, T., Upadhyaya, H. D., . . . Kresovich, S. (2013). Population genomic and genome-wide association studies of agroclimatic traits in sorghum. Proceeding of National Academy of Sciences, 110(2), 453-458.
22
Navabpoor, S. & Rezai, A. (1996). Estimate of genetic parameters in grain yield in related traits in sorghum. Iranian Journal of Agricultural Science, 27(2), 77- 87. (In Farsi)
23
Puspitasari, W., Human, S., Wirnas, D. & Trikoesoemaningtyas, T. (2012). Evaluating genetic variability of sorghum mutant lines tolerant to acid soil. Atom Indonesia, 38, 83-88.
24
Sabiel, S. A. I., Noureldin, I., Baloch, S. K., Baloch, S. U. & Bashir, W. (2015). Genetic variability and estimates of heritability in sorghum (Sorghum bicolor L.) genotypes grown in a semiarid zone of Sudan. Archives of Agronomy and Soil Science. doi:10.1080/03650340.2015.1039522
25
Sami, R. A., Yeye, M. Y., Ishiyaku, M. F. & Usman, I. S. (2013). Heritability studies in some sweet sorghum (Sorghum Bicolor. L. Moench) genotypes. Journal of Biology, Agriculture and Healthcare, 3, 49-51.
26
Sikora, V. (2005). Variability in germplasm of broomcorn(Sorghum bicolor (L.) Moench). (Ph.D. Diss.), University of Novi Sad, Serbia.
27
Sikora, V. & Berenji, J. (2008). Core Collection of Broomcorn(Sorghum bicolor [L.]Moench). Paper presented at the “Breeding 08” Conventional and Molecular Breeding of Field and Vegetable Crops, Institute of Field and Vegetable Crops, Novi Sad.
28
Sikora, V. & Berenji, J. (2010). Razvoj sortimenta sirka metlaša u Institutu za ratarstvo i povrtarstvo Novi Sad. Field and Vegetable Crops Research, 47(1), 363-369.
29
Sikora, V., Popovic, V., Zoric, M., Latkovic, D., Filipovic, V., Tatic, M. & Ikanovic, J. (2016). An Agro-technological characterization of south-eastern European broomcorn landraces. Pakistan Journal of Agricultural Science, 53(3), 1-10. doi: 10.21162/PAKJAS/16.3061
30
Srinivas, G., Satish, K., Madhusudhana, R., Nagaraja, P. R., Murali, M. S. & Seetharama, N. (2009). Identification of quantitative trait loci for agronomically important traits and their association with genic-microsatellite markers in sorghum. Theoretical and Applied Genetics, 118, 1439-1454.
31
Teshome, A., Baum, B. R., Fahrig, L., Torrance, J. K. & Lambert, J. D. (1997). Sorghum [Sorghum bicolor (L.) Moench] landrace variation and classification in North Shewa and South Welo, Ethiopia. Euphytica, 97, 255-263.
32
Tourchi, M. & Rezai, A. M. (1996). Correlation between trait and path analysis for grain yield in sorghum sorghum (Sorghum bicolor L. Moench). Iranian Journal of Agricultural Science, 28(1), 73-86. (In Farsi)
33
Warkard, Y. N., Potdukhe, N. R., Dethe, A. M., Kahate, P. A. & Kotgire, R. R. (2008). Genetic variability, heritability and genetic advance for quantitative traits in sorghum germplasm. Agricultural Science Digest, 28, 165-169.
34
Weibel, D. E. (1970). Broomcorn. In J. S. Wall & W. M. Ross (Eds.), Sorghum Production and Utilization. Westport: The Avi Publishing Company.
35
William, W. T., Boundy, C. A. P. & Millington, A. J. (1987). The effect of sowing date on the growth and yield of three sorghum cultivars. Australian Journal of Agricultural Research, 28, 381-387.
36
Witt Hmon, K. P., Shehzad, T. & Okuno, K. (2013). Variation in inflorescence architecture associated with yield components in sorghum germplasm. Plant Genetic Resources, 11: 1-8.
37
Wong, J. H., Lau, T., Cai, N., Singh, J., Pedersen, J. F., Vensel, W. H., . . . Buchanan, B. B. (2009). Digestibility of protein and starch from sorghum (Sorghum bicolor) is linked to biochemical and structural features of grain endosperm. Journal of Cereal Science, 49(1), 73-82.
38
ORIGINAL_ARTICLE
مدیریت شیمیایی اویارسلام ارغوانی (Cyperus rotundus L.) در مزارع نیشکر
به منظور تعیین کارایی علفکش ایندازیفلم بر مهار علفهرز اویارسلام ارغوانی، آزمایشی در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با 7 تیمار و چهار تکرار در منطقه شعیبیه شهرستان شوشتر انجام شد. تیمارهای اعمال شده علفکش عبارت بودند از: 1 و 2- ایندازیفلم به میزان 50 و 75 گرم مادهی موثر در هکتار بصورت پیش رویشی؛ 3-تری فلوکسیسولفورون + آمترین به میزان 1875 گرم مادهی خالص در هکتار بصورت پس رویشی؛ 4-تو، فور-دی + ام سی پی آ به میزان 5/1687 گرم مادهی خالص در هکتار؛ 5- مخلوط تو، فور-دی + ام سی پی آ (1350 گرم مادهی موثر در هکتار) + متریبیوزین (1400 گرم مادهی موثر در هکتار)؛ 6- شاهد عاری از علف هرز (وجین شده) و 7- شاهد آلوده به علف هرز (بدون تیمار علف کش). نتایج نشان داد که ایندازیفلم به میزان 75 و 50 گرم ماده موثر در هکتار مادهی تجارتی بیشترین تأثیر را در مهار اویارسلام، هم از نظر درصد کاهش تراکم و هم از نظر درصد کاهش وزن خشک اویارسلام نشان داد. بهترین تیمار از نظر وزن تک ساقه (70/0 کیلوگرم در متر مربع)، قطر میانگره وسط (83/1 سانتیمتر)، تعداد میانگره (3/18) و عملکرد نی (88/117 تن در هکتار) نیشکر متعلق به تیمار ایندازیفلم بهمیزان 75 گرم ماده موثر در هکتار بود. بیشترین درصد بریکس، درصد قند اینورت، درصد شکر استحصالی و کمترین میزان الیاف بهترتیب با مقادیر 40/21، 530/0،25/11و 60/12 (تن در هکتار) متعلق به تیمار ایندازیفلم بهمیزان 75 گرم ماده موثر در هکتار بود.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65480_681aea9a2457098ff75ffdab741dee1b.pdf
2018-02-20
1139
1147
10.22059/ijfcs.2017.226120.654262
بریکس
قند اینورت
درصد کاهش تراکم و وزن خشک اویارسلام
شکر سفید استحصالی
عملکرد نی
ایمان
احمدی
imanahmadi200@gmail.com
1
دانشجو/ دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
AUTHOR
الهام
الهی فرد
e.elahifard@ramin.ac.ir
2
دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
LEAD_AUTHOR
عبدالرضا
سیاهپوش
imanahmadi200@yahoo.com
3
دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
AUTHOR
محمد
فرخاری
afarkhari@gmail.com
4
دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
AUTHOR
Bennett, A. C., Ferrel, J. A. & Dusky, J. A. (2004). Weed management in sugarcane. In: R. A. Gilbert (Ed), The Sugarcane Handbook. (pp.1-7) Electronic publication, Agronomy Department, University of Florida, USA.
1
Brabham, C., Lie, L., Gu, Y., Stork, J., Barrett, M. & DeBolt, S. (2014). Indaziflam herbicidal action: A potent cellulose biosynthesis inhibitor. Plant Physiology, 166 (3), 1177-1185.
2
Brosnan, J. T., McCullough, P. E. & Breeden, G. K. (2011). Smooth crabgrass control with indaziflam at various spring timings. Weed Technology, 25 (3), 363-366.
3
Dalley, C. D. & Richard,E. P. (2010). Herbicides as ripeners for sugarcane. Weed Science, 58 (3), 329-333.
4
Dayan, F. E., Green, H. M., Weete, J. D. & Hancock, H. G. (1996). Postemergence activity of sulfentrazone: effect of surfactants and leaf surfaces. Weed Science, 44 (4), 797-803.
5
De Barreda, D. G., Reed, T. V., Yu, J. & McCullough, P. E. (2013). Spring establishment of four warm-season turfgrasses after fall indaziflam applications. Weed Technology, 27 (3), 448-453.
6
Elahifard E., Ghanbari A., Rashed Mohassel M. H., Zand E., Mirshamsi Kakhki A. & Mohkami A. (2013). Characterization of triazine resistant biotypes of junglerice (Echinochloa colona (L.) Link.) found in Iran. Australian Journal of Crop Science, 7 (9), 1302-1308.
7
Etheredge, L. M., Griffin, J. L. & Boudreaux. (2010). Nutsedge control programs in sugarcane. Journal American Society of Sugarcane Technologist, 30 (1), 67-80.
8
Grey, T. L., Rucker, K., Webster, T. M. & Luo, X. (2016). High-density plantings of olive trees are tolerant to repeated application of indazilflam. Weed Science, 64 (4), 766-771.
9
Gilreath, J. P. & Santos, B. M. (2005). Efficacy of 1,3-dichloropropene plus chloropicrin in combination with herbicides on purple nutsedge (Cyperus rotundus)Control in tomato. Weed Technology, 19 (1), 137-140.
10
Guerra, N., Oliveira Neto, A. M., Oliveira JR, R. S., Constantin, J. & Takano, H. K. (2014). Sensibility of plant species to herbicides aminocyclopyrachlor and indaziflam. Plant Daninha, 32 (3), 609-617.
11
ICUMSA (International Commission for Uniform Methods in Sugar Analysis). 1999. ICUMSA Methods Book and ICUMSA Supplement, Whalley, H.C.S. (Ed.) Elsevier Publishing Company, Amsterdam, London, New York, 420 p.
12
Jeffries, M. D., Mahoney, D. J. & Gannon, T. W. (2014). Effect of simulated indaziflam drift rates on various plant species. Weed Technology, 28 (4), 608-616.
13
Karmollachaab, A., Bakhshandeh, A. M., Moradi Telavat, M. R., Moradi, F. & Shomeili, M. (2015). Effect of chemical ripeners application on yield, quality and technological ripening of sugarcane (Saccharum officinarum L.). Iranian Journal of Crop Science, 17 (1), 63-73.
14
Leon, R. G., Unruh, J. B. & Brecke, B. J. (2016). Relative lateral movement in surface soil of amicarbazone and indaziflam compared with other preemergence herbicides for turfgrass. Weed Technology, 30 (1), 229-237.
15
Lorzadeh, S. (2011). Investigation efficacy of Krismat (75WG) herbicide on purple nutsedge (Cyperus rotundus) in sugarcane (Saccharum officinarum) var CP69-1062 fields of Khuzestan, Iran. Advances in Environmental Biology, 5 (10), 3369-3373.
16
Peng, S. Y. (1984). Development in crop science: The biology and control of weeds in sugarcane (1th ed.). Elsevior Science Publisher. B. V. Amesterdam.
17
Perry, D. H., J. S. McElroy, M. C. Doroh, & R. H. Walker. (2011). Indaziflam utilization for controlling problematic turfgrass weeds. Applied Turfgrass Science. Retrieved December 20, 2016, from https://dl.sciencesocieties.org/publications/ats/abstracts/8/1/2011-0428-01-RS.
18
Rain, P. (2007). Cane sugar engineering (2th ed.). Verlag Dr. Albert Bartens KG-Berlin, Germany.
19
Schneider, J. G., Haguewood, J. B., Song, E., Pan, X., Rutledge, J. M., Monke, B. J., Myers, D. F., Anderson, S. H., Ellersieck, M. R. & Xiong, X. (2011). Indaziflam effect on bermudagrass (Cynodon dactylon L. Pers.) shoot growth and root initiation as influenced by soil texture and organic matter. Retrieved December 15, 2016, from https://scisoc.confex.com/scisoc/2015am/webprogram/Paper94253.html.
20
Troxler, S. C., Wilcot, J. W., Smith, W. D. and Burton, J. (2003). Absorbtion, translocation, and metabolism of foliar-applied CGA-362622 in purple and yellow nutsedge (Cyperus rotundus and C. esculentus). Weed Science, 51 (1), 13-18.
21
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی صفات مورفولوژیک و فیزیولوژی عملکرد ارقام غالب جو (Hordeum vulgare L.) مناطق معتدل و رقم اصلاح شده با دانش هستهای در ایران
آزمایشی در مزرعهی تحقیقاتی پژوهشکده کشاورزی هستهای سازمان انرژی اتمی واقع در کرج در سال 1393 در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با 14 رقم و سه تکرار انجام شد. نتایج نشان داد بین ارقام در اکثر صفات فیزیولوژیک و مورفولوژیک تفاوت معنیدار (a= 0/05) بود. ارقام جدید و رقم رودشت در اغلب موارد از جمله شاخص سطح برگ، کارایی مصرف نور و سرعت رشد گیاه زراعی از برتری خاصی نسبت به ارقام قدیمی و معمولی جو برخوردار بودند. بیشترین ضریب تخصیص برگ مربوط به ارقام والفجر، بهمن و ماکوئی بود که دلیل این امر نیز دیررس بودن بودن آنها و برخوردای از شاخص سطح برگ و سطح ویژه برگ بالا بود. از طرف دیگر ارقام به-رخ، رودشت و ماکوئی از بیشینه نسبت وزن ساقه برخوردار بودند که از دلایل آن میتوان به دوردیفه بودن بهرخ، نیمهپابلندی و هستهای بودن رودشت و پابلندی ماکوئی اشاره نمود. همچنین نتایج نشان داد ارقامی مانند ماکوئی، رودشت و والفجر که بیشترین نسبت وزن برگ و ساقه را دارا بودند نسبت به سایر ارقام از کمترین نسبت وزن سنبله و عملکرد دانه برخوردار بودند. ارقام، لوت، نصرت ریحان 03و فجر30 نیز بیشترین نسبت وزن سنبله داشتند که دلیل این امر شش ردیفه بودن ارقام، زودرسی و کم بودن وزن خشک برگ و ساقه در مرحله گلدهی میباشد. بنابراین میتوان گفت ارقام پابلند، دیررس و رقم اصلاح شده با دانش هستهای نسبت به ارقام پاکوتاه و زودرس از ضریب تخصیص برگ و ساقهی بیشتر و از ضریب تخصیص سنبله و عملکرد دانهی کمتری برخوردار بودند.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65481_fc1b40a1a00972a9323621010d831a01.pdf
2018-02-20
1149
1160
10.22059/ijfcs.2017.202830.654066
ارتفاع بوته
شاخص سطح برگ
ضریب تخصیص
عملکرد دانه
ثریا
نوید
navid.sorayya@yahoo.com
1
دانشجوی دکترای گروه زراعت و اصلاح نباتات،، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
سعید
صوفی زاده
s_soufizadeh@sbu.ac.ir
2
استادیار دانشگاه شهید بهشتی
LEAD_AUTHOR
علی
اسکندری
aliesk73@yahoo.com
3
استادیار پژوهشکده کشاورزی هسته ای پژوهشگاه علوم و فنون هسته ای
AUTHOR
جعفر
کامبوزیا
j_kambouzia@sbu.ac.ir
4
استادیار گروه کشاورزی اکولوژیک، پژوهشکده علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران
AUTHOR
اسکندر
زند
eszand@yahoo.com
5
استاد بخش تحقیقات علفهای هرز، مؤسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور، تهران
AUTHOR
Beheshti., A. R. & Baroyi, Z. (2010). Yield associations with morpho- physiologicaltraits on drought stress in grain sorghum genotypes. Iran. Field Crop Research. 8(3), 559- 568.
1
Beheshti., A. R. & Behboodi Fard, B. (2011). Dry matter accumulation and remobilization in grain sorghum genotypes (Sorghum bicolor L. Moench) under drought stress. Crop Science. 4(3), 185- 189.
2
Bullock, D. G., Niellsen, R. L. & Nyguist, W. E. (1988). A growth analysis of corn growth inconventional andequidistant plant spacing. Crop Science. 28, 245- 258.
3
Bullock, D. G., Nielson, R. L. & Nypuist, W. E. (1988). A growth analysis comparison of corgrowth in conventional and equidistant plant spacing. Crop Science. 24, 1184-1191.
4
Davidson, H. R. & Campbell, C. A. (1984). Growth rates, harvest index and moisture use of Manitou spring wheat as in fluenced by nitrogen, temperature and moisture. Can. Plant Science. 64, 825-839.
5
Fitzpatrick, J. L. (2013). Global food security: The impact of veterinary parasites and parasitologists Veterinary Parasitology. 195, 233-248.
6
Food and Agricultural Organization. (2008). Crop Prospects and Food Situation, 3, July 2008. FAO Refer-encase, Rome, Italy.
7
Gardner, F. B., Pearce, R. B. & Mitchel, R. L. (1985). Physiological of crop plants. Iowa State University Press. USA. pp. 327.
8
Griffiths, A. J. F. & Miller J.H. (1996). An Introduction to Genetic Analysis. 6th Ed., W.H. Freeman Co., New York. (pp. 152).
9
Gupta, P. K., Rustgi, S. & Kumar, N. (2006). Genetic and molecular basis of grain size and grain number and its relevance to grain productivity in higher plants. Genome. 49, 565- 571.
10
Hardwick, R.C. (1984). Some recent development in growth analysis. A review. Ann. Bot. 54, 807- 812.
11
Karimi, M. (1979). Soil moisture stress effects on reproductive and vegetative components of soyabean. Ph.D.thesis. Library. Lowa state University of science and technology. Ames. Lowa.
12
Lutz, A. G. (2010). Dimensions of global population projection: What do we know about futurepopulation trends and structures? Philos. Trans. R. Soc. B. 365, 2779- 2791.
13
Payne, W. A., Wendt, C. W., Hossner, L. R. & Gates., C. E. (1991). Estimating pearl millet leaf area. Agron. 83, 937- 941.
14
Radford, P. J. (1967). Growth analysis. Crop Science. 7, 24-28.
15
Rajput, A., Rajput, S. S. & JHA, G. (2017). Physiological parameters leaf area index, crop growth rate, relative growth rate and net assimilation of different varieties of rice grown under different planting geometries and depth in SRI. Int. J. Pure App. Biosci. 5(1): 362-367.
16
SAS Institute. (2000). The SAS System for Windows, Release 8.0. Carry, NC: Statistical Analysis System Institute.
17
Shih, S. F. & Gascho, G. J. (1980). Relationships among stalk length, leaf area and dry biomass of sugarcane Agron. 72, 309- 313.
18
Smith, C. W. & Fredriksen, R. A. (2000). Sorghum: Organic, History, Technology and Production. John Wiley andons Inc.
19
Wareing, P. F. & Philips, I. D. J. (1990). Growth and differentiation in plants. Pergamon press PIC, Oxford, England. 53, 281-297.
20
Watson, D. J. (1995). The physiological basis of variation in yield. Adv. Agron. 4: 101-145.
21
Xing, Y. & Zhang, Q. (2010). Genetic and molecular basis of rice yield. Annual Review of Plant Biology. 61, 421- 442.
22
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی miRNA ها و ژن های هدف مرتبط با آنها در گیاه خشخاش ( Papaver somniferum)
miRNA ها یک رده از RNA های تنظیم کننده کوچک درون هسته ای و غیرکدکننده پروتئینی که متشکل از حدود 17-22 نوکلئوتید می باشند. miRNA ها بیان ژن را پس از رونویسی از طریق تجزیه mRNA یا مهار ترجمه انها کنترل کرده و نقش های متنوعی را در فرایند های بیولوژیکی و متابولیکی در گیاهان و جانوران بازی می کنند. روش های متعددی برای شناسایی miRNA ها موجود می باشد که یکی از ساده ترین و کم هزینه ترین انها ، روش شناسایی بیوانفورماتیکی می باشد. در این مطالعه با هدف شناسایی miRNA متمایز در گیاه خشخاش، مطالعه ای مبتنی بر جستجوی همولوژی بین EST های گیاه خشخاش و miRNA ها انجام گرفت. بطوریکه ابتدا همه توالی های EST های گیاه خشخاش از بانک اطلاعاتی NCBI در برابر miRNA های شناخته شده BLASTn شدند و در نهایت هفت miRNA کاندید متمایز در گیاه خشخاش شناسایی شد. ژن های هدف شناسایی شده با استفاده از نرم افزارهای مختلف مورد بررسی قرار گرفتند و مشخص گردید که miRNA های کاندید مرتبط با ژن های رمزکننده سرین/ ترئونین کیناز (انتقال سیگنال)، پروتئین های PPR (ویرایش و پایداری RNA )، گلوبولین های7S ( هیدراسیون و دهیدراسیون سلول)، فتوتروپین ها (پاسخ های نورگرایی)، پروتئین های سرین/ ترئونین فسفاتاز (متابولیسم گلیکوژن) و پروتئین های خانواده TIR ( دفاع در برابر باکتریها) می باشد. این ژن ها نقش مهمی در رشد و نمو ، متابولیسم ، تعیین مورفولوژی و زمان گلدهی و پاسخ به استرس های زنده و غیر زنده را بازی می کنند.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65482_6474682fa08c5e7cfe7c66553764e184.pdf
2018-02-20
1161
1170
10.22059/ijfcs.2017.230802.654301
بیوانفورماتیک
همردیفی توالی
EST
RNA غیر رمزاور
علی اکبر
کریمی
alikarimi750@ut.ac.ir
1
دانشگاه تهران
AUTHOR
محمدرضا
نقوی
mnaghavi@ut.ac.ir
2
دانشگاه تهران
LEAD_AUTHOR
جابر
نصیری
jaber.nasiri@ut.ac.ir
3
دانشگاه تهران
AUTHOR
Akana, J., Fedorov, A. A., Fedorov, E., Novak, W.R., Babbitt, P.C., Almo, S.C. & Gerlt, J.A. (2006). D-Ribulose 5-phosphate 3-epimerase: functional and structural relationships to members of the ribulose-phosphate binding (beta/alpha) 8-barrel superfamily. Biochemistry, 45 (8), 2493–503.
1
Altschul, S.F., Madden, T.L., Schaffer, A.A., Zhang, J., Zhang, Z., Miller, W., Lipman, D.J. (1997). Gapped BLAST and PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs. Nucleic Acids Res. 25, 3389–3402.
2
Barratt, D.P., Derbyshire, P., Findlay, K., Pike, M., Wellner, N., Lunn, J. & Smith, A. M. (2009). Normal growth of Arabidopsis requires cytosolic invertase but not sucrose synthase. Proceedings of the National Academy of Sciences, 106(31), 13124-13129.
3
Beam, C. E., Saveson, C. J. & Lovett, S. T. (2002). Role for radA/sms in recombination intermediate processing in Escherichia coli. Journal of Bacteriology, 184(24), 6836-6844.
4
Bertini, I. (2007). Biological inorganic chemistry: structure and reactivity. University Science Books.
5
Bonnet, E., Wuyts, J., Rouze, P. & Peer, Y.V. (2004). Evidence that microRNA precursors, unlike other non-coding RNAs, have lower folding free energies than random sequences. Bioinformatics 20, 2911–2917.
6
Mitcham, J. L., Parnet, P., Bonnert, T. P., Garka, K. E., Gerhart, M. J., Slack, J. L. & Sims, J. E. (1996). T1/ST2 signaling establishes it as a member of an expanding interleukin-1 receptor family. Journal of Biological Chemistry, 271(10), 5777-5783.
7
Dai, X., Zhao, P.X. (2011). PsRNATarget: a plant small RNA target analysis s erver. Nucleic Acids Res. 39, W155–W159.
8
DiDonato, R. J., Arbuckle, E., Buker, S., Sheets, J., Tobar, J., Totong, R. & Celenza, J. L. (2004). Arabidopsis ALF4 encodes a nuclear‐localized protein required for lateral root formation. The Plant Journal, 37(3), 340-353.
9
Hagel, J. M. & Facchini, P. J. (2013). Benzylisoquinoline alkaloid metabolism–a century of discovery and a brave new world. Plant and Cell Physiology, pct020.
10
Hagen, G. & Guilfoyle, T. (2002). Auxin-responsive gene expression: genes, promoters and regulatory factors. Plant Molecular Biology, 49(3-4), 373-385.
11
He, G. H., Helbing, C. C., Wagner, M. J., Sensen, C. W. & Riabowol, K. (2005). Phylogenetic analysis of the ING family of PHD finger proteins. Molecular biology and evolution, 22(1), 104-116.
12
Jin, J. B., Kim, Y. A., Kim, S. J., Lee, S. H., Kim, D. H., Cheong, G. W. & Hwang, I. (2001). A new dynamin-like protein, ADL6, is involved in trafficking from the trans-Golgi network to the central vacuole in Arabidopsis. The Plant Cell, 13(7), 1511-1526.
13
Lamb, D. C., Lei, L., Warrilow, A. G., Lepesheva, G. I., Mullins, J. G., Waterman, M. R. & Kelly, S. L. (2009). The first virally encoded cytochrome p450. Journal of virology, 83(16), 8266-8269.
14
Li, C. & Zhang, B. (2016). MicroRNAs in control of plant development. Journal of cellular physiology, 231(2), 303-313.
15
Lin, S. L., Chang, D. & Ying, S. Y. (2005). Asymmetry of intronic pre-miRNA structures in functional RISC assembly. Gene, 356, 32-38.
16
Manna, S. (2015). An overview of pentatricopeptide repeat proteins and their applications. Biochimie, 113, 93-99.
17
Müntz, K. (1998). Globulins from legume seeds: Structure and function during storage and reactivation. In Plant Proteins from European Crops (pp. 3-12). Springer Berlin Heidelberg.
18
Park, W., Li, J., Song, R., Messing, J. & Chen, X. (2002). CARPEL FACTORY, a Dicer homolog, and HEN1, a novel protein, act in microRNA metabolism in Arabidopsis thaliana. Current Biology, 12(17), 1484-1495.
19
Qiu, X. B., Shao, Y. M., Miao, S. & Wang, L. (2006). The diversity of the DnaJ/Hsp40 family, the crucial partners for Hsp70 chaperones. Cellular and molecular life sciences, 63(22), 2560-2570.
20
Sedlacek, Z., Munstermann, E., Mincheva, A., Lichter, P. & Poustka, A. (1998). The human rab GDI β gene with long retroposon-rich introns maps to 10p15 and its pseudogene to 7p11-p13. Mammalian genome, 9(1), 78-80.
21
Tamura, K., Peterson, D., Peterson, N., Stecher, G., Nei, M., Kumar, S. (2011). MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol. Biol. Evol. 28, 2731–2739.
22
Unver, T., Budak, H. (2009) Conserved microRNAs and their targets in model grass species Brachypodium distachyon. Planta 230:659–669.
23
Vincent, S. & Settleman, J. (1997). The PRK2 kinase is a potential effector target of both Rho and Rac GTPases and regulates actin cytoskeletal organization. Molecular and Cellular Biology, 17(4), 2247-2256.
24
Wiemer, E. A. (2007). The role of microRNAs in cancer: no small matter. European journal of cancer, 43(10), 1529-1544.
25
Yin, Z., Li, C., Han, X. & Shen, F. (2008). Identification of conserved microRNAs and their target genes in tomato (Lycopersicon esculentum). Gene, 414(1), 60-66.
26
Wera, S. & Hemmings, B. A. (1995). Serine/threonine protein phosphatases. Biochemical Journal, 311(Pt 1), 17.
27
Zhang, Y. (2005). miRU: an automated plant miRNA target prediction server. Nucleic Acids Res. 33(Web Server issue):W701–4.
28
Zhang, B., Pan, X., Cobb, G. P. & Anderson, T. A. (2006a). Plant microRNA: a small regulatory molecule with big impact. Developmental Biology, 289(1), 3-16.
29
Zhang, B., Pan, X., Wang, Q., Cobb, G. P. & Anderson, T. A. (2006b). Computational identification of microRNAs and their targets. Computational Biology and Chemistry, 30(6), 395-407.
30
Zhang, B.H., Pan, X.P., Cox, S.B., Cobb, G.P., Anderson, T.A. (2006c). Evidence that miRNAs are different from other RNAs. Cell. Mol. Life Sci. 63, 246.
31
Zhang, B., Pan, X., Cannon, C. H., Cobb, G. P. & Anderson, T. A. (2006d). Conservation and divergence of plant microRNA genes. The Plant Journal, 46(2), 243-259.
32
Zhang, B., Wang, Q., Wang, K., Pan, X., Liu, F., Guo, T., Anderson, T. A. (2007). Identification of cotton microRNAs and their targets. Gene, 397(1), 26-37.
33
Zhang, B., Pan, X. & Stellwag, E. J. (2008). Identification of soybean microRNAs and their targets. Planta, 229(1), 161-182.
34
Zhang, W., Luo, Y., Gong, X., Zeng, W., Li, S. (2009). Computational identification of 48 potato microRNAs and their targets. Comput Biol Chem 33:84–93.
35
Zuker, M. (2003) Mfold web server for nucleic acid folding and hybridization prediction. Nucleic Acids Res, 31:3406–3415.
36
ORIGINAL_ARTICLE
پاسخ دو رقم گندم نان به محلولپاشی سالیسیلیک اسید در شرایط متغیر رطوبتی
به منظور بررسی اثر سالیسیلیک اسید بر عملکرد و برخی شاخصهای فیزیولوژیکی دو رقم گندم در شرایط تنش خشکی، آزمایشی به صورت اسپلیت پلات دوبار خرد شده در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی در ایستگاه مرکز تحقیقات کشاورزی سرابله در سال زراعی 94-1393 در چهار تکرار انجام شد. فاکتورهای مورد بررسی شامل تیمارهای رطوبتی در سه سطح (کنترل (100)، 70 و 40 درصد ظرفیت زراعی خاک) در کرتهای اصلی، تنظیمکننده رشد سالیسیلیک اسید در سه سطح (شاهد (صفر)، 50 و 100 میکرومولار) در کرت فرعی و دو رقم گندم نان (پیشتاز و بهار) در کرتهای فرعی فرعی قرار گرفتند. صفات مورد بررسی شامل عملکرد و اجزاء عملکرد، رنگدانههای فتوسنتزی، پروتئین، کربوهیدراتهای محلول، مالون دی آلدئید و پرولین بودند. نتایج نشان داد که اثر متقابل سهگانه بین تنش خشکی، سالیسیلیک اسید و ارقام بر تمامی صفات مورد بررسی معنیدار بود. با افزایش شدت تنش خشکی رنگدانههای فتوسنتزی، تعداد دانه در سنبله، وزن هزاردانه و عملکرد دانه به طور معنیداری کاهش یافت اما کاربرد سالیسیلیک اسید در این شرایط سبب بهبود این صفات شد. محتوی پرولین، پروتئینهای محلول و کربوهیدراتهای محلول با افزایش شدت تنش خشکی روند صعودی داشتند که این روند بجز در مورد پرولین با کاربرد سالیسیلیک اسید تدوام و بهبود یافت. بهطور کلی بهنظر میرسد کاربرد سالیسیلیک اسید در شرایط تنش خشکی از طریق بهبود فرایندهای فیزیولوژیکی ضمن افزایش مقاومت گیاه منجر به عملکرد اقتصادی بیشتر میشود.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65483_eb979c2d92a16ac4728cdde0c72baa05.pdf
2018-02-20
1171
1185
10.22059/ijfcs.2017.218159.654199
تنش خشکی
تنظیم کننده رشد
عملکرد
مقاومت گیاه
فرشته
دارابی
m.darabi8161@gmail.com
1
گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ایلام
AUTHOR
رحیم
ناصری
rahim.naseri@gmail.com
2
گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ایلام
AUTHOR
امیر
میرزایی
amir.mirzaei53@gmail.com
3
عضو هئیت علمی مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی و ریس بخش اصلاح بذر
LEAD_AUTHOR
میثم
مرادی
meysam_m243@yahoo.com
4
گروه علوم کشاورزی، دانشگاه پیام نور، جمهوری اسلامی ایران
AUTHOR
Abdel-Wahed, M.S.A., Amin, A. A. & El-.Rashad, S.M. (2006). Physiological effect of some bioregulators on vegetative growth, yield and chemical constituents of yellow maize plants. World Journal Agriculture Science Direct, 2(2), 149-155.
1
Aftab, T., Khan, Idrees, M.M.A., Naeem, M. & Moinuddin, M. (2010). Salicylic acid acts as potent enhancer of growth, photosynthesis and artemisinin production in Artemisia annua L. Journal Crop Scibiotech. 13:183–188.
2
Ahmadi, A. & Sio-Se Mardeh, A. (2004). The effect of water stress on soluble carbohydrates, chlorophyll and proline contents of four Iranian wheat cultivars under different moisture regimes. Iranian Journal of Agricultural Science, 35(3), 753- 763 (in Persian).
3
Amin, A. A., Rashad, S., Fatma, H. M. & Gharib, A. E. (2008). Changes in morphological, physiological and reproductive characters of wheat and photosynthesis. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 2 (2), 252-261.
4
Arnon, D. I. (1949) Copper enzyme in isolated chloroplast and polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24 (1), 1- 15.
5
Azooz, M. M., Youssef, A. M. & Parvaiz, A. (2011). Evaluation of salicylic acid (SA) application on growth, osmotic solutes and antioxidant enzyme activities on broad bean. seedlings grown under diluted seawater. International Journal of Plant Physiology and Biochemistry, 3 (14), 253-264.
6
Bates, I.S., Waldern, R.P. & Tear, I.D. (1973). Rapid determination of free proline for water stress studies. Journal of Plant and Soil, 39, 205-207.
7
Belkhadia, A., Hedijia, H., Abbesa, Z., Nouairib, I., Barhoumic, Z., Zarroukb, M., Chaïbia, W. & Djebalia, W. (2010). Effects of exogenous salicylic acid pre-treatment on cadmium toxicity and leaf lipid content in Linum usitatissimum L. Ecotoxicology and Environmental Safety, 73 (5), 1004–1011.
8
Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72: 248-254.
9
Brar, G. S., Kar, S. & Singh, N.T. (1990). Photosynthetic Response of Wheat to Soil Water Deficits in the Tropics. Journal of Agronomy and Crop Science, 165) 5(, 343–348
10
Bray, E.A. )1997(. Plant responses to water deficit. Trends in Plant Science, 2, 48-54.
11
Cesar, G., Gary, M., Banowetz, C., James, P. & Warren, E. (2003). Dehydrin Expression and Drought Tolerance in Seven Wheat Cultivars. Crop Sciences, 43 (2), 577-582.
12
Claussen, W. (2005). Proline as a measure of stress in tomato plant. Journal of Plant Science, 168, 241-248
13
Coronado, M. A. G., Lopez, C. T. & Saavedra, A. L. (1998). Effects of salicylic acid on the growth of roots and shoots in soybean. Journal of Plant physiology Biochemical, 8, 563–5.
14
Dat, J. F., Lopes Delgado, H., Foyer, C. H. & Scot, I. M. (1998). Parallel changes in H2O2 and catalase during thermotolerance induced by salicylic acid or heat acclimation in mustard seedlings. Journal of Plant Physiology, 116, 1351-1357.
15
Ding, C. & Want, C.Y. (2003). The dual effects of methyl salicylate on ripening and expression for ethylene biosynthetic genes in tomato fruits. Journal of Plant Science Direct. 164: 589-601.
16
El-Mergawi, R. & Abdel-Wahed, M. (2007). Diversity in salicylic acid effects on growth criteria and different indole acetic acid forms among faba bean and maize. International Plant Growth Substances Association19th Annual meeting, Puerto Vallarta, Mexico, July 21-25.
17
El-Tayeb, M. A. )2005). Response of barley grains to the interactive effect of salinity and salicylic acid. Plant Growth Regulation, 45, 215-225.
18
Gür, A., Demirel, U., Özden, M., Kahraman, A. & Çopur, O . (2010). Diurnal gradual heat stress affects antioxidant enzymes, proline accumulation and some physiological components in cotton (Gossypium hirsutum L.). African Journal of Biotechnology, 9 (7), 1008-1015.
19
20. Hajihashemi, S. H., Kiarostami, K. H., Saboora, A. & Enteshari, S. H. (2007). Exogenosely applied paclobutrazol modulates growth in salt-stressed wheat plants. Journal of Plant growth Regulation, 53, 117-128.
20
Hayat, S., Hasan, S.A., Fariduddin, Q. & Ahmad, A. (2008). Growth of tomato (Lycopersicon esculentum) in response to salicylic acid under water stress. Journal of Plant Interactions. 3, 297–304.
21
He, Y., Liu, Y., Cao, W., Huai, M., Xu, B. & Huang, B. (2005). Effects of salicylic acid on heat tolerance associated with antioxidant metabolism in Kentucky bluegrass, Crop Science, 45, 988-995.
22
Horvath, E., Szalai, G. & Janda, T. (2007). Induction of abiotic stress tolerance by salicylic acid signaling. Journal of Plant Growth Regulation, 26, 290–300.
23
Horvath, E., Szalai, G. & Janda, T. (2007). Induction of abiotic stress tolerance by salicylic acid signaling. Journal of Plant Growth Regulation, 26, 290–300.
24
Ingram, J. & Bartels, D. (1996). The molecular basis of dehydration tolerance in plants. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 47, 377-403.
25
Islamic republic of Iran, Ministry of agriculture-Jahad. (2015). Agricultural statistics. Volume I: crops.
26
Kiarostami, K. H., Abdolmaleki, N. & Heydari, M. (2011). The effect of salicylic acid on reducing salinity stress in canola. Plant Biology. 12 (4): 69-82.
27
Kele Y. & Öncel I. (2002). Response of antioxidative defense system to temperature and water stress combinations in wheat seedlings. Plant Sciences, 163, 783–790.
28
Lichtenthaler, H. K. (1987). Chlorophylls and carotenoids: Pigments of photosynthetic biomembranes. Methods in Enzymology, 148, 350- 382.
29
Liu J.H., Peng T. & Dai W. S. (2014). Critical cis-acting elements and interacting transcription factors: key players associated with abiotic stress responses in plants. Plant Mol. Biol. Rep, 32, 303–317.
30
Masoumi, H., Masoumi, M., Darvish, F., Daneshian, J., Nourmohammadi, G. H. & Habibi, D. (2010). Change in several antioxidant enzymes activity and seed yield by water deficit stress in soybean (Glycine max L.) Cultivars. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 38, 50-59.
31
Mateo, A. F. D., Muhlenbock, P., Kular, B., Kular, P. M. & Karpinski, S. (2006). Controlled levels of salicylic acid are required for optimal photosynthesis and redox homeostasis. Journal of Experimental Botany, 57(8), 1795-1807.
32
Mohammadkhani, N. & Heidari, R. (2008). Water stress induced by polyethylene glycol 6000 and sodium chloride in two maize cultivars. Pakistan Journal of Biological Sciences, 11 (1), 92-97.
33
Mohamed, A., Tayeb, E., Naglaa, L. & Ahmed, N. (2010). Response of Wheat Cultivars to Drought and Salicylic Acid. American-Eurasian Journal of Agronomy, 3 (1), 01-07.
34
Pirasteh, H., Emam, Y., Ashraf, M. & Foolad, M. R. (2012). Exogenus Application of Salicylic acid Chlormequat Chloride Alleviates Negative Effects of Drought Stress in Wheat. Advanced studies in Biology, 4(11), 501-520.
35
Popova, L. P., Pancheva, T. V. & Uzunova, A. N. (1997). Salicylic acid: Properties, biosynthesis and physiological role. Bulgarian Journal of Plant Physiology, 23, 85–93.
36
Radwan, D. E. M. & Soltan, D. M. (2012). The negative effects of clethodim in photosynthesis and gas-exchange status of maize plants are ameliorated by salicylic acid pretreatment. Photosynthetica, 50, 171–179.
37
Rajaram . S ., Braum, H . J., Van Ginkel, M. & Tiger stedt, P . M . A . (1995). CIMMYT’s approach to breed for drought tolerance . XIV EUCARPIA congress on adaptation in plant breeding . Jyvaskyla . Finland . Euphytica . 92 : 1 - 2 , 145 – 153.
38
Raskin, I. (1992). Role of salicylic acid in plants. Journal of Plant physiology and Plant Molecular Biology, 43, 439-463.
39
Sakhabutdinova, A. R. D. R., Fatkhutdinova, & Shakirova, F. M. (2004). 'Effect of Salicylic acid on the Activity of Antioxidant Enzymes in Wheat under Conditions of Salination, Applied Biochemistry and Microbiology, 40, 501-05.
40
Sasheva, P., Yordanova, R., Janda, T., Szalai, G. & Maslenkova, L. (2013) Study of primary photosynthetic reactions in winter wheat cultivars after cold hardening and freezing. Effect of salicylic acid. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 19, 45–48
41
Satvir, K., Anil, G. K. & Narinder, K. (2000). Effect of GA3, kinetin and indole acetic acid on carbohydrate metabolism in chickpea seedlings germinating under water stress. Plant Growth Regulation, 30, 61–70.
42
Shakirova, F. M., Sakhabutdinova, A. R., Bezrukova, M. V., Fatkhutdinova, R. A. and Fatkhutdinova, D. R. (2003). Changes in the hormonal status of wheat seedlings induced by salicylic acid and salinity. Plant Science, 164, 317-322.
43
Tirani, M.M., Nasibi, F. & Kalantari, K. M. (2013) Interaction of salicylic acid and ethylene and their effects on some physiological and biochemical parameters in canola plants (Brassica napus L.). Photosynthetica, 51, 411–418
44
Valentovic, P., Luxova, M., Kolarovi, L. & Gasparikora, O. (2006). Effect of osmotic stress on compatible solutes content, memberane stability and water relation in two maize. Plant Soil Environment, 52 (4), 186-191.
45
Wang, L. J. & Li, S. H. (2006). Salicylic acid-induced heat or cold tolerance in relation to Ca 2+ homeostasis and antioxidant systems in young grape plants. Plant Science, 170, 685-94.
46
Yang, Y., Liu, Q., Han, C., Qiao, Y. Z., Yao, X. Q. & Yin, H.J. (2007). Influence of water stress and low irradiance on morphological and physiological characteristics of Picea asperata seedlings. Photosyntetica, 45 (4): 613-619.
47
European Journal of Agronomy, 72, 38–46.
48
ORIGINAL_ARTICLE
اثر دما، موقعیت و پوشش بذر بر جوانهزنی جمعیتهای یولافوحشیAvena ludoviciana
یولاف وحشی به دلیل وجود خواب در بذور خود میتواند به مدت طولانی در خاک حضور داشته باشد. عواملی از قبیل دما، موقعیت و پوشش بذر قادر به تغییر در جوانهزنی بذور میباشند. به منظور بررسی نحوۀ پاسخدهی بذور یولافوحشی نسبت به دما، موقعیت و پوستۀ بذر دو آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار در آزمایشگاه دانشگاه تهران، اجرا گردید. تیمارهای آزمایشی شامل جایگاه بذر در سنبلچه (دانۀ پایه بزرگتر و دانۀ فوقانی کوچکتر)، دما (5، 10، 15، 20، 25، 30 و 35 ) بودند. پاسخ سرعت جوانهزنی به دما با استفاده از مدل سه پارامترۀ سیگموئیدی استفاده شد. نتایج حاکی از این بود که کمترین درصد و سرعت جوانهزنی در بذور بدون پوشش بزرگ و کوچک در میان جمعیتها در جمعیت یولافوحشی قائمشهر با کمترین وزن بذر دیده شد. لازم به ذکر است که بذر بزرگتر بدون پوشش جمعیت یولافوحشی قائمشهر در تمامی دماهای مورد بررسی درصد جوانهزنی (80 درصد) بیشتری نسبت به بذر کوچکتر (56 درصد) بدون پوشش داشت. در مقابل جمعیت یولافوحشی کامیاران میباشد که بیشترین وزن دانه را داشت. این جمعیت در میان سایر جمعیتهای یولافوحشی بیشترین درصد و سرعت جوانهزنی را نشان داد. در این جمعیت نیز بذر بزرگتر بدون پوشش در تمامی دماها درصد جوانهزنی بیشتری نسبت به بذر کوچکتر بدون پوشش داشت. به دلیل وجود تنوع بالا بین جمعیتهای علفهرز یولافوحشی نمیتوان برنامۀ مدیریتی قابل توصیه به همه مناطق را داشت. از اینرو توصیههایی مدیریتی باید در مقیاس منطقهای با توجه به رویکرد هر منطقه اتخاذ گردد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65486_789a1187c655e9803154449641252257.pdf
2018-02-20
1187
1200
10.22059/ijfcs.2017.225105.654248
کلمات کلیدی:
پوسته بذر
جایگاه دانه
خواب بذر
مدل سیگموئیدی
سمیه
فروزش
sfrozesh@ut.ac.ir
1
دکتری علوم علف های هرز
LEAD_AUTHOR
حمید
رحیمیان مشهدی
hrahimian@ut.ac.ir
2
سایر
AUTHOR
حسن
علیزاده
malizade@ut.ac.ir
3
سایر
AUTHOR
مصطفی
اویسی
moveisi@ut.ac.ir
4
سایر
AUTHOR
Adkins, S. W., Loewen, M. & Symsons, S. J. (2000). Variation within pure lines of wild oat (Avena fatua) in relation to degree of primary dormancy. Weed Science ,48, 859-864.
1
Andersen, A.M. 1953. The effect of the glumes of paspalum notatum flugge on germination.
2
Proceedings of the Association of Official Seed Analysts, 93-100.
3
Alvarado, V., Bradford, K. J. (2005). Hydrothermal time analysis of seed dormancy in true (botanical) potato seeds. Seed Science Research ,15, 77–88.
4
Alvarado, V., Bradford, K. J. (2002). A hydrothermal time model explains the cardinal temperatures for seed germination. Plant, Cell and Environment ,25, 1061–1069.
5
Atri, A., Javanshir, A., Moghadam, M. & Shakiba, M. R. (1998). Evaluation of competition in zea and phaseolus mixture by reverse yield model. Journal Agriculture Science. 4: 105-97.
6
Atwood, W. M. (1914). A physiological study of the germination of Avena fatua. Botany Gaz. ,57, 386-414.
7
Baghestani, M. H., Zand, A., Barjaste, A. R., Veisi, M., Noroz zade, SH., Jamali, M. & Kakhaki, S. H. (2008). Investigating efficacy of BEHPIC and CURRENT Herbicides on grassy weed in wheat fields. Final Report. Iranian Plant Protection Research Institute.
8
Baskin, C. C. & Baskin, J. M. (1998). Seeds – Ecology, Biogeography, and Evolution of Dormancy and Germination, San Diego: Academic,
9
Baskin, C. C. & Baskin, J. M. (2001). Seeds: ecology, biogeography, and evolution of dormancy and germination. San Diego, CA: Academic Press.
10
Batlla, D. & Benech-arnold, R. L. (2003). A quantitative analysis of dormancy loss dynamics in Polygonum aviculare L. seeds. Development of a thermal time model based on changes in seed population thermal parameters. Seed Science Research ,13, 55–68.
11
Beheshtian, M. M., Rahimian, M. H. & Alizade, H. (2011).Modeling seeding emergence patterns of wild barley (Hordeum spontaneum) and canary grass (Phalaris minor) weeds. Ph.D. Thesis. Faculty of Agriculture Tehran University.
12
Beckie, H. J, Heap, I. M., Smeda, R. J. & Hall, L. M. (2000). Screening for herbicide resistance in weeds. Weed Technology, 14, 428-445.
13
Bello, I. A, Owen, M. D. K. & Hatterman-Valenti, H. M. (1995). Effect of shade on velvetleaf (Abutilon theophrasti) growth, seed production, and dormancy. Weed Technology , 9, 452–455.
14
Benech-Arnold, R. L., Sanchez, R. A., Forcella, F. Kruk, B. & Ghersa, C. M. (2000). Environmental control of dormancy in weed seed banks in soil. Field Crops Research, 67, 105-122.
15
Bewley, J. D. & Black, M. (1986). Seeds: Physiology of Development and Germination. Plenum press. N. Y. and London.
16
Bhagirath, S. C. & David, E. J. (2008). Seed Germination and seedling emergence of giant sensitive plant )Mimosa invisa). Weed Science, 56, 244–248.
17
Bradford K. J. & Nonogaki, H. (2007). Seed development, dormancy and germination. Blackwell Publishing Plant Science, Oxford
18
Bradford, K. J. (2002). Applications of hydrothermal time to quantifying and modeling seed germination and dormancy. Weed Science, 50, 248–260.
19
Bryson, C. T. (1990). Interference and critical time of Hemp Sesbania (Sebania exalta L,) in cotton (Gossypium hirsutum L.). Weed Technology. 4, 833-837.
20
Chen, F. S., MacTaggart, J. M. & Elofsen, R. M. (1982). Chemical constituents in wild oat (Avena fatua) and their effects on seed germination. Canadian Journal Plant Science, 62, 155–161.
21
Cheplick, G. P. & Sung, L. Y. (1998). Effects of maternal nutrient environment and maturation position on seed heteromorphism, germination, and seedling growth in Triplasis purpurea (Poaceae). International Journal of Plant Sciences, 159, 338–350.
22
Corbineau, F., Lecat, S. & Côme, D. (1986). Dormancy of three cultivars of oat seeds (Avena sativa L.). Seed Science and Technology, 14, 725–735.
23
Corbineau, F., Black, M. & Côme, D. (1993). Induction of thermo dormancy in Avena sativa seeds. Seed Science Research, 3, 111–117.
24
Cumming, B. O. & Hay, J. A. (1958). Light and dormancy in wild oat (Avena fatua L.). Nature, 609-610.
25
Datta, S. C, Evenari, M. & Gutterman, Y. (1970). The heteroblasty of Aegilops ovata L. Israel Journal of Botany, 19, 463–483.
26
Deekker, J. (2003). The foxtail (Setaria) species-group. Weed Science, 51, 641–656.
27
Downing, T. E., Ringlus, L., Hulme, M. & Waughray, D. (1997). Adapting to climate of cold regions. Dordrecht:Kluwer Academic Publishers, 809- 825.
28
Dumur, D., Pilbeam, C. J. & Craigon, J. (1990). Use of the weibull function to calculate cardinal temperatures in faba bean. Journal of Experimental Botany. 41, 1423-1430.
29
Escudero, A., Nunez, Y. & Perez-Garcıa, F. (2000). Is fire a selective force of seed size in pine species? Acta Oecologica. International Journal of Ecology 21.
30
Fenner, M. (1992). Environmental influences of seed size and composition. Horticultural Reviews ,13, 183-213.
31
Friesen, G. & Shebeski, L. H. (1961). The influence of temperature on the germination of wild oat seeds (Avena fatua L.). Weeds, 9, 634-8.
32
Garcia-Huidobro, J., Monteith. J. L, Squire, G. R. (1982). Time, temperature and germination of pearl millet (Pennisetum typhoides S & H.). I. Constant temperature. Journal of Experimental Botany,33, 288–296.
33
Gonzalez-Rabanal, R., Casal, M. & L. Trabaud. (1994). Effects of high temperatures, ash and seed position in the inflorescence on the germination of three Spanish grasses. Journal of Vegetation Science, 5, 289–294.
34
Gosling, P. G, Butler, R. A., Black, M. & Chapman, J. M. (1981). The onset of germination ability in developing wheat. Journal of Experimental Botany, 32, 621–627.
35
Greipsson, S. & Davy, A. J. (1995). Seed mass and germination behaviour in populations of the dune-building grass Leymus arenarius. Annals of Botany, 76, 493–501.
36
Grundy, A. C. (2003). Predicting weed emergence: a review of approaches and future challenges. Weed Research, 43, 1–11.
37
Gutterman, Y. (2000). Maternal effects on seeds during development. In Fenner M. ed. Seeds: the ecology of regeneration in plant communities, 2nd edn. Wallingford: 59–84.
38
Hardegree, S. P. (2006). Predicting germination response to temperature. I. Cardinal-temperature models and subpopulation-specific regression. Annals of Botany, 97, 1115–1125.
39
Hardegree, S. P, Winstral, A. H. (2006). Predicting germination response to temperature. II. Three-dimensional regression, statistical gridding and iterative-probit optimization using measured and interpolated-subpopulation data. Annals of Botany. 98, 403–410.
40
Hay, J. R. & Cumming, B. G. (1959). A method for inducing dormancy in wild oats (Avena fatua L). Weeds, 7, 34–40.
41
Jones, R. & Medd, R. (1997). Economic analysis of integrated management of wild oats involving fallow, herbicide and crop rotational options. Australian Journal of Experimental Agriculture, 37, 683–691.
42
Jorge, M. H. A. & Ray, D. T. (2004). Germination characterization of Guayule (Parthenium argentatum) seed by morphology mass and X-ray and analysis. Industrial Crops and Production, 23, 59-63.
43
Khan, M. L. (2004). Effects of seed mass on seedling success in Artocarpus heterophyllus L. a tropical tree species of north – east India. Acta Oecologia, 25,103-110.
44
Karlsson, L. M, Tamado, T. & Milberg, P. (2008). Inter-species comparison of seed dormancy and germination of six annual Asteraceae weeds in an ecological context. Seed Science Research, 18, 35–45.
45
Leggett, H. W. & Banting, J. D. (1959). Can we tame the wild oat? Ctry Guide 78, 17.
46
Loddo, D., Sousa, E., Masin, R., Calha, I. M., Zanin, G., Fernandez-Quintanilla, c. & Dorado, J. (2014). Germination response of local Southern European populations of Datura stramonium at a range of constant temperatures. Weed Research Society, 54, 356–365.
47
Luzuriaga, A. L., Escudero, A. & Erez-Garc, P. I. A. F. (2006). Environmental maternal effects on seed morphology and germination in Sinapis arvensis (Cruciferae). Weed Research, 46, 163–174.
48
Magyar, L. & Lukacs, D. (2002). Recent data on seed dormancy and germination ecology of annual mercury (Mercurialis annua L.). in Proc Of the 12th European Weed Research Society. Symp. Doorwerth, the Netherlands: European Weed Research Society, 374– 375
49
Masin, R., Loddo, D., Benvenuti, S., Clara Zuin, M., Macchia M. & Zanin, G. (2010). Temperature and Water Potential as Parameters for Modeling Weed Emergence in Central-Northern Italy. Weed Science, 58, 216–222.
50
Maranon, T. (1987). Ecologia del polimorfismo somatico de semillas y la sinaptospermia en Aegilops neglecta Req. ex Bertol. Anales del Jardin Botanico de Madrid. 44, 97–107.
51
Medd, R. W. & Pandey, S. (1990). Estimating the cost of wild oats (Avena spp.) in the Australian wheat industry. Plant Protection Quarterly, 5, 142–144.
52
Meyer, S. E. & Allen, P. S. (2009). Predicting seed dormancy loss and germination timing for Bromus tectorum in a semi-arid environment using hydrothermal time models. Seed Science Research, 19, 225–239.
53
Montazeri, M., Zand, E. & Baghestani, M. A. (2005). Weeds and their control in wheat fields of Iran: Plant Pest & Disease Research Institute Press. 85 p. (In Persian).
54
Moravcova, L., Perglova, I. Pysek, P., Jitech, V. & Pergl, J. (2005). Effects of fruit position on fruit mass and seed germination in the alien species Heracleum mantegazzianum (Apiaceae) and the implications for its invasion. Acta Oecologica, 28, 1–10.
55
Morgan, S. F. & Berrie, A. M. M. (1970). Development of dormancy during seed maturation in Avena ludoviciana winter wild oat.
56
Murdoch, A. J., (1998). Dormancy cycles of weed seeds in soil. Asp. Appl. Biol. 51, 119–126.
57
Murdoch, A.J., ISIK, D., NICHOLLS, R.A. (2010). Dormanc and germination of Chenopodium album seeds from different latitudes in Europe and North America. In: Proceedings 15th EWRS Symposium (ed L BASTIAANS et al.) (12–15 July, Kaposvar, Hungary), 74. Pannonia- Print Ltd., Budapest, Hungary.
58
Phaneendranath, B. R., Duell, R. W. & Funk, C. R. 1978. Dormancy of Kentucky bluegrass seed in relation to the color of spikelets and panicle branches at harvest. Crop Science, 18, 683–684.
59
Piper, E. L, Boote, K. J., Jones, J. W. & Grimm, S. S. (1996). Comparison of two phenology models for predicting flowering and maturity date of soybean. Crop Science, 36, 1606-1614.
60
Priestley, D. A., (1986). "Seed Ageing: Implications for Seed Storage and Persistence in the Soil. Cornell University Press, Ithaca, NY.
61
Quail, P. H. & Carter, O. G. (1969). Dormancy in seeds of Avena ludoviciana and Avena fatua. Austrian Journal Agriculture Research, 20, 1- 11.
62
Raju, M. V. S. & Ramaswamy, S. N. (1983). Studies on the inflorescence of wild oats (Avena fatua). Canadian Journal of Botany, 61, 74–78.
63
Rosenzweig, C. & Parry, M. L. (1994). Potential impacts of climate change on world food supply. Nature, 367, 133- 138.
64
Sales, N. M, Perez-Garcia, F. & Silveira, F. (2013). Consistent variation in seed germination across an environmental. South African Journal of Botany,87, 129–133
65
Salimi, H. & Ghorbanli, M. (2001). A study on seed germination Avena ludoviciana and the effective factors in seed dormancy breaking. Rostaniha, 2, 41- 55
66
Samedani, B. & Baghestani, M. A. (2005). Comparison of allelopathic activity of different Artemisia species on seed germination rate and seedling growth. Pajouhesh and Sazandegi in agriculture and horticulture, 68, 69-74.
67
Schwendiman, A. & Shands, H. L. (1943). Delayed germination or seed dormancy in Vicland oats. Agronomy Journal, 35, 681–688.
68
Schutte, B. J., Tomasek, B. J., Davis, A. S. (2014). An investigation to enhance understanding of the stimulation of weed seedling emergence by soil disturbance. Weed Research, 54, 1–12.
69
Shafii, B. & Price, W. J. (2001). Estimation of Cardinal Temperatures in Germination Data Analysis. Journal of Agricultural, Biological, and Environmental Statistics. 6, 356-366.
70
Sugawara, S. (1959). Studies on the germination capacity of upland rice seeds in relation to the location on the flower panicle. Bulletin of the Faculty of Agriculture of Niigata University , 11, 9–22.
71
Taab, A. & Andersson, L. (2009). Primary dormancy and seedling emergence of black nightshade (Solanum nigrum) and hairy nightshade (Solanum physalifolium). Weed Science, 57, 526–532.
72
Tseng, T. M, Burgos, N. R, Shivrain, V. K, Alcober, E. A. & Mauromoustakos, A. (2013). Inter- and intrapopulation variation in dormancy of Oryza sativa (weedy red rice) and allelic variation in dormancy-linked loci. Weed Research, 53, 440–451.
73
Timmermans, B. G. H., Vos, J., van Nieuwburg, J., Stomph, T. J. & van der Putten, P. E. L. (2007). Germination rates of Solanum sisymbriifolium: temperature response models, effects of temperature fluctuations and soil water potential. Seed Science Research, 17, 221–231.
74
Thurston, Joan M. (1951). Biology of wild oats. Rep. Rothamsted exp. Stn, 67-9.
75
Thurston, Joan M. (1956). Wild oats. JI R. agvic. Society, 117, 43-52.
76
Venable, D. L. and Levin, D. A. (1985). Ecology of achene dimorphism in Heterotheca latifolia. 1. Achene structure, germination and dispersal. Journal of Ecology, 73, 113–145.
77
Wang, A. B, Tan, D. Y. Baskin, C. C. & Baskin, J. M. (2010). Effect of seed position in spikelet on life history of Eremopyrum distans (Poaceae) from the cold desert of north-west China. Annals of Botany, 106, 95–105.
78
Winn, A. A. (1991). Proximate and ultimate sources of within individual variation in seed mass in Prunella vulgaris (Lamiaceae). American Journal of Botany. 78, 838-844.
79
Wolfe, L. M. (1995). The genetics and ecology of seed size variation in a biennial plant, Hydrophyllum appendiculatum (Hydrophyllaceae). Oecologia, 101, 343–352.
80
Yan, J.Y., Wang, E., Nevo, Gutterman, Y. and Cheng, J.P. (2012). Effects of partial endosperm removal on embryo dormancy breaking and salt tolerance of Hordeum spontaneum seeds. Russian Journal of Plant Physiology, 423-427.
81
European Journal of Agronomy, 72, 38–46.
82
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اثر تنش خشکی بر عملکرد دانه ، اجزای عملکرد و برخی خصوصیات زراعی در ژنوتیپ های لوبیا
تنش خشکی مهمترین عامل محدود کننده تولید گیاهان زراعی در مناطق خشک و نیمه خشک می باشد . در این راستا به منظور بررسی اثر تنش خشکی بر روابط برخی از صفات مورفولوژیک با عملکرد و اجزای عملکرد102 ژنوتیپ لوبیا از بانک ژن دانشکده کشاورزی در قالب طرح آگمنت در دو شرایط آبیاری نرمال و تنش خشکی در سال 1395در مزرعه تحقیقاتی گروه زراعت و اصلاح نباتات دانشگاه تهران واقع در کرج اجرا شد. ضرایب همبستگی ساده بین صفات، نشان داد از میان تمامی صفات مورد آزمایش، وزن غلاف (r=94**) و تعداد دانه در غلاف (r=74**)بیشترین همبستگی را با عملکرد دانه در شرایط نرمال داشت.در شرایط تنش نیز وزن غلاف (r=96**) و تعداد دانه در غلاف (r=84**)بیشترین همبستگی را با عملکرد دانه داشت. با استفاده از رگرسیون گام به گام تنها صفت وزن غلاف به عنوان صفت تاثیر گذار در شرایط نرمال وارد مدل شد که 88 درصد از تغییرات عملکرد دانه را توضیح داد. در حالیکه در شرایط تنش دو صفت وزن غلاف و تعداد غلاف وارد مدل شدند. در ادامه با استفاده از تجزیه به عامل ها ، یازده متغیر در پنج عامل برای شرایط نرمال و چهار عامل برای شرایط تنش تعریف شدندکه در مجموع به ترتیب 77 و 70 درصد از تغییرات داده ها را توجیه کردند. نتایج این تحقیق در مجموع نشان داد که ژنوتیپ های 73، 53، 91 در شرایط نرمال رطوبتی و ژنوتیپهای 100، 70، 60 در شرایط تنش، دارای عملکرد بالایی میباشند که میتوان در برنامههای اصلاحی استفاده کرد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65489_080ddb2b8f7d8601107da90326811d2a.pdf
2018-02-20
1201
1209
10.22059/ijfcs.2017.224409.654244
کلمات کلیدی: تنش خشکی
عملکرد
همبستگی
رگرسیون
منیژه
سبکدست نودهی
sabokdast@ut.ac.ir
1
هئیت علمی
LEAD_AUTHOR
محمد
دشتکی
md_dashtaki@ut.ac.ir
2
کارشناس ارشد
AUTHOR
یوسف
ساسانی
usasani@ut.ac.ir
3
دانشجو کارشناسی ارشد
AUTHOR
احمد
رضایی زاده
ahmadrezaizadeh@ut.ac.ir
4
دانشجوی دکتری
AUTHOR
Abbasi, A. Mohammadi Nargesi, B. Keshavarznia, R & Pourebrahim, G. (2013). The study of genetic variation of common vetch based on morphological traits under normal and stress conditions. Iranian Journal of Field Crop Science, 44(3), 359-370.
1
Albayrak. S. & Tongel, O. (2006). Path analysis of yield and yield-related traits of common vetch (Vicia sativa L.) under different rainfall conditions. Journal of Faculty of Agriculture OMU 21, 27-32.
2
Ali Pour Yamchi, H. Bihamta, MR. Peighambari, SA. Naghavi, MR. (2012) Identify informative markers microsatellite in Kabuli chickpea genotypes under drought stress .12th Iranian Genetic Congress, Tehran, Iran
3
Bennett, J.P. Adams, M.W. & Burga, C. (1997). Pod yield component variation and inter correlation in Phaseolus vulgaris as affected by planting denseity. Crop Science, 17, 73-75.
4
Bernier, J. Kumar, A. Ramaiah, V. Spaner, D. & Atlin, G. (2007). A large-effect QTL for grain yield under reproductive-stage drought stress in upland rice. Crop Science, 47(2), 507-516.
5
Carvalho. M. H., D. Laffray., & P. Louguet. (1998). Comparison of the physiological responses of Phaseolus vulgaris and Vigna unguiculata cultivars when submitted to drought conditions. Environmental and experimental botany, 40(3), 197-207.
6
Dargahi, H. R., Vaeezi, SH., Aghaie M. & omidi, M. (2005). Genetic potential of white bean collection of National Plant Gene Bank. In: Proceedings of the First National Conference on Pulses – Mashhad,(In Farsi)
7
Dursun, A. (2007).Variability and Correlation studies in Bean (plaseolus vulgaris L.)
8
Eberhart, S.A. & Russel, W.A. 1966. Stability parameters for comparing varieties. Crop Science., 6:36-40.
9
Ebrahimi, M. & Bihamta., M.R. (2010). Evaluation of components yield in white bean genotypes under water stress conditions. Iranian Journal of Field Crops Research, pp 347-358. (In Farsi).
10
Fernandez. G. C. J. (1992). Effective selection criteria for assessing stress tolerance. Proceedings of the International Symposium.Taiwan, 13-18. Agu. 257-270 pp.
11
Ghanbari, A.A. & Taheri Mazandarani, M. 2004. Effectsof sowing date and plant density on yield of spotted bean. Seed and Plant 19:37-47. (Translate in Persian)
12
Habibi, G. & Ghanadha M.R. (2007). Study of grain yield and some of effective traits in bean under limited irrigation conditions. Journal of Research and Development, pp74. (In Farsi).
13
Hayase. R. & Singh, S. H. (2007). Response of cultivar of Race Durango to continual dry bean versus rotationl production systems. Agronomy Journal, 99, 1458-1462.
14
Karasu. A & OZ, M. (2010). A study on coefficient analysis and association between agronomical characters in dry bean (Phaseolus vulgaris l.). Bulgarian Journal of Agricultural Science, 16(2). 203-211.
15
Khaghani, S., M. R. Bihamta & M. Changizi. (2009). Quantitative and qualitative comparison of white and red beans under normal irrigation and drought stress. Environ Stress Plant Science. 1 (2) :169-182
16
Majnoon Hoseini, N. (2008). Grain Legume Production. Jahad Daneshgahi Publication. University of Tehran. Fourth edition,283 pp. (In Farsi)
17
Ramirez-Vallejo. P. & Kelly, J. D. (1998). Traits related to drought resistance in common bean. Euphytica, 99, 127–136.
18
Rebetzke, G. J. Richards, R. A., Condonl, A. G. & Farquhar, G. D. (2006). Inheritance of carbon Isoto pe discrimination in bread wheat (Triticum aestivum L.). Euphytica, 14, 324-341.
19
Reddy, A. R., Chaitanya, K. V. & Vivekananda. M. (2004). Drought-induced responses of photosynthesis and antioxidant metabolism in higher plants. Journal of Plant Physiology, 161, 1189-1202.
20
Sabokdast, M. & Khyalparast, F. (2008). A Study of Relationship between Grain Yield and Yield Component in Common Bean Cultivars (Phaseolus vulgaris L.). Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources, Water and Soil Science, 42, 123-13
21
Zabet, A., Hoseinzadeh A.H., Ahmadi, A. & F, Khialparast. (2004). A Study of Variation and Comparison of Yield and Its Components under Two Irrigation Conditions in Mung Bean. IranianJournal Agriculture Science, 36, 3 (In Farsi).
22
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تحمل به شوری دورقم گلرنگ با استفاده از روابط یونی و شاخصهای بیوشیمیایی
بهمنظور ارزیابی تحمل به شوری دو رقم گلرنگ (Carthamus tinctorius L.) و شناسایی مهمترین شاخصهای موثر بر تحمل به شوری، آزمایش گلخانهای به صورت فاکتوریل در قالب طرح پایه کاملاً تصادفی با دو فاکتور شوری آب آبیاری در 4 سطح (2، 4، 8 و 12 دسیزیمنس بر متر) و ارقام گلرنگ (صفه و زندهرود) در چهار تکرار انجام شد. با افزایش شوری از 2 به 4، 8 و12 دسیزیمنس بر متر، وزن خشک بوته رقم صفه به میزان13، 30 و 58 درصدکاهش یافت در حالیکه این مقدار در رقم زندهرود به ترتیب 9، 28 و 40 درصد بود. رقم زندهرود در کلیه سطوح شوری بیشترین مقدار کلروفیل a،b، شاخص سبزینگی و فعالیت آنزیمهای پراکسیداز و سوپراکسید دیسموتاز را به خود اختصاص داد. درصد افزایش سدیم ریشه و شاخساره (ساقه و برگ)، پرولین و مالون دیآلدئید در رقم صفه بیشتر از رقم زندهرود بود. نتایج رگرسیون نشان داد وزن خشک بوته با غلظت سدیم برگ، سدیم ریشه و پرولین دارای همبستگی منفی و معنیدار بود و با نسبت پتاسیم به سدیم، فعالیت آنزیمهای پراکسیداز و سوپراکسید دیسموتاز و کلروفیل a همبستگی مثبت و معنیدار نشان داد. بطور کلی غلظت سدیم ریشه و شاخساره (ساقه و برگ) و فعالیت آنتیاکسیدانتهای پراکسیداز و سوپراکسید دیسموتاز میتوانند به عنوان شاخصهای کارآمد در شناسایی ارقام متحمل گلرنگ مورد استفاده قرار بگیرند
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_65497_012789fc2960d8be70a69b47d487bc76.pdf
2018-02-20
1211
1225
10.22059/ijfcs.2017.226527.654269
آنتیاکسیدانت
پرولین
نسبت پتاسیم به سدیم
وزن خشک بوته
سیدعبدالرضا
کاظمینی
akazemeini@shirazu.ac.ir
1
دانشیار _ دانشگاه شیراز
LEAD_AUTHOR
افشین
زمانی
zamani70.afshin@gmail.com
2
دانشکده کشاورزی دانشگاه شیراز
AUTHOR
اعظم
معتضدیان
azam.motazedian@gmail.com
3
دانشکده کشاورزی.دانشگاه شیراز
AUTHOR
احسان
شاکری
shakeriehsan2007@gmail.com
4
دانشگاه شیراز
AUTHOR
Abdul-Jaleel, C., Gopi, R., Sankar, B., Manivannam, P., Kishorekumar, A., Sridharan, R. & Panneerselvan, R. (2007). Studies on germination, seedling vigour, lipid peroxidation and prolinemetabolism in Catharanthus roseus seedlings under salt stress. South African Journal of Botany, 73, 190-195.
1
Agrawal, S., Sairam, R.K., Srivasta, G.C., Tyagi, A. & Meena, R.C. (2005). Role of ABA, salicylic acid, calcium and hydrogen peroxide on antioxidant enzymes induction in wheat seedling. Plant Science, 169, 559-570.
2
Arzani, A. & Ashraf. M. (2016). Smart Engineering of Genetic Resources for Enhanced Salinity Tolerance in Crop Plants. Critical Review in Plant Science. 35(3): 146-189.
3
Ashraf, M. & Ahmad, S. (2000). Influence of sodium chloride on ion accumulation, yield components and fiber characteristics in salt-tolerant and salt-sensitive lines of cotton (Gossypium hirsutum L.). Field Crops Research 66, 115-127.
4
Ashraf, M. & Harris, P.J.C. (2004). Potential biochemical indicators of salinity tolerance in plants. Plant Science, 166, 3-16.
5
Ashraf, M. & Ali, Q. (2008). Relative membrane permeability and activities of some antioxidant enzymes as the key determinants of salt tolerance in canola (Brassica napusL.). Environmental and Experimental Botany, 63, 266–273.
6
Ashraf, M. & Foolad, M.R. (2007). Roles of Glycine Betaine and Proline in Improving Plant Abiotic Stress Resistance. Environmental and Experimental Botany, 59, 206-216.
7
Ashraf, M., & Foolad, M. R. (2013). Crop breeding for salt tolerance in the era of molecular markers andmarker-assisted selection. Plant Breed. 132: 10–20.
8
Bates, L., Waldren, R. & Teare, I. (1973). Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and soil, 39: 205-207.
9
Bazrafshan A.H. & Ehsanzadeh, P. (2014). Growth, photosynthesis and ion balance of sesame (SesamumindicumL.) genotypes in response to NaCl concentration in hydroponic solutions. Photosynthetica, 52(1), 134-147.
10
Bowler, C., Slooten, L., Vandenbranden, S., De Rycke, R., Botterman, J., Sybesma, C., Van Montagu, M.,Inzé, D. (1991). Manganese superoxide dismutase can reduce cellular damage mediated by oxygen radicals in transgenic plants. The EMBO Journal. 10(7), 1723-1732.
11
Britton, C. & Mehley, A.(1955). Assay of catalase and peroxidase. Methods in Enzymology. 2, 764-775.13.
12
Coskun, D., Britto, D.T., Jean, Y.K., Kabir, I., Tolay, I., Torun, A.A. & Kronzucker, J. (2013). K+ Efflux and retention in response to NaCl stress do not predict salt tolerance in contrasting genotypes of Rice (Oryza sativa L.). PLOS ONE. 8(2), 1-16.
13
Dehindsa, R.S., Dehindsa, P.P. & Thorpe, T.A.(1981). Leaf Senescence: Correlated with Increased Levels of Membrane Permeability and Lipid Peroxidation, and Decreased Levels of Superoxide Dismutase and Catalase. Journal of Experimental Botany. 32(1), 93-101.
14
Farhoudi, R. (2011). Evolution effect of salt stress on growth, antioxidant enzymes activity and malondealdehaid concentration of Canola verities. Iranian Journal of Field Crops Research, 9(1), 123-130. (In Farsi)
15
Fidalgo, F., Santos, A., Santos, I. & Salema, R. (2004). Effects of long‐term salt stress on antioxidant defence systems, leaf water relations and chloroplast ultrastructure of potato plants. Annals of Applied Biology, 145, 185-192.
16
Gao, S., Ouyang, C., Wang, S., Xu, Y., Tang, L. & Chen, F. (2008). Effects of salt stress on growth, antioxidant enzyme and phenylalanine and phenylalanine ammonia-lyase activities in Jatrophacurcas L. seedlings. Plant, Soil and Environment, 54,374-81.
17
Garriga, M., Munoz, C.A., Caligari, P.D.S. & Retamales, J.B. (2015). Effect of salt stress on genotypes of commercial (Fragaria x ananassa) and chilean strawberry (F. chiloensis). Scientia Horticulture, 195, 37-47.
18
Gengmao, Z., Yu, H., Xing, S., Shihui, L., Quanmei, S. & Changhai, W. (2015). Salinity Stress Increases Secondary Metabolites and Enzyme Activity in Safflower. Industrial Crops and Production, 64, 175-181.
19
Gill, S. S. & Tuteja, N. (2010). Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. Plant Physiology and Biochemistry, 48, 909-930.
20
Gorgi, M., Zahedi, M. & Eshghizadeh, H.R. (2015). Relationship between responses of Safflower genotypes to salinity at germination and vegetative growth stages. Journal of Crop Production and Processing, 4(14), 147-158.(In Farsi)
21
Hafsi, C., Romero-Puertas, M.C., Gupta, D.K., Del-Rio, L.A., Sandalio, L.M. &Abdelly, C. (2010). Moderate salinity enhances the antioxidative response in the halophyte Hordeum maritimum L. under potassium deficiency. Environmental and Experimental Botany, 60, 129-136.
22
Heath, R.L. & Packer, L. (1968). Photoperoxidation in isolated chloroplasts. I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry and Biophysics. 125, 189–198.
23
Hu, L., Li, H., Pang, H. & Fu, J. (2012). Responses of antioxidant gene, protein and enzymes to salinity stress in two genotypes of perennial ryegrass (Lolium perenne) differing in salt tolerance. Journal of Plant Physiology, 169, 146-156.
24
Javadipour, Z., Movahhedi Dehnavi, M. & Balouchi, H.R. (2013). Changes in the rate of proline, soluble sugars, glycinebetaine and protein content in leaves of six spring safflower (Carthamus tinctiriusL.) under salinity stress. Journal of Plant Process and Function, 1(2), 13-24. (In Farsi)
25
Javadipour, Z., Movahhedi Dehnavi, M. & Balouchi, H.R. (2013). Evaluation of photosynthesis parameters, chlorophyll content and fluorescence of safflower cultivars under saline condition. Electronic Journal of Crop Production, 6(2), 35-56. (In Farsi)
26
Karimi, S., Arzani, A. & Saeidi, G. (2014). Differential response of ion and osmolyte accumulation to salinity stress in salt-tolerant and salt-sensitive seedlings of safflower (Carthamus tinctoriusL.). Research on Crops, 15,802-809.
27
Kaya, C., Higges, D. &Kirnak, H. (2001). The effects of high salinity (NaCl) and supplementary phosphorus and potassium on physiology and nutrition development of spinach. Journal of Plant Physiology, 27, 47-59.
28
Lacerda, C. F., Cambraia, J., Oliva, M.A. & Ruiz, H.A. (2005). Changes in growth and in solute concentrations in sorghum leaves and roots during salt stress recovery. Environmental and Experimental Botany, 54, 69-76.
29
Lichtenthaler, H.K. (1987). Chlorophyll and carotenoids: pigments of photosynthetic biomembranes. Meth. Enzym, 148, 331-382.
30
Mass, E.V. (1985). Crop tolerance to sprinkling water. Plant and Soil, 89, 273-284.
31
Meloni, D. A., Oliva, M.A., Martinez, C.A. & Cambraia, J. (2003). Photosynthesis and activity of superoxide dismutase, peroxidase and glutathione reductase in cotton under salt stress. Brazilian Journal of Plant Physiology, 15 (2), 12-21
32
Munns, R. & Tester, M. (2008). Mechanisms of Salinity Tolerance. Annual Review of Plant Biology, 59, 651-681.
33
Olsen, S. R. C., Cole, V., Watanabe, F.S. & Dean, L.A. (1954). Estimation of available phosphorus in soil by extraction with sodium bicarbonate. USDA. Circ.939. U. S. Gov Print. Office, Washington, D. C.
34
Rahimi, A., Dashti, H. & Zibai, S. (2012). Effects of seed priming on some physiological traits of safflower (Carthamus tinctorius L., cv. Goldasht) under salinity stress. Journal of Crop Production and Processing, 2(3), 1-15.(In Farsi)
35
Salem, N., Msaada, K., Dhifi, W., Limam, F. & Marzouk, B. (2014). Effect of salinity on plant growth and biological activities of Carthamus tinctorius L. extracts at two flowering stages. Acta Physiologiae Plantarum, 36, 433-445.
36
Sarvajeet, S. G. & Narendra, T. (2010). Reactive oxygen species and antioxidant machinery in a biotic stress tolerance in crop plants. Plant Physiology and Biochemistry, 3, 1-22.
37
Sheidaie S.,Zahedi, M. & Mirmohammadi Meibodi, A.M. (2010). Effect of salinity on dry matter accumulation and ion distribution of safflower genotypes. Iranian Journal of Field Crop Science, 4, 811-819. (In Farsi).
38
Siddiqi, E.H. & Ashraf, M. (2008). Can leaf water relation parameters be used as selection criteria for salt tolerance in safflower (Carthamus tinctorius L.). Pakistan Journal of Botany, 40, 221-228.
39
Tavakoli, F., Vazan, S., Sorkheh, K. and Shakeri, E. (2016). Effect of salinity stress on some physiological traits and electrophoresis pattern of leaf proteins of two Barley genotypes. Journal of Crop Production and Processing, 6(19), 191-201. (In Farsi)
40
Wu, H., Shabala, L., Zhou, M., Stefano, G., Pandolfi, C., Mancuso, S., & Shabala, S. (2015). Developing and validating a high-throughput assay for salinity tissue tolerance in wheat and barley. Planta 242, 847-857.
41
Vijayalakshmi, T., Vijayakumar, A.S., Kiranmai, K., Nareshkumar, A. & Sudhakar, C. (2016). Salt stress induced modulations in growth, compatible solutes and antioxidant enzymes response in two cultivars of safflower (Carthamus tinctorius L. cultivar TSF1 and cultivar SM differing in salt tolerance. American Journal of Plant Sciences. 7, 1802-1819.
42
Yeilaghi, H., Arzani, A., Ghaderian, M., Fotovat, R., Feizi, M. & Pourdad, S.S. (2012). Effect of salinity on seed oil content and fatty acid composition of safflower (Carthamus tinctorius L.) genotypes. Food Chemistry, 130, 618-625.
43
Yeilaghi, H., Arzani, A., Ghaderian, M. (2015). Evaluating the contribution of ionic and agronomic components toward salinity tolerance in safflower. Agronomy Journal, 107 (6), 2205-2212.
44
Zibaei, S., Rahimi, A. & Dashti, H. (2012). Effects of seed priming on growth, chlorophyll content, relative water content and dry matter distribution of Safflower (Carthamus tinctorius, cv. Gholdasht) under salinity stress. Journal of Crop Production and Processing, 2(5), 47-58. (In Farsi)
45