ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی مدل همانندسازی و پیشبینی عملکرد دانة گیاه لوبیاچیتی (Phaseolus vulgaris L.)
در این پژوهش، برای همانندسازی و پیشبینی عملکرد گیاه لوبیاچیتی در شهرستان خمین با استفاده از مدل، تغییرات روزانه مربوط به گذارشناسی (فنولوژی)، مادة خشک، سطح برگ و موازنة آب خاک، از طریق آمار روزانة هواشناسی (دمای کمینه و بیشینه، میزان تابش و بارندگی) و با استفاده از دادههای استانی و دادههای دیگر پژوهشگران در نقاط مختلف جهان، محاسبه شد و عملکرد در پایان فصل پیشبینی شد. عملکرد مشاهدهشده دامنة تغییرپذیری 2518 تا 3066 کیلوگرم در هکتار داشت و با میانگین 2832 کیلوگرم در هکتار بود؛ درحالیکه دامنة تغییرپذیری عملکرد پیشبینیشده 2260 تا 2780 کیلوگرم در هکتار و میانگین 2643 کیلوگرم در هکتار داشت. مقدار R2، ضریب تغییرپذیری (CV) و جذر میانگین مربعات انحرافات (RMSD) مدل به ترتیب 83 درصد، 6/1 درصد و 205 کیلوگرم در هکتار بود. بنابراین استنباط میشود که این مدل میتواند برای پیشبینی رشد و عملکرد لوبیا در شرایط شهرستان خمین دقت مناسبی داشته باشد. همچنین این امکان وجود دارد تا در صورت فراهم بودن دادههای مربوط به زیرمدلهای نامبرده و نیز نتایج بهدستآمده از دادههای منطقهای مربوط به تراکم و تاریخهای کشت دیگر گیاهان بذر محصول، بتوان از این مدل، برای همانندسازی و پیشبینی رشد و عملکرد آنها استفاده کرد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64366_b60e1c300488011e705e8ddbafc7811a.pdf
2017-11-22
591
600
10.22059/ijfcs.2017.64366
عملکرد
گذارشناسی
لوبیاچیتی
مدل و همانندسازی
الیاس
آریاکیا
elyasaryakia@yahoo.com
1
مربی، مرکز ملی ذخایر ژنتیکی و زیستی ایران (IBRC)، جهاد دانشگاهی (ACECR)
LEAD_AUTHOR
بنیامین
ترابی
ben_torabi1393@yahoo.com
2
استادیار، گروه زراعت، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
آزیتا
آریاکیا
azitaaryakia1393@yahoo.com
3
کارشناس، تولیدات گیاهی، بانک گیاهی مرکز ملی ذخایر ژنتیکی و زیستی ایران، جهاد دانشگاهی (ACECR)
AUTHOR
Alimadadi, A., Jahansooz, M. R., Ahmadi, A., Tavakol, R. & Rostamza, M. (2006). Cowpea, common bean and mung bean radiation use efficiency, light extinction coefficient and radiation interception in double cropping. Pajouhesh- Va- Sazandegi, 71, 67-75. (in Farsi)
1
Amini, R., Alizadeh, H. & Yousefi, A. R. (2014). Interference between red kidneybean (Phaseolusvulgaris L.) cultivarsand redroot pigweed (Amaranthus retroflexus L.). Europian Journal of Agronomy, 60, 13-21.
2
Anonymous. (2008). FAO. Statistics of Agriculture Crops in the World. ttp://www.fao.org.
3
Anonymous. (2009). Statistics of Agricultural Crops. Center of Statistics and Information, Ministry of Jihad-e-Agriculture, Tehran, Iran (in Persian).
4
Bayat, A. A., Sepehri, A., Ahmadvand, G. & Dorri, H. R. (2010). Effect of water deficit stress on yield and yield components of pinto bean (Phaseolus vulgaris L.) genotypes. Iranian Journal of Crop Sciences, 12(1), 42-54. (in Farsi)
5
Behboudi, F., Allahdadi, E. & Mohamadi, E. (2013).The effect of vermicompost containing copper oxide (CuO) and zinc oxide (ZnO) nanoparticles on some characteristics of the wax bean. Electronic Journal of Crop Production, 6(2), 33-49. (in Farsi)
6
Bouman, B. A. M., Van Keulen, H., Van Laar, H. H. & Rabbinge, R. (1996). The School of de Wit crop growth simulation models: pedigree and historical overview. Agricultural Systems, 52(2/3), 171-198.
7
Confalon, A., Lizaso, J., Ruiz-nogueira, B., Lopez-cedron, F. X. & Sau, F. (2010). Growth, par use efficiency, and yield components of field-grown vicia faba under different temperature and photoperiod regimes. Field Crop Research, 115, 140-148.
8
Coulson, C. L. (1985). Radiant energy conversion in three cultivars of Phaseolus vulgaris. Agricultural and Forest Meteorology, 35(1-4), 21-29.
9
De Wit, C. T. (1965). Photosyntesis of lesf canopies. Agriculture Research Reports. PUDOC, Wageningen, Netherlands.
10
Egli, D. B. (1998). Seed biology and the yield of grain crops. CAB International, Wallingford, UK.
11
Fageria, N. K. (1992). Maximizing Crop Yields. CRC Press.
12
Ferreira, M. E., Abreu, J. P. de M., Bianco, V. V. & Monteiro, A. (1997). Predicting phasic development of green beans for processing using a model with high temperature reduction of thermal time accumulation. Scientia Horticulturae, 69(3/4), 123-133.
13
Ghadiri, H. & Bayat, M. L. (2004). Effect of Row and Plant Spacings on Weed Competition with Pinto Beans (Phaseolus vulgaris L.). Journal of Agriculture Science and Technology, 6, 1-9.
14
Ghanbari, A. & Taheri mazandarani, M. (2003). Effects of sowing date and plant density on yield of spotted bean. Seed and Plant Improvement Journal, 19(4), 483-496. (in Farsi)
15
Hammer, G. L., Goyne, P. J. & Woodruff, D. R. (1982). Phenology of sunflower cultivars. III. Models for prediction in field environments. Australian Journal of Agricultural Research, 33, 263-274.
16
Hoogenboom, G., White, J. W., Jones, J. W. & Boote, K. J. (1991). Dry bean crop growth simulation model user's guide. Florida Agricultural Experiment Station Journalno. N-00379, University of Florida, Gainesville.
17
Jones, H. G. (1992). Plants and Microclimate, (2nd Edition). A quantitative approach to environmental plant physiology. Cambridge University Press, Cambridge. pp.428.
18
Kamelmanesh, M. M., Namayande, A., Dori, H. R. & Bihamta, M. R. (2012). Effects of Bean common mosaic virus on Seed Yield, Yield Components and Phenological Phases of Common Bean (Phaseolus vulgaris L.) Under Field Conditions. Seed and Plant Improvement Journal, 28(1), 39-52. (in Farsi)
19
Khaledian, M. R., Mailhol, J. C., Ruelle, P. & Rosique, P. (2009). Adapting PILOTE model for water and yield management under direct seeding system: the case of corn and durum wheat in a Mediterranean context. Agricultural Water Management, 96(5), 757-770.
20
Kiniry, J. R. & Knievel, D. P. (1995). Response of maize seed number to solar radiation intercepted soon after anthesis. Agronomy Journal, 87, 228-234.
21
Kiniry, J. R., Simpson, C. E., Schubert, A. M. & Reed, J. D. (2004). Peanut leaf area index, light interception, radiation use efficiency, and harvest index at three sites in Texas. Field Crops Research, 91, 297-306.
22
Kiniry, J. R., Tischler, C. R. & Van Esbroeck, G. A. (1999). Radiation use efficiency and leaf C02 exchange for divers C4 grasses. Biomass and Bioenergy.17, 95-112.
23
Lak, M. R., Ghanbari, A. A., Dorri, H. R. & Gahadiri, A. (2009). Effect of Planting Date on Seed Yield and Fusarium Root Rot Disease Severity in Chitti Bean in Khomein. Seed and Plant Production Journal, 25(3), 275-286. (in Farsi)
24
Loomis, R. S. & Williams, W. A. (1963). Maximum crop productivity: an stimate. Crop Science, 3, 67-72.
25
Mailhol, J. C., Olufayo, A. A. & Ruelle, P. (1997). Sorghum and sunflower evapotranspiration and yield from simulated leaf area index. Agricultural Water Management, 35, 167-182.
26
Marcelis, L. F. M., Heuvelink, E. & Goudriaan, J. (1998). Modelling biomass production and yield of horticultural crops: A review. Scientia Horticulturae, 74(1), 83-111.
27
Marrou, H., Sinclair, T. R. & Metral, R. (2014). Assessment of irrigation scenarios to improve performances of Lingotbean (Phaseolus vulgaris) in southwest France. European Journal of Agronomy, 59, 22-28.
28
Meireles, E. J. L., Pereira, A. R., Sentelhas, P. S., Stone, L. F. & Zimmermann, F. G. P. (2002). Calibration and test of the cropgro-dry bean Model for edaphoclimatic conditions in the savanas of central Brazil. Scientia Agricola, 59(4), 723-729.
29
O’Connell, M. G., O’Leary, G. J., Whitfield, D. M. & Connor, D. J. (2004). Interception of photosynthetically active radiation and radiation-use efficiency of wheat, field pea and mustard in a semi-arid environment. Field Crops Research, 85(2/3), 111-124.
30
Oliveira, E. C., Costa, J. M. N., Paula Júnior, T. J., Ferreira, W. P. M., Justino, F. B. & Neves, L.O. · (2012). The performance of the CROPGRO model for bean (Phaseolusvulgaris L.) yield simulation.Acta Scientiarium, 34(3), 239-246.
31
Pannkuk, C. D., Stockle, C. O. & Papendick, R. I. (1998). Evaluating CropSyst Simulations of Wheat Management in a Wheat-Fallow Region of the US Pacific Northwest. Agricultural Systems, 57(2), 121-134.
32
Pengelly, B. C., Blamey, F. P. C. & Muchow, R. C. (1999). Radiation interception and the accumulation of biomass and nitrogen by soybean and three tropical annual forage legumes. Field Crops Research, 63(2), 99-112.
33
Perry, M. W., Siddique, K. H. M. & Wallace, J. F. (1987). Predicting phonological development of Australian wheats. Australian Journal of Agricultural Research, 38, 809-819.
34
Rezaei, A. & KamgarHaghighi, A. (2009). The effect of water stress at different growth stages on the yield of cowpeas. Journal of soil research (soil and water science), 23(1), 17-124. (in Farsi)
35
Soghani, M., Vaezi, S. H. & Sabaghpour, S. H. (2010). Evaluation of morpho-physiological characteristics, grain yield and its components in common bean genotypes (Phaseolus vulgaris L.). Iranian Journal of Crop Sciences, 12 (4), 436-451. (in Farsi)
36
Soltani, A. (2009). Mathematical Modeling in Field Crops. JDM Press. (in Farsi)
37
Soltani, A. & Hoogenboom, G. (2007). Assessing crop management options with crop simulation models based on generated weather data. Field Crops Research, 103(3), 198-207.
38
Soltani, A., Ghasemi, K., Rahimzad, F., Moghadam, M. & Mirnia, M. (1999). CICER: A computer model for simulation of growth, yield of cicer. Agricultural Knowledge journal, 89-106. (in Farsi)
39
Soltani, A., Robertson, M. J., Rahemi-Karizaki, A., Pooreza, J. & Zarei, H. (2006). Modeling biomass accumulation and partitioning in chickpea (Cicer arietinum L.). Journal of Agronomy and Crop Science, 192, 379-389.
40
Soltani, A., Robertson, M. J., Rahemi-Karizaki, A., Poorreza, J. & Zarei, H. (2006). Modeling Biomass accumulation and partitioning in chickpea (Cicer arietinum L.). Journal of Agronomy and Crop Science, 92, 379-389.
41
Soltania, A. F., Zeynali, E. & Galeshi, S. A. (2000). A computer program for simulation of canopy photosynthesis and transpiration in crops. Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources, 7(1), 35-44. (in Farsi)
42
Tesfaye, K., Walker, S. & Tsubo, M. (2006). Radiation interception and radiation use efficiency of three grain legumes under water deficit conditions in a semi-arid environment European Journal of Agronomy, 25(1), 60-70.
43
Torabi, B. & Soltani, A. (2013). A Simple Model for Predicting Grain Yield of Maize Single Cross Hybrid. Journal of Crop Production and Processing, 3(7), 47-59. (in Farsi)
44
Tsubo, M., Walker, S. & Mukhala, E. (2001). Comparison of radiation uses efficiency of mono-/inter –cropping systems with different row orientations. Field Crop Research, 71(1), 17-29.
45
Walker, S. & Ogindo, H. O. (2003). The water budget of rained maize and bean intercrop. Physics and Chemistry of the Earth, 28(20-27), 919-926.
46
Watson, D. J. (1974). Comparative physiological studies on the growth of field crops: I. Variation in net assimilation rate and leaf area between species and varieties and within and between years. Annual Botany, 11, 41-46.
47
Wien, H. C. (1982). Dry matter production, leaf area development and light interception of cowpea lines with broad and narrow leaflet shape. Crop Science, 22(4), 733-737.
48
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسۀ رشد و نمو فنولوژی جمعیتهای یولافوحشی زمستانه (Avena ludoviciana Durieu)
بهینهسازی کنترل یولافوحشی در غلات، مستلزم پیشبینی دقیق مراحل نموی این علف هرز در طول فصل رشدی است. در این زمینه بررسی بهصورت کرتهای دو بار خردشده در قالب طرح بلوک کامل تصادفی با سه تکرار در سال 1392-1391 در پردیس دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه تهران، انجام شد. کرت اصلی شامل پنج تاریخ کاشت (26 مهر، 14 آذر، 30 دی، 24 اسفند و 4 اردیبهشت)، کرت فرعی تیمار رطوبتی (آبیاری و بدون آبیاری) و کرت فرعی فرعی شش جمعیت یولافوحشی (اهواز، شیراز، قائمشهر، کرج، قزوین، اصفهان، کرمانشاه و کامیاران) بود. صفات تاریخ سبزشدن، پنجهزنی، ساقه رفتن، خوشه رفتن و رسیدگی شش جمعیت یولافوحشی در طی فصل رشد یادداشتبرداری و در مرحلۀ رشدی زادوکس 92 (مرحلۀ رسیدگی) خوشهها گردآوری شدند. سرعت سبزشدن در دو جمعیت یولافوحشی کامیاران (11/0) و کرج (1/0) به ازای افزایش هر واحد دما در مقایسه با دیگر جمعیتهای یولافوحشی بالاتر بود. گیاهچههای جمعیت کامیاران در مقایسه با دیگر جمعیتها، با میزان دمای دریافتی (درجۀ روز رشد) کمتری هر مرحلۀ رشدی را سپری کرد. بنابر نتایج تجزیۀ چند متغیره جمعیتهای یولافوحشی را میتوان در چند دسته گنجاند. دو جمعیت کامیاران و کرمانشاه از لحاظ وزن بذر، سرعت سبزشدن و ارتفاع بوته همبستگی بالاتری را نشان میدهند و به هم نزدیکترند. جمعیت اهواز نسبت به دیگر جمعیتها تفاوت بیشتری نشان داده و رشد آن با دما ارتباط نزدیکی داشته است. احتمالاً به دلیل بارندگی بالا در مازندران سرعت پنجهزنی و به ساقه رفتن در این جمعیت (اکوتیپ) بیشتر بوده است. به دلیل همزمانی رشد و نمو یولافوحشی و گندم مدیریت و مهار این علف هرز با پیشبینی به هنگام مراحل رشدی از راه شاخص درجۀ روز رشد، میتوان در بهینهسازی مدیریت و مهار از جمله تعیین زمان دقیق کاربرد علفکشها همراه با کاهش میزان سموم که کاهش آلودگیهای زیستمحیطی را به دنبال خواهد داشت اقدام کرد و موفق بود.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64367_78005feb82c1019514c2ddb72be3476a.pdf
2017-11-22
601
613
10.22059/ijfcs.2017.215143.654170
جمعیت یولافوحشی
درجۀ روز رشد
مقیاس زادوکس
سرعت مراحل فنولوژی
سمیه
فروزش
sfrozesh@ut.ac.ir
1
دانشجوی سابق دکتری، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
LEAD_AUTHOR
مصطفی
اویسی
mostafa.oveisi@gmail.com
2
استادیار، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
حسن
علیزاده
malizade@ut.ac.ir
3
استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
حمید
رحیمیان مشهدی
hrahimian@hotmail.com
4
استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
زهرا
فرخی
zahrafarokhi@ut.ac.ir
5
دانشجوی دکتری، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
Alm, D. M., McGiffen, J. R. M. E. & Hersketh, J. D. (1991). Weed phenology. In Predicting Crop Phenology, 191-218.
1
Baghestani, M. H., Zand, A., Barjaste, A. R., Veisi, M., Noroz zade, S. H., Jamali, M. & Kakhaki, S. H. (2008). Investigating efficacy of BEHPIC and CURRENT Herbicides on grassy weed in wheat fields. Final Report. Iranian Plant Protection Research Institute.
2
Ball, D. A., Klepper, B. & Rydrych, D. J. (1995). Comparative above-ground development rates for several annual grass weeds and cereal grains. Weed Science, 43(3), 410-416.
3
Bewick, T. A., Binning, L. K. & Yandell, B. (1988). A degree day model for predicting the emergence of swamp dodder in cranberry. Horticulture Science, 839-841.
4
Boonman, J. G. (1993). East Africa's grasses and fodders: Their ecology and husbandry. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands.
5
Clements, D. R., & Ditommaso, A. (2011). Climate change and weed adaptation: can evolution of invasive plants lead to greater range expansion than forecasted? Weed Research, 51(3), 227-240.
6
Chancellor, R.J. and Peters, N.C.B. 1976. Competition between wild oat and crops. Pages 99–112 in D. P. Jones, ed. Wild Oats in World Agriculture. London: A RC.
7
Cudney, D. W., Jordan, L. S. Corbett, C. J. & Bendixen, W.E. (1989) .Developmental rates of wild oats (Avena fatua) and wheat (Triticum aestivum(. Weed Science, 37(4), 521-524.
8
Dai, J., Wiersma, J. J., Martinson, K. L. & Durgan, B. R. (2012). Influence of time of emergence on the growth and development of wild oat (Avena fatua). Weed Science, 60(3), 389-393.
9
Donohue, K. (2002). Germination timing influences natural selectionon life-history characters in Arabidopsis thaliana. Ecology, 83(4), 1006-1016.
10
Dezfoli, M. (1997). Graminea grass weeds in Iran. 480 pp.
11
Forcella, F., Benech Arnold, R., Sanchez, R. & Ghersa, C. (2000). Modeling seedling emergence. Field Crop Research, 67(2), 123-139.
12
Ghersa, C. M. & Holt, J. S. (1995). Using phenology prediction in weed management: a review. Weed Research, 461-470.
13
Gutterman, Y. (1992). Maternal effects on seeds during development. Pages 27–59 in M. Fenner, ed. Seeds: The ecology of regeneration in plant communities. Wallingford, U.K.: CAB International.
14
Hulme, P. E. (2009). Relative roles of life-form, land use and climate in recent dynamics of alien plant distributions in the British Isles. Weed Research, 49(1), 19-28.
15
Kenkelii, N. A. C., Derksen, D. A., Thomas, A. G. & Watson, P. R. (2002). Multivariate analysis in weeidis'Icience research. Weed Science, 50(3), 281-292.
16
Kirwa. E. C., Kubasu, D., Mnene, W. N., Kidake, B. & Kimitei, R. K. (2012). Establishment of allelopathic effects in range grass species through pure germinating seed studies. Presented during the 13th KARI Biennial Scientific Conference held Oct.
17
Kirwa, E. C., Njoroge, K., Chemining’wa, G. N. & Mnene, N. (2016). Ecological effects on the flowering phenology of Cenchrus ciliaris L. collections from the arid and semiarid lands of Kenya. African Journal of Agricultural Research, 11(12), 1008-1018.
18
Klingaman, T. E. & Oliver, L. R. (1996). Existence of ecotypes among populations of entireleaf morningglory (Ipomoea hederacea var. integriuscula). Weed Science, 44(3), 540-544.
19
Leblanc, M. L., Cloutier, D. C., Stewart, K. & Hamel, C. (2003). The use of thermal time to model common lambsquarters (Chenopodium album) seedling emergence in corn. Weed Science, 51(5), 718-724.
20
Mack, R. N. & Pyke, D. A. (1983). The demography of Bromus tectorum: variation in time and space. Ecology, 70(1), 69-93.
21
Masin, R., Loddo, D., Benvenuti, S., Otto, S. & Zanin, G. (2012). Modeling weed emergence in Italian maize fields. Weed Science, 60(2), 254-259.
22
Menzel, A. (2000). Trends in phenological phases in Europe between 1951 and 1996. International Journal of Biometeorology, 44(2), 76-81.
23
Menzel, A. & Fabian, P. (1999). Growing seasons extended in Europe, Nature 397.
24
Mesbah, A., Miller, S. D., Fornstrom, K. J. & Legg, D. E. (1995). Wild mustard (Brassica kaber) and wild oat (Avena fatua) interference in sugarbeet (Beta vulgaris L.). Weed Technology, 9, 49-52.
25
Minbashi Moeini, M. (2008). Application of GIS in the management of weed wheat and rapeseed. Ph.D. thesis. University of Tehran.
26
Minbashi Moeini, M., Rahimian, H., Baghestani, M. A., Alizadeh, H. M., Kheirkhah, M. M., Kakhki, Nazer, S. H. & Dieh-Ji, H. (2008). Using Phenology of Weeds in the Wheat Fields for Improvement Chemical Control and Reducing Herbicide Application. Environmental Science, 94-77.
27
Mickelson, J. A. & Grey, W. E. (2006). Effect of soil water content on wild oat (Avena fatua) seed mortality and seedling emergence. Weed Science, 52(2), 255-262.
28
Mohamadzadeh, Z. (2011). Study of Genetic Diversity in Susceptible and Resistant Populations of Wild Oat to ACCase-Inhibitor Herbicides. Ph.D. thesis of Plant Systematic. Islamic Azad University Science and Research Branch, Tehran.
29
Montazeri, M., Zand, A. & Baghestanl, M. H. (2005). Weeds and their control in wheat fields of Iran. Plant Pest and Diseases Research Institute Press. 85pp.
30
Morishita, D. W. & Thill, D. C. (1988). Factors of wild oat interference on spring barley (Hordeum vulgare) growth and yield. Weed Science, 36(1), 37-42.
31
Odum, E. P. (1971). Fundamentals of ecology, Edn. 3. Saunders, Philadelphia, U.S.A. 574 pp.
32
Page, E. R., Gallagherb, R. S., Kemanianc, A. R., Zhangd, H. & Fuerste, E. P. (2006). Modeling site-specific wild oat (Avena fatua) emergence across a variable landscape. Weed Science, 54(5), 838- 846
33
Pigliucci, M. & Marlow, E. T. (2001). Differentiation for floweringtime and phenotypic integration in Arabidopsis thaliana inresponse to season length and vernalization. Oecologia, 127(4), 501-508.
34
Pour-Ali Moghanloo, H., Alizadeh H. & Oveis, M. (2013). Predicting Seedling Emergence of Hordeum spontanum: Do the Emerged Ecotypes from Different Climates in Iran Indicate Different Patterns of Emergence?. Iranian Journal of Weed Science, 9, 15-26. (in Farsi)
35
Probert, R. J. (1992). The role of temperature in germination ecophysiology. Fenner, M. (Ed.). Seeds: The ecology of regeneration in plant communities. Wallingford, CAB International. 285-325.
36
Qiang, S. (2005). Multivariate analysis, description, and ecological interpretation of weed vegetation in the summer crop fields of Anhui province, China. Journal of Integrative Plant Biology, 47(10), 1193-1210.
37
Rashed Mohasel, M. H., Najafi, H. & Akbarzade, M. D. (2001). Weed Biology and management Book. Ferdowsi University.
38
Sans, F. X. & Masalles, R. M. (1994). Life-history variation in the annual arable weed Diplotaxis erucoides (Cruciferae). Canadian Journal Botany, 72(1), 10-19.
39
Schlichting, C. D. & Levin, D. A. (1986). Phenotypic plasticity: an evolving plant character. Biological Journal of Linnean Society, 29(1), 37-47.
40
Schlichting, C. D. & Levin, D. A. (1990). Phenotypic plasticity in Phlox. III. Variation among natural populations of P. drummondii. Journal of Evolutionary Biology, 3(5-6), 411-428.
41
Schlichting, C. D. (1986). The evolution of phenotypic plasticity inplants. Annuual Review Ecology Systytematic, 17, 667-693.
42
Schmid, B. (1992). Phenotypic variation in plants. Evolution Trends Plant, 6(1), 45-60.
43
Sexsmith, J. J. (1969). Dormancy of wild oat seed produced under various temperature and moisture conditions. Weed Science, 17(4), 405-407.
44
Shirtliffe, S. J., Entz, M. H. & van acker, R. C. (2000). Avena fatua development and seed shatter as related to thermal time. Weed Science, 45(8), 555-560.
45
Sultan, S. E. & Bazzaz, F. A. (1993). Phenotypic plasticity in Polygonum persicaria. I. Diversity and uniformity in genotypic norms of reaction to light. Evolution, 47(4), 1009-1031.
46
Sultan, S. E. (1987). Evolutionary implications of phenotypic plasticity in plants. Evolution Biology, 127-178.
47
Ter Braak, C. & Milauer, P. (1998). CANOCO Reference manual and user’s guide to CANOCO for windows: Software for community ordination (version 4). Microcomputer Power (Italica, NY, USA). 352 pp.
48
Thurston, J. M. & Phillipson, A. (1976). Distribution wild oats in world agriculture. London: Agricultural Research Council, 19-64.
49
Wang, J. Y. (1960). A critique of the heat unit approach to plant response studies. Ecology, 41(4): 785-790.
50
Weinig, C. (2000). Differing selection in alternative competitive environments: shade-avoidance responses and germination timing. Evolution, 54(1), 124-136.
51
Zadoks, J. C., Chang, T. T. & Konzak, C. F. (1974). Decimal code for the growth stages of cereals. Weed Research, 14, 415-421.
52
Zand, E., Rahimian, H., Koocheki, A. R., Khalaghani, J., Moosavi, K. & Ramezani, K. (2004). Weed ecology (Translation). Jehade Daneshgahi of Mashhad Press.
53
Zand, E., Bena Kashani, F., Baghestani, M.A., Maknali, A., Minbashi, M. & Soufizadeh, S. (2006b). Investigating the distribution of resistant wold oat (Avena ludoviciana) populations to clodinafop-propargil herbicide in South Western Iran. Environmental Sciences, 4, 85-92.
54
ORIGINAL_ARTICLE
کمیسازی واکنش جوانهزنی کینوا (Chenopodium quinoa Willd) تحت تأثیر رژیمهای مختلف دمایی و تنش خشکی
کینوا (Chenopodium quinoa) یک گیاه شبه غلهای با ارزش غذایی بالا و متحمل به تنشهای غیرزنده مانند گرما، سرما و تنش خشکی است. بهمنظور بررسی تأثیر دما بر جوانهزنی بذر کینوا در شرایط تنش خشکی آزمایشی بهصورت فاکتوریل با هفت سطح دما (5، 10، 15، 20، 25، 30 و 35 درجۀ سلسیوس) و چهار سطح تنش خشکی شامل (0، 4-، 8- و 12- بار) انجام شد. نتایج نشان داد، با کاهش پتانسیل اسمزی به 12- بار درصد جوانهزنی در دماهای 5، 10 و 15 درجۀ سلسیوس به 0 کاهش یافت ولی بهتدریج با افزایش دما به 30 درجۀ سلسیوس، درصد جوانهزنی به 85 درصد افزایش یافت. در همۀ سطوح دمایی با کاهش پتانسیل اسمزی، سرعت جوانهزنی کاهش یافت. با کمی کردن سرعت جوانهزنی با استفاده از برازش دو مدل دندان-مانند و بتا ، پنجرۀ مجاز دمایی برای جوانهزنی (دماهای کاردینال) با کاهش پتانسیل اسمزی، محدودتر شد. بهطوریکه، در پتانسیلهای 0، 4-، 8- و 12- بار میزان دمای کمینه (پایه) به ترتیب به 1، 1، 2 و 15 درجۀ سلسیوس افزایش یافت و دمای بیشینه (سقف) به ترتیب به 54، 41، 41 و 36 درجۀ سلسیوس کاهش یافت ولی دمای بهینۀ بذر در شرایط مختلف اسمزی کمتر تحت تأثیر قرار گرفت.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64369_00d325cc07b03afb8dcd5a5467a0499c.pdf
2017-11-22
615
623
10.22059/ijfcs.2017.128439.653907
پتانسیل اسمزی
تنش غیرزنده
دمای مهم
سرعت جوانهزنی و کینوا
آرش
مامدی حاجی جفان
arash.mamedi@ut.ac.ir
1
دانشجوی دکتری علوم و تکنولوژی بذر، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
رضا
توکل افشاری
tavakkol@ut.ac.ir
2
استاد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
LEAD_AUTHOR
نیازعلی
سپهوند
niazsepahvand@gmail.com
3
استادیار، مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ نهال و بذر
AUTHOR
Aboulhasani, M., Lakzian, A., Haghnia, G. H. & Sarcheshmehpoor, M. (2006). The study of salinity and drought tolerance of Sinorhizobium meliloti isolated from province of Kerman in vivo condition. Journal of Field Crops Research, 4(2), 183-193. (in Farsi)
1
Ajmal Khan, M., Gul, B. & Weber, D. J. (2001). Influence of salinity and temperature on germination of Kochia scoparia. Wetlands Ecological Management, 9(1), 483-489.
2
Balbaki, R. Z., Zurayk, R. A., Blelk, M. M. & Tahouk, S. N. (1999). Germinatio and seedling development of drought tolerant and susceptible wheat under moisture stress. Seed Science and Technology, 27(1), 291-302.
3
Bewley, J. D. (1997). Seed germination and dormancy. The plant cell, 9(7), 1055.
4
Dodd, G. L. & Donovan, L. A. (1999).Water potential and ionic effects on germination and seeding growth of two cold desert shrubs. American Journal of Botany, 86(1), 1146- 1153.
5
Everitt, J. H., Alaniz, A. & Lee, J. B. (1983). Seed germination characteristic of Kochia scoparia. Journal of Range Management, 36(1), 646-648.
6
Vega-Gálvez, A., Miranda, M., Vergara, J., Uribe, E., Puente, L. & Martínez, E. A. (2010). Nutrition facts and functional potential of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.), an ancient Andean grain: a review. Journal of the Science of Food and Agriculture, 90(15), 2541-2547.
7
Fernandez, G. & Johnston M. (1995). Seed vigor testing in lentil, bean, and chickpea. Seed Science and Technology, 23(1), 617-627.
8
Flores, J. & Briones, O. (2001). Plant life-form and germination in a Mexican inter-tropical desert: effects of soil water potential and temperature. Journal of Arid Environments, 47(2), 485-497.
9
Gill, P. K., Shama, A. D., Singh, P. & Singh Behullar, S. (2002). Osmotic stress induced changes in germination, growth and soluble sugar content of Sorgum bicolor L. seeds. Bulgarian Journal of Plant, 28, 12-25.
10
Hucl, P. (1993). Effect of temperature and moisture stress on the germination of diverse common bean genotypes. Canadian Journal of Plant Science, 73(3), 697-702.
11
Jame, Y. W. & Cutforth, H. W. (2004). Simulating the effects of temperature and seeding depth on germination and emergence of spring wheat. Agricultural and Forest Meteorology, 124(3), 207-218.
12
James, L. E. A. (2009). Quinoa (Chenopodium quinoa Willd.): composition, chemistry, nutritional, and functional properties. Advances in food and nutrition research, 58(1), 1-31.
13
Jacobsen, S. E. (2003). The worldwide potential for quinoa (Chenopodium quinoa Willd.). Food reviews international, 19(1), 167-177.
14
Jacobsen, S. E., Liu, F. & Jensen, C. R. (2009). Does root-sourced ABA play a role for regulation of stomata under drought in quinoa (Chenopodium quinoa Willd.). Scientia Horticulturae, 122(2), 281-287.
15
Kaboli, M. & Sadeghi, M. (2001). Effect of drought stress on germination of three Onobrochis species. Pajohesh and Sazandegi, 64(2), 51-57. (in Farsi)
16
Jacobsen, S. E., Monteros, C., Christiansen, J. L., Bravo, L. A., Corcuera, L. J. & Mujica, A. (2005). Plant responses of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) to frost at various phenological stages. European Journal of Agronomy, 22(2), 131-139.
17
Kebreab, E. & Murdoch, A. J. (1999). Modelling the effects of water stress and temperature on germination rate of Orobanche aegyptiaca seeds. Journal of Experimental Botany, 50(334), 655-664.
18
Kebreab, E. & Murdoch, A. J. (2000). The effect of water stress on the temperature range for germination of Orobanche aegyptiaca seeds. Seed Science Research, 10(2), 127-133.
19
Michel, B. E. & Kaufman, M. R. (1973). The osmotic potential of polyethylene glycol 6000. PlantPhysiology, 51, 914-916.
20
Nonogaki, H., Bassel, G. W. & Bewley, J. D. (2010). Germination- Still a mystery. Plant Science, 179(6), 574-581.
21
Oelke, E. A., Putnam, D. H., Teynor, T. M. & Oplinger, E. S. (1992). Alternative field crops manual. University of Wisconsin Cooperative Extension Service, University of Minnesota Extension Service, Centre for Alternative Plant and Animal Products.
22
Ruales, J. & Nair, B. M. (1993). Content of fat, vitamins and minerals in quinoa (Chenopodium quinoa, Willd) seeds. Food Chemistry, 48(2), 131-136.
23
Piper, E. L., Boote, K. J., Jones, J. W. & Grimm, S. S. (1996). Comparison of two phenology models for predicting flowering and maturity date of soybean. Crop Science, 36(3), 1606-1614.
24
Rahimian-Mashhadi, H., Bagheri Kazemabad, A. & Paryab, A. (1991). Effect of PEG and NaCl induced water potential at different temperatures on germination and seedling vigor of several wheat populations. Agriculture Science and Technology, 5(4), 35-42. (in Farsi)
25
Ruiz-Carrasco, K., Antognoni, F., Coulibaly, A. K., Lizardi, S., Covarrubias, A., Martínez, E. A., ... & Zurita-Silva, A. (2011). Variation in salinity tolerance of four lowland genotypes of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) as assessed by growth, physiological traits, and sodium transporter gene expression. Plant Physiology and Biochemistry, 49(11), 1333-1341.
26
Sanchez, H. B., Lemeur, R., Damme, P. V. & Jacobsen, S. E. (2003). Ecophysiological analysis of drought and salinity stress of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.). Food Reviews International, 19(1), 111-119.
27
Soltani, A., Robertson, M.J., Torabi, B., Yousefi-Daz, M., and Sarparast, R. (2006). Modeling seedling emergence in chickpea as affected by temperature and sowing depth. Agricultural and Forest Meteorology, 138(1), 156-167.
28
Soltani, E., Soltani, A., Galeshi, S., Ghaderi-Far, F. & Zeinali, E. (2013). Seed germination modeling of wild mustard (Sinapis arvensis L.) as affected by temperature and water potential: hydrothermal time model. Journal of Plant Production, 20(1), 1-16
29
Tabrizi, L., Nasiri Mahalati, M. & Kochaki, A. (2004). Investigation on the cardinal temperature for germination of Plantago ovate and Plantago psyllium. Iranian Journal of Field Crops Research, 2(4), 143-151. (in Farsi)
30
Timmermans, B. G. H., Vos, J., Van Nieuwburg, J., Stomph, T. J. & Van der Putten, P. E. L. (2007). Germination rates of Solanum sisymbriifolium: temperature response models, effects of temperature fluctuations and soil water potential. Seed Science Research, 17(1), 221-231.
31
Tolyat, M. A., Afshari, R. T., Jahansoz, M. R., Nadjafi, F., & Naghdibadi, H. A. (2014). Determination of cardinal germination temperatures of two ecotypes of Thymus daenensis subsp. Daenensis. Seed Science and Technology, 42(1), 28-35.
32
Yin, X., Krop, M. J., McLaren, G. & Visperas, R. M. (1995). A nonlinear model for crop development as a function of temperature. Agricultural and Forest Meteorology, 77(3), 1-16.
33
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر نانو محرکها بر تولید و بیان ژنهای دخیل در زیستساخت آلکالوئیدها در دروایۀ شقایق شرقیPapaver orientale L.
کشت بافت منبع بالقوهای در جهت تولید متابولیتهای ثانویه است. محرک (الیسیتور)ها نقش مهمی در القای سامانۀ دفاعی گیاهان و تولید متابولیتهای ثانویه ایفا میکنند. الکالوئیدها گروهی از متابولیتهای ثانویه و با ارزش اقتصادی هستند که استفاده از آنها توسط انسان به عصر باستان باز میگردد. بسیاری از گونههای Papaver توانایی تولید آلکالوئیدهایی مانند پاپاورین، نوسکاپین، مورفین و کدئین را دارند. در این پژوهش تغییرپذیری بیان ژنهای دخیل در زیستساخت (بیوسنتز) این آلکالوئیدها در کشت دروایۀ (سوسپانسیون) یاختهای Papaver orientale در فاصلههای زمانی24 و 48 ساعت پس از اعمال محرکهای نانو نقره و نانو دیاکسید تیتانیوم با qRT-PCR بررسی شد. نتایج بیانگر افزایش بیان DBOX، SDR، COR و CODM 24 و 48 ساعت پس از تیمار با نانو نقره بود درحالیکه کاهش بیان SaLAT و T6ODM در 24 ساعت آغازین مشاهده شد. نانو دیاکسید تیتانیوم پس از 48 ساعت منجر به افزایش بیان DBOX، COR و CODM شد. ولی افزایش بیان SDR، SaLAT و T6ODM تنها پس از 24 ساعت مشاهده شد. بنا بر نتایج بهدستآمده از HPLC نانو نقره بهصورت بسیار مؤثرتر از نانو دیاکسید تیتانیوم پاپاورین، نوسکاپسین و مورفین را به ترتیب 19، 88/1 و 12/3 برابر پس از 48 ساعت در مقایسه با شاهد افزایش داد. بنابراین میتوان از کشت دروایۀ یاختهای شقایق شرقی بهعنوان منبعی برای تولید آلکالوئیدهای مهمی مانند مورفین و نوسکاپین استفاده کرد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64370_7abe74f52a35b260cd6674411445094f.pdf
2017-11-22
625
636
10.22059/ijfcs.2017.207472.654115
آلکالوئیدها
کشت دروایۀ یاختهای
نانو محرکها
Papaver orientale
qRT-PCR
صفورا
شیروانی
shirvani2013@ut.ac.ir
1
دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
محمدرضا
نقوی
mnaghavi@ut.ac.ir
2
استاد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه تهران، کرج
LEAD_AUTHOR
Allen, R. S., Miller, J. A., Chitty, J. A., Fist, A. J., Gerlach, W. L. & Larkin, P. J. (2008). Metabolic engineering of morphinan alkaloids by over‐expression and RNAi suppression of salutaridinol 7‐O‐acetyltransferase in opium poppy. Plant Biotechnology Journal, 6(1), 22-30.
1
Beaudoin, G. A. & Facchini, P. J. (2014). Benzylisoquinoline alkaloid biosynthesis in opium poppy. Planta, 240(1), 19-32.
2
Castiglione, M. R., Frediani, M., Ravalli, C., Venora, G. & Cremonini, R. (2009). Cytological characterization of Vicia oroboides Wulfen in Jacq. Protoplasma, 236(1-4), 21-27.
3
Chen, X. & Facchini, P. J. (2014). Short‐chain dehydrogenase/reductase catalyzing the final step of noscapine biosynthesis is localized to laticifers in opium poppy. The Plant Journal, 77(2), 173-84.
4
Cho, H. Y., Son, S. Y., Rhee, H. S., Yoon, S. Y. H., Lee-Parsons, C. W. & Park, J. M. (2008). Synergistic effects of sequential treatment with methyl jasmonate, salicylic acid and yeast extract on benzophenanthridine alkaloid accumulation and protein expression in Eschscholtzia californica suspension cultures. Journal of biotechnology, 135(1), 117-122.
5
Croteau, R., Kutchan, T. M. & Lewis, N. G. (2000). Natural products (secondary metabolites). Biochemistry and Molecular Biology of Plants, 24, 1250-319.
6
Cui, H., Zhang, P. & Gu, W. (2009). Application of anatase TiO2 sol derived from peroxotitannic acid in crop plant diseases control and growth regulation. NSTI-Nanotech, 2, 286-289.
7
Daud, Z. & Keng, C. L. (2006). Effects of plant growth regulators on the biomass of embryogenic cells of Cyperus aromaticus (Ridly) Mattf and Kukenth. Biotechnol, 5, 75-78.
8
De Luca, V., Salim, V., Atsumi, S. M. & Yu, F. (2012). Mining the biodiversity of plants: a revolution in the making. Science, 336(6089), 1658-61.
9
Facchini, P. J. & De Luca, V. (2008). Opium poppy and Madagascar periwinkle: model non‐model systems to investigate alkaloid biosynthesis in plants. The Plant Journal, 54(4), 763-84.
10
Gajjar, P., Pettee, B., Britt, D. W., Huang, W., Johnson, W. P. & Anderson, A. J. (2009). Antimicrobial activities of commercial nanoparticles against an environmental soil microbe Pseudomonas putida KT2440. Journal of Biological Engineering, 3(9), 1-3.
11
Hagel, J. M., Beaudoin, G. A., Fossati, E., Ekins, A., Martin, V. J. & Facchini, P. J. (2012). Characterization of a flavoprotein oxidase from opium poppy catalyzing the final steps in sanguinarine and papaverine biosynthesis. Journal of Biological Chemistry, 287(51), 42972-83.
12
Hagel, J. M. & Facchini, P. J. (2010). Dioxygenases catalyze the O-demethylation steps of morphine biosynthesis in opium poppy. Nature Chemical Biology, 6(4), 273-5.
13
Hamill, J. D. & Rhodes, M. J. C. (1993). Manipulating secondary metabolism in culture. In Biosynthesis and Manipulation of Plant Products (pp. 178-209). Springer Netherlands.
14
Hashemi, S. M. & Naghavi, M. R. (2016). Production and gene expression of morphinan alkaloids in hairy root culture of Papaver orientale L. using abiotic elicitors. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 125(1), 31-41.
15
Huang, F. C. & Kutchan, T. M. (2000). Distribution of morphinan and benzophenanthridine alkaloid gene transcript accumulation in the opium poppy Papaver somniferum. Phytochemistry, 53, 555-564.
16
Khodayari, M. (2014). The effect of elicitors on genes expression in some alkaloids production of P. somniferum L.. Ph.D. Thesis. Faculty of Agronomy & Plant Breeding Tehran University, Iran.
17
Levine, A., Tenhaken, R., Dixon, R. & Lamb, C. (1994). H2O2 from the oxidative burst orchestrates the plant hypersensitive disease resistance response. Cell, 79(4), 583-593.
18
Makkar, H. P., Siddhuraju, P., Becker, K., Makkar, H. P., Siddhuraju, P. & Becker, K. (2007). Trypsin Inhibitor (pp. 1-6). Humana Press.
19
Monica, R. C. & Cremonini, R. (2009). Nanoparticles and higher plants. Caryologia, 62(2), 161-5.
20
Murthy, H. N., Lee, E. J. & Paek, K. Y. (2014). Production of secondary metabolites from cell and organ cultures: strategies and approaches for biomass improvement and metabolite accumulation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 118(1), 1-6.
21
Namdeo, A. G. (2007). Plant cell elicitation for production of secondary metabolites: a review. Pharmacognosy reviews, 1(1), 69-79.
22
Nyman, U. & Bruhn, J. G. (1979). Papaver bracteatum-A summary of current knowledge. Planta medica, 35, 98-117.
23
Ocsoy, I., Paret, M. L., Ocsoy, M. A., Kunwar, S., Chen, T., You, M. & Tan, W. (2013). Nanotechnology in plant disease management: DNA-directed silver nanoparticles on graphene oxide as an antibacterial against Xanthomonas perforans. Acs Nano, 7(10), 8972-80.
24
Prasad, R., Kumar, V. & Prasad, K. S. (2014). Nanotechnology in sustainable agriculture: present concerns and future aspects. African Journal of Biotechnology, 13(6), 705-13.
25
Raei, M., Angaji, S. A., Omidi, M. & Khodayari, M. (2014). Effect of abiotic elicitors on tissue culture of Aloe vera. Journal of Biosciences (IJB), 5(1), 74-81.
26
Rao, S. R. & Ravishankar, G. A. (2002). Plant cell cultures: chemical factories of secondary metabolites. Biotechnology advances, 20(2), 101-153.
27
Sariyar, G. & Shamma, M. (1986). Six alkaloids from Papaver species. Phytochemistry, 25(10), 2403-2406.
28
Sariyar, G. (2002), Biodiversity in the alkaloids of Turkish Papaver species. Pure and applied chemistry, 74(4), 557-74.
29
Schilmiller, A. L., Last, R. L. & Pichersky, E. (2008). Harnessing plant trichome biochemistry for the production of useful compounds. The Plant Journal, 54(4), 702-11.
30
Servin, A., Elmer, W., Mukherjee, A., De la Torre-Roche, R., Hamdi, H., White, J. C., Bindraban, P. & Dimkpa, C. (2015). A review of the use of engineered nanomaterials to suppress plant disease and enhance crop yield. Journal of Nanoparticle Research, 17(2), 1-21.
31
Shafiee, A., Lalezari, I., Nasseri‐Nouri, P. & Asgharian, R. (1975). Alkaloids of Papaver orientale and Papaver pseudo‐orientale. Journal of pharmaceutical sciences, 64(9), 1570-2.
32
Sytar, O., Kumar, A., Latowski, D., Kuczynska, P., Strzałka, K. & Prasad, M. N. V. (2013). Heavy metal-induced oxidative damage, defense reactions, and detoxification mechanisms in plants. Acta physiologiae plantarum, 35(4), 985-999.
33
Woods, A., Dickerson, K., Heath, R., Hong, S. P., Momcilovic, M., Johnstone, S. R. & Carling, D. (2005). Ca 2+/calmodulin-dependent protein kinase kinase-β acts upstream of AMP-activated protein kinase in mammalian cells. Cell metabolism, 2(1), 21-33.
34
Yin, L., Cheng, Y., Espinasse, B., Colman, B. P., Auffan, M., Wiesner, M., Rose, J., Liu, J. & Bernhardt, E. S. (2011). More than the ions: the effects of silver nanoparticles on Lolium multiflorum. Environmental Science & Technology, 45(6), 2360-7.
35
Zakaria, R. A., Hour, M. H. & Zare, Z. (2013). Callus production and regeneration of the medicinal plant Papaver orientale. African Journal of Biotechnology, 31(54), 11152-6.
36
Zhao, J., Davis, L. C. & Verpoorte, R. (2005). Elicitor signal transduction leading to production of plant secondary metabolites. Biotechnology Advances, 23(4), 283-333.
37
Ziegler, J., Facchini, P. J., Geißler, R., Schmidt, J., Ammer, C., Kramell, R., Voigtländer, S., Gesell, A., Pienkny, S. & Brandt, W. (2009). Evolution of morphine biosynthesis in opium poppy. Phytochemistry, 70(15), 1696-707.
38
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین ترکیبپذیری عمومی و خصوصی برای عملکرد علوفه و صفات زراعی یونجه (Medicago sativa L.) در تلاقی دیآلل
از جمله مهمترین هدفهای برنامههای بهنژادی یونجه، بهبود عملکرد علوفه و اجزای آن است. هشت تودۀ محلی یا بومجور (اکوتیپ) و رقم یونجه از مناطق مختلف آب و هوایی ایران و یک رقم خارجی برای بررسی ترکیبپذیری عمومی و خصوصی از نظر صفات، عملکرد علوفۀ خشک، ارتفاع، شمار ساقه، سرعت رشد دوباره و نسبت برگ به ساقه در یک طرح دی آلل 9 × 9 یکسویه بررسی شدند. در پاییز سال 1392، 36 دورگ F1 به همراه نه والد آنها در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار، در مزرعۀ تحقیقاتی مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ نهال و بذر کرج کشت شدند. نتایج تجزیهوتحلیل دیآلل بر پایۀ روش دو از مدل B گریفینگ برای دو سال زراعی آزمایش (1394-1392) نشان داد، تفاوت معنیداری از نظر اثر ترکیبپذیری عمومی و خصوصی برای همۀ صفات وجود دارد. همچنین اثر متقابل ترکیبپذیری عمومی و خصوصی با سال برای صفت عملکرد مادۀ خشک و اثر متقابل ترکیبپذیری عمومی با محیط برای صفت نسبت برگ به ساقه مشاهده شد. نتایج این تحقیق نشان داد، دورگ (هیبرید)های قهاوند × نیکشهری و مهاجران × سیلوانه ترکیبپذیری خصوصی مثبت و معنیداری برای عملکرد مادۀ خشک علوفه و سرعت رشد دوباره دارند. درحالیکه دورگ کوزره × یزدی افزون بر صفات عملکرد مادۀ خشک، ارتفاع و سرعت رشد دوباره، برای صفت نسبت برگ به ساقه نیز ترکیبپذیری خصوصی مثبت و معنیداری نشان داد. نتایج این بررسی نشان داد، امکان بهبود عملکرد یونجه و دیگر صفات از راه تلاقی بین بومجورهای یونجه وجود دارد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64372_a940ed92190b1a4c4d2d7c84431b39f3.pdf
2017-11-22
637
646
10.22059/ijfcs.2017.207796.654118
دیآلل
ترکیبپذیری عمومی و خصوصی
صفات زراعی
یونجه
ویدا
قطبی
vida.ghotbi@modares.ac.ir
1
دانشجوی دکتری، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران
AUTHOR
حمید
دهقانی
dehghanr@modares.ac.ir
2
دانشیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران
LEAD_AUTHOR
رجب
چوکان
rchoukan@spii.ir
3
استاد، مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ نهال و بذر، کرج
AUTHOR
احمد
معینی
moieni@modares.ac.ir
4
دانشیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران
AUTHOR
Al Lawati, A. H., Pierce, C. A., Murray L. W. & Ray, I. M. (2010). Combining ability and heterosis for forage yield among elite alfalfa core collection accessions with different fall dormancy responses. Crop Science, 50, 150-158.
1
Anonymous. (2015). Agricultural Statistics Report. Vol. 1., Field Crops. Vol. 1. Statistics and IT Bureau. Jahad e Keshavarzi Ministry Publication, Tehran, Iran. (in Farsi)
2
Bhandari, H. S., Pierce, C. A., Murray, L. W. & Ray, I. M. (2007). Combining abilities and heterosis for forage yield among high yielding accessions of the alfalfa core collection. Crop Science, 47, 665-673.
3
Bingham, E. T., Groose, R. W., Woodfield, D. R. & Kidwell, K. K. (1994). Complementary gene interactions in alfalfa are greater in autotetraploids than diploids. Crop Science, 34, 823-829.
4
Brummer, E. C. (1999). Capturing heterosis in forage crop cultivar development. Crop Science, 39, 943-954.
5
Carelli, M., Scotti, C., Gnocchi, G., Kertikova, D., Ferrari, L. & Gaudenzi, P. (2006). Genetic diversity in breeding for narrow genetic based cultivar models in alfalfa. In Proceedings of the XXVI EUCARPIA fodder crops and amenity grasses section and XVI Medicago spp., (pp. 75–79). Group Joint Meeting Breeding and Seed Production for Conventional and Organic Agriculture, Perugia, 3-7 September 2006.
6
Griffing, B. (1956). Concept of general and specific combining ability in relation to diallel crossing systems. Australian Journal of Biological Sciences, 9, 463-493.
7
Guines, F., Julier, B., Ecalle, C. & Huyghe, C. (2002). Genetic control of quality traits of lucerne (Medicago sativa L.). Australian Journal of Agricultural Research, 53, 401-407.
8
Hill, R. R. Jr. (1983). Heterosis in population crosses of alfalfa. Crop Science, 23, 48-50.
9
Hill, R. R., Jr., Shenk, J. S. & Barnes, R. F. (1988). Breeding for yield and quality. P. 809-825. In: Hanson, A., Barnes, A. D. and Hill, K. R. R. (ed.) Alfalfa and alfalfa Improvement. Agronomy Monograph. 29. ASA, CSSA, and SSSA, Madison, WI.
10
Holland, J. B. & Bingham, E. T. (1994). Genetic improvement for yield and fertility of alfalfa cultivars representing different eras of breeding. Crop Science, 34, 953-957.
11
Julier, B., Huyghe, C. & Ecalle, C. (2000). Within and among–cultivar genetic variation in alfalfa: forage quality, morphology and yield. Crop Science, 40, 365-369.
12
Katepa-Mutondwa, M. F., Christie, R. B. & Michaels, E. T. (2002). An improved breeding strategy for autotetraploid alfalfa (Medicago sativa L.). Euphytica, 123, 139-146.
13
Katić, S., Mihailoviċ, V., Miliċ, D., Karagiċ Đ. & Pataki, I. (2004). Variability in dry matter yield and morphological characteristics of lucerne cultivars depending on geographic origin. Grassland science in Europe, 9, 407-409.
14
Madril, C. M., Pierce, C. A. & Ray, I. M. (2008). Heterosis among hybrids derived from genetically improved and unimproved alfalfa germplasm. Crop science, 48(5), 1787-1792.
15
Michaud, R., Lehman, W. F. & Rumbaugh, M. D. (1988). World distribution and historical development. In A. A. Hanson, D. K. Barnes & R. R. Hill (Ed.) Alfalfa and alfalfa improvement. (pp. 26–82) ASA, CSSA, SSSA, Madison, WI
16
Milić, D., Katić, S., Mikić, A. & Karagić, D. (2010). Heterotic response from a diallel analysis between alfalfa cultivars of different geographic origin. In H. Cristian (Ed.) Sustainable use of genetic diversity in forage and turf breeding. (82: pp. 551–556) Springer, New York.
17
Milić, D., Katić, S., Miklić, A., Karagić, D., Gvozdanović–Varga, J., Petrovicć, S. & Boć anski, J. (2011). Genetic control of agronomic traits in alfalfa (M. sativa ssp. sativa L.). Euphytica, 182, 25-33.
18
Riday, H. & Brummer, E. C. (1999). Heterosis in alfalfa Medicago sativa subsp. sativa x subsp. falcata. http://www.naaic.org/ TAG/TAGpapers/riday/riday.html. Accessed 09 Oct 1999
19
Riday, H. & Brummer, E. C. (2002). Forage yield heterosis in alfalfa. Crop Science, 42, 716-723.
20
Riday, H. & Brummer, E. C. (2004). Morphological variation of Medicago sativa subsp. falcata genotypes and their hybrid progeny. Euphytica, 138, 1-12.
21
Riday, H., Brummer, E. C. & Moore, K. J. (2002). Heterosis of forage quality in alfalfa. Crop Science, 42, 1088-1093.
22
Riday, H., Brummer, E. C., Campbell, T. A., Luth, D. & Cazcarro, P.M. (2003). Comparations of genetic and morphological distance with heterosis between Medicago sativa subsp. sativa and subsp. falcata. Euphytica, 131, 37-45.
23
Rotili, P. & Zannone, L. (1974). General and specific combining ability in alfalfa at different levels of inbreeding and performance of second generation synthetics measured in competitive conditions. Euphytica, 23, 569-577.
24
Rotili, P., Gnocchi, G., Scotti, C. & Zannone, L. (1999). Some aspects of breeding methodology in alfalfa. http://www.naaic.org/TAG/TAGpapers/rotili/rotilipapers.html
25
Şakiroğlu, M. & Brummer, E. C. (2007). Little Heterosis between Alfalfa Populations Derived from the Midwestern and Southwestern United States. Crop Science, 47, 2364-2371.
26
SAS Institute. (2008) SAS system for Windows: Release 9.2. SAS
27
Scotti, C. & Brummer, E. C. (2010). Creation of heterotic groups and hybrid varieties. In C. Huyghe (Ed.) Sustainable use of genetic diversity in forage and turf breeding. (75: pp. 509–518) Springer, New York.
28
Scotti, C., Carelli, M., Calderini, O., Panara, F. & Gaudenzi, P. (2011). Agronomic and molecular analysis of heterosis in alfalfa. Plant Genetic Resources: Charecterization and Utilization, 9, 288-290.
29
Segovia-Leirma, A., Murray, L. W., Townsend, M. S. & Ray, I. M. (2004). Population-based diallel analyses among nine historically recognized alfalfa germplasms. Theoretical and Applied Genetics, 109, 1568-1575.
30
Sriwatanapongse, S. & Wilsie, C. P. (1968). Intra- and intervariety crosses of Medicago sativa L. and Medicago falcata L. Crop Science, 8, 465-466.
31
Tucak, M., Popović, S., Čupić, T., Španić, V., Šimić, B. & Meglič, V. (2012). Combining abilities and heterosis for dry matter yield in alfalfa diallel crosses. Romanian Agricultural Research, 29, 72-77.
32
Tysdal, H. M. & Kiesselbach, T. A. (1944). Hybrid alfalfa. Journal of the American Society of Agronomy, 36, 649-667.
33
Veronesi, F., Huyghe, C. & Delgado, I. (2006). Lucerne breeding in Europe: results and research strategies for future developments. In J. Lloveras, A. Gonzalez-Rodriguez, O. Vazquez-Yanez, J. Pineiro., O. Santamaria, L. Olea & M. J. Poblaciones (Ed.) Sustainable grassland productivity. (11:pp. 232–242.) Eds. Proceedings on the 21st General Meeting of the European Grassland Federation. Badajoz, Spain. Grassland Science in Europe, 3–6 April 2006.
34
Woodfield, D. R. & Bingham, E. T. (1995), Improvement in two allele autotetraploid populations of alfalfa explained by accumulation of favorable alleles. Crop Science, 35, 988-994.
35
Zhang, Y., Kang, M. S. & Lamkey, R. R. (2005). DIALLEL-SAS05: a comprehensive program for Griffing’s and Gardner- Eberhart analyses. Agronomy Journal, 97, 1097-1106.
36
ORIGINAL_ARTICLE
گروهبندی شاخصهای تحمل و واکنش نژادگانهای نخود تیپ کابلی و دسی نسبت به تنش خشکی
در این بررسی واکنش 64 نژادگان (ژنوتیپ) نخود به تنش خشکی در ایستگاه تحقیقاتی دیم کوهین (دانشگاه تهران) با آزمایشی در قالب طرح لاتیس ساده 8×8 در دو شرایط تنش و بدون تنش ارزیابی شدند. بر پایۀ نتایج بهدستآمده از نظر شاخصهای واکنش خشکی MP، GMP، HARM، STI، YI، K1STI و K2STI نژادگان شمارۀ 51، از لحاظ شاخصهای SSI، YSI، YR و RDI، نژادگان شمارۀ 18، از نظر شاخصهای TOL، ATI، SSPI و DRI نژادگان شمارۀ 16 و از لحاظ شاخصهای DI و SNPI نژادگان شمارۀ 42 بهعنوان متحملترین نژادگانها مشخص شد. شاخصهای MP، GM، HARM، STI، TOL، YI، DI، ATI، SSPI، SNPI، K1STI و K2STI در هر دو شرایط بدون تنش و تنش همبستگی قوی و مثبتی را با عملکرد در شرایط بدون تنش و تنش نشان داده و برای گزینش نژادگان متحمل و حساس معرفی شدند. تحلیل عاملی در عامل اول با توجیه 57/62 درصد تغییر، بیشترین نمره را به نژادگانهای 51، 60، 53 و 52 (منطقۀ A) بهعنوان متحملترین، کمترین نمره را به نژادگانهای 32، 27، 24 و 62 (منطقۀ D) بهعنوان حساسترین نژادگان داده و عامل دوم با توجیه 28/33 درصد از تغییر، بیشترین نمره را به نژادگانهای 29، 51، 60 و 28 (منطقۀ A) و کمترین نمره را به نژادگانهای 18، 16، 42، 24 و 64 (منطقۀ C و D) داد. بر پایۀ تجزیۀ خوشهای شاخصهای واکنش به خشکی، نژادگانها در سه خوشه گروهبندی شدند، بهطوریکه نژادگانهای متحمل در خوشۀ 3، حساس در خوشۀ 2 و بینابین در خوشۀ 1 دستهبندی قرار گرفتند.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64373_f5bee2da199a738406b965522d4c1743.pdf
2017-11-22
647
664
10.22059/ijfcs.2017.211235.654149
تنش خشکی
شاخصهای واکنش خشکی
عملکرد دانه
نخود کابلی
خدابخش
گودرزوند چگینی
kchegini@ut.ac.ir
1
دانشجوی سابق دکتری، ژنتیک بیومتری، دانشگاه زنجان
AUTHOR
رضا
فتوت
r_fotovat@znu.ac.ir
2
استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه زنجان
AUTHOR
محمد رضا
بی همتا
mrghanad@ut.ac.ir
3
استاد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
منصور
امیدی
momidi@ut.ac.ir
4
استاد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
علی اکبر
شاه نجات بوشهری
ashah@ut.ac.ir
5
استاد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
Aghaei, M., Mirakhorli, Vaezi, A. Sh. & Khuhpaigani, A. (2005). Potential of genetic diversity in Iranian Chickpea collection. Of the first Pulses congress, 2005. Ferdosi university of Mashhad
1
Ahmad, F., Gaur, P. & Croser, J. (2005). Chickpea (Cicer arietinum L.). In: Singh R., Jauhar P. (eds.). Genetic Resources, Chromosome Engineering and Crop Improvement-Grain Legumes, CRC Press USA, 185-214.
2
Ahmadi, J., Zeinaly Khanghah, H., Rostamy, M. A. & Chogan, R. (2000). Study of drought tolerance indices and biplot method in eight corn hybrids. Iranian Journal of Agriculture Science, 31, 513-523. (in Farsi)
3
Bidinger, F. R., Mahalakshami, V. & Rao, G. D. P. (1987). Assessment of drought resistance in pearel millet (Pennisetum americanum L.). II. Estimation of genotype response to stress. Australian Journal of Agricultural Research, 38, 49-59.
4
Blum, A. (1988). Plant Breeding for Stress Environments. CRC Press, Boca Raton, Florida, USA. pp 38-78
5
Bouslama, M. & Schapaugh, W. T. (1984). Stress tolerance in soybean. Part 1: Evaluation of three screening techniques for heat and drought tolerance. Crop Science, 24, 933-947.
6
Boyer, J. S. (1982). Plant productivity and environment. Journal of Science, 218(4571), 443-448.
7
Clark, J. M. R., Depauw, M. & Ownley-Smith, T. F. (1992). Evaluation of methods for quantification of drought tolerance in wheat. Journal of Crop Science, 32, 723-728.
8
Eivazi, A., Taghikhani, H., Shiralizadeh, S. H., Rezaei, M. & Mousavi Anzabi, S. H. (2012). Evaluation of response of chickpea genotypes to water deficit at different growth stages by using drought tolerance indices. Iranian Journal of Pulses Research, 3(1), 81-92. (in Farsi)
9
Farshadfar, E. & Sutka, J. (2002). Multivariate analysis of drought tolerance in wheat substitution lines. Cereal Research Communications, 31, 33-39.
10
Farshadfar, E. A., Zamani, M. R., Matlabi, M. & Emam-Jome, E. E. (2001). Selection for drought resistance chickpea lines. Iranian Journal of Agriculture Science, 32(1), 65-77. (in Farsi)
11
Fernandez, G. C. J. (1992). Effective selection criteria for assessing plant stress tolerance. pp. 257-270. In: Kuo, C. G. (ed.) Proceedings of a Symposium on Adaptation of Vegetables and other Food Crops in Temperature and Water Stress. AVRDC Publications, Tainan, Taiwan.
12
Fischer, R. A. & Maurer, R. (1978). Drought resistance in spring wheat cultivars. I. Grain yield responses. Australian Journal of Agricultural Research, 29, 897-912.
13
Fischer, R. A. & Wood, T. (1979). Drought resistance in spring wheat cultivars III. Yield association with morphological traits. Australian Journal of Agriculture Research, 30, 1001-1201
14
Ganjali, A., Bagheri, A. & Porsa, H. (2009). Evaluation of chickpea (Cicer arietinum L.) germplasm for drought resistance. Iranian Journal of Agricultural Sciences, 7(1), 183-194. (in Farsi)
15
Ganjali, A., Kafi, A., Bagheri, A. & Shahriyari, F. (2005). Screening for drought tolerance in chickpea genotypes (Cicer arietinum L.). Iranian Journal of Agricultural Sciences, 3(1), 103-122. (in Farsi)
16
Gavuzzi, P., Rizza, F., Palumbo, M., Campaline, R. G., Ricciardi, G. L. & Borghi, B. (1997). Evaluation of field and laboratory predictors of drought and heat tolerance in winter cereals. Journal of Plant Science, 77, 523-531.
17
Gholinezhad, E., Darvishzadeh, R. & Bernousi, I. (2014). Evaluation of Drought Tolerance Indices for Selection of Confectionery Sunflower (Helianthus annuus L.) Landraces under Various Environmental Conditions. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici, 42(1), 187-201.
18
Ghorbani, T., Cheghamirza, K., Bardideh, K and Basiri Shoar, P.2013. Recognition and determination of related traits importance with seed yield in chickpea (Cicer arietinum). Plant breeding science. Volume 68. Pp. 15-24
19
Godschalk, E. B. & Timothy, D. H. (1988). Factor and principal component analyses as alternative to index selection. Theorical and Applied Genetetics, 76, 352-360.
20
Golestani-Araghi, S. & Assad, M. T. (1998). Evaluation of four screening techniques for drought resistance and their relationship to yield reduction ratio in wheat. Euphytica, 103, 293-299.
21
Guttieri, M. J., Stark, J. C., Brien, K. & Souza, E. (2001). Relative sensitivity of spring wheat grain yield and quality parameters to moisture deficit. Journal of Crop Science, 41, 327-335.
22
Jahansuz, M. R., Naghavi, M. R. & Dolati Tapeh Rasht, M. (2004). A Study of Relationships between Different Traits in White and Black Chickpea. Iranian Journal of Agriculture Science, 35(3).
23
Johansen, C., Krishnamurthy, L., Saxena, N. P. & Sethi, S. C. (1994). Genotypic variation in moisture response of chickpea grown under line-source sprinklers in a semi-arid tropical environment. Field Crops Research, 37, 103-112.
24
Kargar, M. A., Ghanadha, M. R., Bozorgipour, A. A., Atari, Kh. A. & Babai, H. R. (2004). Evaluation of drough resistance indices in some soybean genotypes at restricted condition. Iranian Journal of Agriculture Science, 35, 129-142. (in Farsi)
25
Khan, F. U. & Mohammad, F. (2016). Application of stress selection indices for assessment of nitrogen tolerance in wheat (Triticum aestivum L.). The Journal of Animal & Plant Sciences, 26(1), 201-210.
26
Khan, I. A., Imtiaz, S. & Malik, B. A. (1991). Selection of diverse parents of chickpea (Cicer arietinum L.) by multivariate analysis and degree of heterosis of their F1 hybrids. Euphytica, 51(3), 227-233.
27
Kirigwi, F. M., Van Ginkel, M., Trethowan, R., Sears, R. G., Rajaram, S. & Paulsen, G. M. (2004). Evaluation of selection strategies for wheat adaptation across water regimes. Euphatica, 135, 361-371.
28
Kristin, A. A., Serna, R. R., Perez, F. I., Enriquez, B. C., Gallegos, J. A. A., Vallejo, P. R., Wassimi, N. & Kelley, J. D. (1997). Improving common bean performance under drought stress. Crop Science, 37, 43-50.
29
Lan, J. (1998). Comparison of evaluating methods for agronomic drought resistance in crops. Acta Agriculturae Boreali-occidentalis Sinica, 7, 85-87.
30
Langer, I., Freyand, K. J. & Bailey, T. (1979). Associations among productivity, production response and stability indices in oats varieties. Euphytica, 28, 17-24.
31
Moghaddam, A. & Hadizadeh, M. H. (2002). Response of corn (Zea mays L.) hybrids and their parental lines to drought using different stress tolerance indices. Seed Plant Production Journals, 18(3), 255-272. (in Farsi with English Abstract)
32
Mohammad Alipour Yamchi, H., Bihamta, M. R., Peighambari, S. A. & Naghavi, M. R. (2011). Evaluation of drought tolerance in Kabuli type chickpea genotypes. Iranian Journal of Sees and Plant Breeding, 3, 393-409. (in Farsi)
33
Moosavi, S. S., Yazdi Samadi, B., Naghavi, M. R., Zali, A. A., Dashti, H. & Pourshahbazi, A. (2008). Introduction of new indices to identify relative drought tolerance and resistance in wheat genotypes. Desert, 12, 165-178.
34
Naeemi, M., Akbari, Gh. A., Shirani Rad, A. H., Modares Sanavi, S. A. M., Sadat Nuri, S. A. & Jabari, H. (2008). Evaluation of drought tolerance in different Canola cultivars based on stress evaluation indices in terminal growth duration. Electronic Journal of Crop Production, 1(3), 83-98. (in Farsi)
35
Nakhaei, A., Abbasi, M. R., Arazmjoo, E. & Azari, M. A. (2014). Evaluation of terminal drought tolerance in Foxtail millet (Setaria italica) accessions. Iranian Journal of Crop Sciences, 16(1), 25-38. (in Farsi)
36
Narayan, R. K. J. & Macefield, A. J. (1976). Adaptive responses and genetic divergence in a world germplasm collection of chick pea (Cicer arietinum L.). Theoretical and applied genetics, 47(4), 179-187.
37
Pourdad, S. S., Alizadeh, K. H., Azizinezhad, R., Shariati, A., Askandari, M., Khiyavi, M. & Ezatollahe, N. (2008). Evaluation of different safflowers in different regions. Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources, 12(45), 403-415. (in Farsi with English abstract)
38
Pouresmael, M., Akbari, M., Vaezi, S. & Shahmoradi, S. (2009). Effects of drought stress gradient on agronomic traits in kabuli chickpea core collection. Iranian Journal of Crop Sciences, 11(4), 307-324. (in Farsi)
39
Quisenberry, J. E. (1982). Breeding for drought resistance and plant water use efficiency. Pp. 193-212. In: Christiansen MN and Lewis CP (eds). Breeding plants for less favorable environments. Wiley Intersciences. New York, USA.
40
Ramirez, V. P. & Kelly, J. D. (1998). Traits related to drought resistance in common bean. Euphytica, 99, 127-136
41
Rosielle, A. A. & Hamblin, J. (1981). Theoretical aspects of selection for yield in stress and non-stress environments. Crop Science, 21 943-946.
42
Safari, S., Dehghan, H. & Chogan, R. (2007). Evaluation of corn inbred lines for water resistance based on resistance indices and biplot method. Iranian Journal of Agriculture Science, 38(2), 215-228.
43
Saxena, N. P., Saxina, M. C. & Johansen, S. M. (1996). Adaptation of chickpea in the west Asia and North Africa region. ICARDA publication.
44
Schneider, K. A., Rosales-Serna, R., Ibbara-Perez, F., Cazares-Enriquez, B., Acosta-Gallegos, J. A., Ramirez-Vallejo, P., Wassimi, N. & Kelly, J. D. (1997). Improving common bean performance under drought stress. Crop Science, 37, 43-50.
45
Singh, K. B. (1997). Chickpea (Cicer arietinum L.). Field Crops Research, 53,161-170
46
Singh, S. P., Teran, H. & Gutierez, J. A. (2001). Registration of SEA 5 and SEA 13 drought tolerant dry bean germplasm. Crop Science, 41, 276-277.
47
Taghvaei, M., Chaeichi, M., Sharifzadeh, F. & Ahmadi, A. (2007). Evaluation of drought stress on yield and yield components and drought tolerance indices in hull-less and coated barley cultivars. Iranian Journal of Agricultural Science, 38(1), 67-78. (in Farsi with English Abstract)
48
Zahravi, M. (2009). Evaluation of genotypes of wild barley (Hordeum spontaneum) based on drought tolerance indices.Seed and Plant Improvment Journal, 25(4), 533-549. (in Farsi with English abstract)
49
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع ژنتیکی عملکرد دانه و زیستتودۀ نژادگانهای عدس (Lens culinaris)
برای تعیین تنوع ژنتیکی صفات و درک روابط همبستگی بین هفت صفت کمی عدس بهمنظور یافتن نژادگانی (ژنوتیپ هایی) با ظرفیت عملکرد بالا، 760 نژادگان (نمونۀ) موجود در کلکسیون عدس طرح حبوبات پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران (کرج)، در سال زراعی 93-1392 ارزیابی شدند. فراسنجه (پارامترهای) آماری صفات در جامعه اصلی شامل میانگین، واریانس، انحراف معیار، کمینه و بیشینه و دامنۀ تغییرات محاسبه شد. صفات مورد بررسی عبارت از زمان 50درصد گلدهی، تاریخ 90درصد رسیدگی فیزیولوژیک، ارتفاع بوته، وزن هزاردانه، عملکرد زیستتوده (بیوماس)، عملکرد دانه و شاخص برداشت بودند. در هر بلوک از رقم اصلاحشدۀ زیبا بهعنوان شاهد استفاده شد. مقادیر فراسنجههای آماری صفات نشان داد، صفت زیستتودۀ کل (وزن کل بوته) تنوع چشمگیری در بین نمونهها داشت و پس از آن شاخص برداشت و وزن هزاردانه بالاترین دامنۀ تغییرات را نشان دادند. نتایج بهدستآمده از همبستگی سادۀ پدیدگانی (فنوتیپی)، رگرسیون چندگانۀ گامبهگام نیز نشان داد، این سه صفت بیشترین تأثیر را بر عملکرد دانۀ عدس داشتند. بین شمار روز از کاشت تا 50درصد گلدهی و نیز میانگین ارتفاع بوته رابطۀ مثبت و معنیدار با عملکرد دانه در جامعه مشاهده شد، که نشانگر عملکرد بیشتر عدس در نمونههای دیر گل ده و پابلند بود. برای روشن شدن روابط گروهی بین متغیرها تجزیه به مؤلفههای اصلی انجام گرفت، که نتایج تجزیۀ هفت صفت مورد بررسی را در سه مؤلفه با توجیه 70درصد تغییرپذیری گروهبندی کرد. همچنین، برای اندازهگیری و تعیین فاصلۀ ژنتیکی بین نژادگانهای عدس، به کمک تجزیۀ خوشه ای (کلاستر) چهار خوشهبندی تشخیص داده شد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64374_e368ad402815c481e4e3acaab983d58e.pdf
2017-11-22
665
671
10.22059/ijfcs.2017.208181.654121
تنوع ژنتیکی
عملکرد دانه
فراسنجههای آماری
معیارهای گزینش
نمونههای عدس
ناصر
مجنون حسینی
mhoseini@ut.ac.ir
1
استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
LEAD_AUTHOR
محمد رضا
نقوی
mnaghavi@ut.ac.ir
2
استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
Aghaei, M., Shahab, J., Zeynali, M. & Talei, H. A. (2004). Genetic diversity of population of lentil and its relation to geographical distribution. Journal of Agronomy Science, 6(4), 402-414. (in Farsi)
1
Bicer, B.T. & Şakar, D. (2008). Heritability and path analysis of some economical characteristics in lentil. Journal of Central European Agriculture, 9(1), 191-196.
2
Cubero, J. I. (1981(. Origin, taxonomy and domestication. In: C.Webb and G.C. Hawtin (Eds.), Lentils) pp15-38(. Commonwealthh Agricultural Bureaux, Slough, England.
3
Ferguson, M. & Erskine, W. (2001). Lentils (Lens culinaris L.). In: Maxted, N. and S.J. Bennett., Plant Genetic Resources of Legumes in the Mediterranean. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, Netherlands, pp. 132-157.
4
Gupta, R., Begum, S. N., Islam M. M. & Alam, M. S. (2012). Characterization of lentil (Lens culinaris M.) germplasm through phenotypic marker. Jounral of Bangladesh Agricultural University, 10(2), 197-204.
5
Iran Agriculture Statistics. (2012). from: www.nationmaster.com/country- info/profiles/Iran/Agriculture.
6
Karadavut, U. (2009). Path analysis for yield and yield components in lentil (Lens culinaris Medik.). Turkish Journal of Field Crops, 14(2), 97-104.
7
Khatab, S. A. M. (1999). Association and path analysis in lentil under different irrigation regimes. Euphytica, 20(1-2), 13-25.
8
Kumar, N., Chahota, R. K., & Sood, B. C. (2009). Component analysis for seed yield and yield traits in microsperma×macrosperma derivates of lentil (Lens culinaris Medik.). Agriculture Science Digest, 29(3), 163-168.
9
Ladizinsky, G. & Van Oss, H. (1984). Genetic relationships between wild and cultivated Vicia ervilia (L.) Willd. Botanical Journal of the Linnean Society, 89(2), 97-100.
10
Luthra, S. K. & Sharma, P. C. (1990). Correlation and path analysis in lentils. Lens Newsletter, 10, 22-24.
11
Majnoun Hosseini, N. (2008). Grain legume production (4th ed.) Jihad-Daneshghahi Publishing Organization, Tehran. Pp. 283. (in Farsi)
12
Rajput, M. A. & Sarwar, G. (1989). Genetic variability, correlation studies and their implication in selection of high yielding genotypes in lentil. Lens Newsletter, 16, 5-8.
13
Ramgiry, S. R., Paliwal, K. K. & Tomar, S. K. (1989). Variability and correlations of grain yield and other quantitative characters in lentil. Lens Newsletter, 16, 19-21.
14
Rasul, M. G., Newaz, M. A. & Nahar, M. S. (1990). Correlation coefficient and path analysis in lentil genotypes. Bangladesh Journal of Plant Breeding and Genetics, 3(1-2), 41-46.
15
Rechinger, K. H. (1979(. Papilionaceae I -Vicieae. Flora Iranica No. 140. Akademisch Drnk-U. Verlagsansatalt. Graz-Austria.
16
Saman, S. M., Mozafari, J., Vaezi, Sh., Abbasi-Mogahddam, A. & Mostafaei, H. (2012). Genetic diversity of pod and seed characteristics in lentil genotypes of Iran. Iranian Journal of Crop Science, 14(54), 171-182.
17
Sultana, T., Ghafoor, A. & Ashraf, M. (2005). Genetic divergence in lentil genotypes for botanical descriptors in relation with geographic origin. Pakistan Journal of Botany, 37(1), 61-69.
18
Tyagi, S. D. & Hafiz Khan, M. (2011). Correlation, path-coefficient and genetic diversity in lentil (Lens culinaris Medik) under rainfed conditions. International Research Journal of Plant Science, 2(7), 191-200.
19
Vir, O. M., Gupta, V. P. & Vir, O. (1998). Variation in macrosperma×microsperma derived gene pool of lentil under low and high fertility levels of soil at subtropical climate of Himalayas. Indian Journal of Agricultural Research, 32(3), 181-184.
20
Vojdani, P. & Moallemi, M. (1993). Variation and correlation of some traits with some lentils and climatic regions. Plant Seed Journal, 9(1, 2), 1-9. (in Farsi)
21
Yazdi Samadi, B., Majnoun Hosseini, N. & Peighambari, S. A. (2004). Evaluation of cold hardiness in lentil genotypes (Lens culinaris medik.). Seed and Plant Improvement Journal, 20(1), 23-37.
22
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر جهش ژنتیکی پرتوهای لیزر روی صفات زراعی و DNA در نخود زراعی (Cicer arietinum L.)
تنوعی که در موجودات زنده اعم از گیاه و جانور وجود دارد ناشی از جهش (موتاسیون)های طبیعی در سطح DNA و درپی نوترکیبی و انتخاب است که در طی میلیونها سال رخ داده است. هدف از انجام این آزمایش بررسی امکان ایجاد تغییر ژنتیکی در گیاه نخود با استفاده از پرتوهای لیزر است. پرتوهای لیزر با نفوذپذیری بالایی که دارند باعث ایجاد تغییرات ریختشناختی (مرفولوژیک) و فیزیولوژیک در گیاهان میشوند. در این آزمایش پرتوهای لیزر YAGND: با طولموج 530 نانومتر، لیزر هلیوم نئون با طولموج 632 و لیزر UV با طولموج 308 نانومتر در مدتزمانهای مختلف روی بذر نخود رقم ILC482 بهکار برده شد. پس از پرتوتابی و کاشت بذرها (M1)، تا زمان برداشت صفات: روز تا جوانهزنی، گلدهی و غلافدهی، درصد جوانهزنی، شمار ساقههای دارای غلاف، شمار کل غلافها، شمار غلافهای خالی و پر، شمار بذر در بوته، وزن صددانه، ارتفاع بوته، وزن خشک بوته و عملکرد دانه اندازهگیری شد. بذرهای تولیدی از تیمارهای پرتوتابیشده همراه با شاهد در نسل بعد (M2) کشت و صفات بالا دوباره اندازهگیری شدند. نتایج در نسل اول نشان داد، در سه صفت (ارتفاع بوته، شمار غلافهای خالی و وزن خشک) تفاوتی بین شاهد و تیمارهای پرتوتابی شده وجود نداشت. اما در دیگر صفات در تیمارهای مختلف تغییراتی نسبت به شاهد در نسل اول و دوم بهوجود آمد. بهطورکلی پرتوتابی موجب کاهش میزان صفات نسبت به شاهد شد. در ضمن بررسیهای مولکولی رخداد جهش را در سطح DNA توسط اشعۀ لیزر اثبات کرد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64375_5b70f37f619bc7be8aabc3d9e74a0e6a.pdf
2017-11-22
673
683
10.22059/ijfcs.2017.211865.654154
جهش
لیزر
نخود
DNA
ملیحه
یوسفی
ma_yousefi@yahoo.de
1
دانشجوی کارشناسی ارشد اصلاح نباتات، دانشگاه ولیعصر(عج) رفسنجان
AUTHOR
حسین
دشتی
dashti@vru.ac.ir
2
استاد، گروه ژنتیک و تولید گیاهی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ولیعصر(عج) رفسنجان
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
بی همتا
mrghanad@ut.ac.ir
3
استاد گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
محمد
خانزاده
khanzadeh@vru.ac.ir
4
استادیار گروه فیزیک، دانشگاه ولیعصر(عج) رفسنجان
AUTHOR
Amy, R. L. & Storb, R. (1965). Selective mitochondrial damage by a ruby laser. Science, 150, 756-757.
1
Berns, M. W. (1998). Laser scissor and tweezer. Science American, 278, 63-7.
2
Berns, M. W., Olson, R. S. & Rounds, D. E. (1969). In vitro production of chromosomal lesions using an argon ion laser microbeam. Nature, 221, 74-75.
3
Bessis, M., Gires, F., Mayer, G. & Normarski, G. (1962). Irradiation des organites cellulaires a laide dun laser a rubis.Grade Academic Science, 225, 1010-1012.
4
Bhat, T. A., Sharma, M. & Anis, M. (2007). Comparative analysis of mitotic aberrations induced by diethyl sulphonate (DES) and sodium azid (SA) in Fabaceae (Vicia faba L.). Asian Journal of Plant Sciences, 6, 1051-1057.
5
Brown, J. & Caligari, P. (2008). An introduction to plant breeding. Blackwell Publishing Limitd, Oxford, UK.
6
Chen, Y., Yue, M. & Wang, X. (2005). Influence of He-Ne laser irradiation on seeds thermodynamic parameters and seedlings growth of the indogotica. Plant Science, 168, 601-606.
7
Ehsanpour, A. A., Madani, S. & Hoseini, M. (2007). Detection of somaclonal variation in potato callus induced by uv-c radiation using rapd-pcr. Gen.Appl.Plant physiology 33 , 3-11
8
Farsi, M. & Bagheri, A. (2009). Principles of plant breeding. Mashhad University Jihad Publications. (in Farsi)
9
Ferdosizadeh, L. Sadat-Noori, S. A., Zare, N. & Saghafi, S. (2013). Assessment of laser pretreatments on germination and yield of wheat (Triticum aestivum L.) under salinity stress. World Journal of Agricultural Research, 1, 5-9.
10
Food and Agriculture Organization. (2010). Food outlook, global market analysis in FAO. Retrieved May 22, 2012. From: http://www.fao.food outlook.com
11
Habibpour mehranan, F., Maali, R., Zynali, H. & Dashtaki, M. (2014). Morphological variations black chickpeas by using multivariate analysis methods. Journal of Iran Agronomy Researchs, 1, 23-30. (in Farsi)
12
Khoddamzadeh, A. A., Sinniah, U. R., Kadir M. A., Kadzimin, S. B., Mahmood, M. & Sreeramanan, S. (2010). Detection of somaclonal variation by random amplified polymorphic DNA analysis during micropropagation of Phalaenopsis bellina (Rchb.f.) Christenson .African Journal of Biotechnology, 9(40), 6632-6639.
13
Kiong, A., Lai, A., Hussein, S. & Harun, A. R. (2008). Physiological responses of Orthosiphon stamineus plantlets to gamma irradiation. Eurasion Journal of Sustainable Agriculture, 2, 135-149.
14
Koocheki, A. & Banayan Aval, M. (2007). Agriculture crops. Publications Jihad Mashhad University. (in Farsi)
15
Kumar, G. & Srivastava, P. (2010). Comparative radiocytological effect gamma rays and laser rays on Safflower. Rom Journal Plant Biological, 2, 105-111.
16
Majnoon Hosseini, N. (2008). Crop and cereal production. Jihad Publishing Tehran University. (in Farsi)
17
Milbourne, D., Meyer, R., Bradshaw, J. E., Barid, E., Bonar, N., Provan, J., Powell, W. & Waugh, R. (2010). Comparison of PCR-based marker system for the analysis of genetic relationship in cultivated Potato. Crop Breeding and Applied Biotechnology, 10, 204-210.
18
Mohammadi, S. A. & Prasanna, B. M. (2003). Analysis of genetic diversity in crop plant-silent statistical tools and considerations. Crop Science, 43, 1235-1248.
19
Murry, M. & Thompson, W. F. (1980). Rapid isolation of high molecular weight plant DNA. Nucleic Acid Res, 8, 4321-4325.
20
Muszynski, S. & Gadyszewska, B. (2008). Representation of He-Ne laser irradiation effect on radish seeds with selected germination indices. International Agrophysics, 22, 15-151.
21
Parsa, M. & Bagheri, A. (2008). Beans. Mashhad University Jihad Publications. (in Farsi)
22
Podlensy, J. (2002). Effect of irradiation on the biochemical changes in seeds and the accumulation of dry matter in the faba bean. International Agrophysics, 16, 209-213.
23
Poldlensy, J. & Stochmal, A. (2004). The effect of per-sowing laser light treatment on some biochemical and physiological processes in the seeds and plants of white lupine and faba bean. Acta Agrophysica, 4(1), 149-160.
24
Prevost, A. & Wilkinson, M. J. (1999). A new system of comparing PCR primers applied to ISSR fingerprinting of potato cultivars. Theoretical and Applied Genetics, 98, 107-112.
25
Ritambhara, Sh. & Girjesh, K. (2013). Biostimulating effect of laser beam on the cytomorphological aspects of Lathyrus sativus L. Annals of Plant Sciences, 141-147.
26
Rubio, J., Flores, F., Moreno, M. T., Cubero, J. I. & Gill, J. (2004). Effect of the erect/bushy habit, single/ double pod and late/ early flowering genes on yield and seed size and their stability in chickpea. Field Crops Research, 90, 255-262.
27
Rybinski, W. (2000). Influence of laser beams combined with chemomutagen (MNU) on the variability of traits and mutation frequency in spring barley. International Agrophysics, 15, 115-119.
28
Sacata, E., Demczuk, A., Grzys, E., Prosba-Biatczyk, U. & Szajsner, H. (2012). Impact of persowing laser irradiation of seeds on sugar beet properties. Agrophysics, 26, 295-300.
29
Sadrabadi Haghighi, R., Marashi, S. H. & Nasiri Mohalati, M. (2002). Principles of plant breeding farm. Publications Jihad Mashhad University. (in Farsi)
30
Starzycki, M., Rybinsk, W., Starzycka & E., Pszczota, J. 2005. Laser light as a physical factor enhancing rapseed resistance to blackleg disease. Acta Agrophysica, 5:441-446.
31
Weber, G., Monojembashi, S., Greulich, K. O. & Wolfrum, J. 1989. Uptake of DNA in chloroplast of (Brassica napus L.) facilitated by UV–laser microbeam. European Journal of Cell Biology, 49, 73-79.
32
Weber, G., Stanke, M., Monojembashi, S. & Greulich, K. O. (1991). Microdissection of chromosomes of Brassica napus at 400 x magnification with UV laser microbeam and stable transformation of higher plants. ISPMB Congress Tucon Abstracts, 3, 74.
33
Wi, S. G., Chung, B. Y. & Kim, J. S. (2007). Effect of gamma irradiation on morphological changes and biological responses in plants. Micron, 38, 553-564.
34
Yasemin, Z., Firdaws, A. Al. & Amange, F. (2013). Laser treatment may enhance growth and resistance to fungal infection of hard wheat seeds. IOSR Journal of Agriculture and Veterinary Science, 2(3), 47-51.
35
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تأثیر قارچ Glomus intraradices بر ویژگیهای کمی، کیفی گندم در شرایط تنش نیکل
به منظور بررسی نقش قارچ قارچریشه (میکوریز) در کاهش خطر آلودگی فلز سنگین نیکل آزمایشی در سال 1394 در گلخانهای در شهر ورامین روی گندم رقم SW انجام شد. این آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کامل تصادفی با چهار سطح نیکل (0، 60، 120و 180 میلیگرم بر کیلوگرم خاک) و دو سطح قارچ قارچریشه شامل (کاربرد و بدون کاربرد قارچ قارچریشه Glomus intraradices) در سه تکرار اجراء شد. نتایج بهدستآمده از این پژوهش نشان داد، تأثیر کاربرد نیکل بر همۀ صفات مورد بررسی معنیدار است. افزایش غلظت نیکل سبب کاهش ارتفاع گیاه، وزن خشک بوته، وزن خشک ریشه و محتوای سبزینۀ (کلروفیل) کل شد. درحالیکه نیکل سبب افزایش میزان فعالیت آنزیم کاتالاز و محتوای نیکل در اندامهای هوایی و ریشههای گندم شد. همچنین کاربرد قارچریشه سبب افزایش ارتفاع گیاه، وزن خشک بوته، وزن خشک ریشه، محتوای سبزینۀ کل و محتوای نیکل ریشه شد و همچنین سبب کاهش فعالیت آنزیم کاتالاز و محتوای نیکل در اندامهای هوایی بوتههای گندم شد. بهطور کلی این آزمایش نشان داد، کاربرد قارچ قارچریشه میتواند تأثیر مثبتی بر رفع تنش ناشی از فلز سنگین نیکل داشته باشد و میتواند سبب کاهش آسیب تنش اکسایشی (اکسیداتیو) در گندم شود.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64377_d50a7ca67d6ec27a7320691a74bc90fe.pdf
2017-11-22
685
693
10.22059/ijfcs.2017.214411.654166
کاتالاز
گندم
قارچ قارچریشه
نیکل
علی
حیدریان
hamid_tohidi2008@yahoo.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه زراعت، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ورامین- پیشوا، ورامین، ایران
AUTHOR
حمیدرضا
توحیدی مقدم
hamid_tohidi2008@yahoo.com
2
استادیار، گروه زراعت، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ورامین- پیشوا، ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
پورنگ
کسرائی
drkasraie@gmail.com
3
استادیار، گروه زراعت، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ورامین- پیشوا، ورامین، ایران
AUTHOR
Abdel Latef, A. A. H. (2011). Influence of arbuscular mycorrhizal fungi and copper on growth, accumulation of osmolyte, mineral nutrition and antioxidant enzyme activity of pepper (Capsicumannuum L.). Mycorrhiza, 21, 495-503.
1
Agrawal, B., Czymmek, K. J., Sparks, D. L & and Bais, H. P. (2013). Transient influx of nickel in root mitochondria modulates organic acid and reactive oxygen species production in ckelhyperaccumulator Alyssum murale. Journal of Biology Chemistry, 288, 735-736.
2
Arnon, D. I. (1949). Copper enzymes in isolated chloroplasts, polyphennoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24, 1-150.
3
Baycu, G., Ozden, H., Tolunay, D. & Gunebakan, S. (2006). Ecophysiological and seasonal variations in Cd, Pb, Zn, and Ni concentrations in the leaves of urban deciduous trees in Istanbul. Environmental Pollution, 143, 545-554.
4
Benavides, M. P., Gallego, S. M. & Tomaro, M. L. (2005). Cadmium toxicity in plants. Brazilian Journal of Plant Physiology, 17, 21-34.
5
Burken, J., Vroblesky, D. & Balouet, J. C. (2011). Phytoforensics, Dendrochemistry and Phytoscreening: New Green Tools for Delineating Contaminants from Past and Present. Environmental Science & Technology, 45(15), 6218-6226.
6
Gajewska, E., Słaba, M., Andrzejewska, R. & Skłodowska, M. (2006). Nickel-induced inhibition of wheat root growth is related to H2O2 production, but not to lipid peroxidation. Plant Growth Regulation, 49, 95-103.
7
Garnczarska, M. & Ratajczak. L. (2000). Metabolic responses of Lemna minor to lead ions, II. Induction of antioxidant enzymes in roots. Acta physiologiae plantarum, 22, 429-432.
8
Citterio, S., Prato, N., Fumagalli, P., Aina, R., Massa, N., Santagostina, A., Sgorbati, S. & Berta, G. (2005). The arbuscular mycorrhizal fungus Glomus mosseae induces growth and metal accumulation changes in Cannabis sativa L. Chemosphere, 59, 21-29.
9
Demir, S. (2004). Influence of arbuscular mycorrhiza on some physiological growth parameters of pepper.Turkish Journal of Biologi, 28, 85-90.
10
Dhir, B., Sharmila, P., Saradhi, P. P. & Nasim, S. A. (2009). Physiological and antioxidantresponses of Salvinia natans exposed to chromium-rich wastewater, Ecotoxicology and Environmental Safety, 72, 1790-1797.
11
Gaur, A. & Adholeya, A. (2004). Prospects of arbuscular mycorrhizal fungi in phytoremediation of heavy metal contaminated soils. Current Science, 86, 528-534.
12
Ghasemi, R., Ghaderian, S. M. & Krämer, U. (2009). Interference of nickel with copper and iron homeostasis contributes to metal toxicity symptoms in the nickel hyper accumulator plant Alyssum inflatum. New Phytologist, 184, 566-580.
13
Gonzalez-Chavez, M., Carrillo-Gonzalez, R., Wright, S. & Nichols, K. (2004). The role of glomalin, a protein produced by arbuscular mycorrhizal fungi, in sequestering potentially toxic elements. Environmental Pollution, 130, 317-323.
14
Gonzalez-Guerrero, M., Melville, L. H., Ferrol, N., Lott, J. N., Azcon-Aguilar, C. & Peterson, R. L. (2008). Ultra structural localization of heavy metals in the extra radical mycelium and spores of the arbuscularmycorrhizal fungus Glomus intraradices, Canadian Journal of Microbiology, 54, 103-110.
15
Gosh, M. & Singh, S. P. (2005). A review on phytoremediation of heavy metals and utilization of its hypoducts. Applied ecology and environmental research, 3(1), 1-18.
16
Goussous, S. & Mohammad, M. (2009). Comparative effect of two arbuscular mycorrhizae and N and P fertilizers on growth and nutrient uptake of onions. International Journal of Agriculture and Biology, 11, 463-467.
17
Hildebrandt, U., Regvar, M. & Bothe, H. (2007). Arbuscular mycorrhiza and heavy metal tolerance. Phytochemistry, 68, 139-146.
18
Jahromi, F., Aroca, R., Porcel, R. & Ruiz-Lozano, J. M. (2008). Influence of salinity on the in vitro development of Glomus intraradices and on the in vivo physiological and molecular responses of mycorrhizal lettuce plants. Microbial Ecology, 55, 45-53.
19
Javaid, A. (2009). Arbuscular mycorrhizal mediated nutrition in plants. Journal of Plant Nutrition, 32, 1595-1618.
20
Joner, E. & Leyval, C. (1997). Uptake of 109Cd by roots and hyphae of a Glomus mosseae/Trifolium subterraneum mycorrhiza from soil amended with high and low concentrations of cadmium. New Phytologist, 135, 353-360.
21
Juknys, R., Vitkauskaite, G., Racaite, M. & Vencloviene, J. (2012). The impacts of heavy metals on oxidative stress and growth of spring barley. Central European Journal of Biology, 7, 299-306.
22
Khatun, S., Ali, M. B., Hahn, E. J. & Paek, K. Y. (2008). Cooper toxicity in Withania somnifera: Growth and antioxidant enzymes responses of in vitro grown plants. Environmental and Experimental Botany, 64, 279-285.
23
Koves-Pechy, K., Biro, B., Voros, I., Takacs, T., Osztoics, E. & Strasser, R. (1999). Enhanced activity of microsymbiont-host systems probed by the OJIP test. In: Photosynthesis: Mechanisms and Effects, (Ed. G. Garab) Pp. 2765-2770. Kluyver Academic Publishers.
24
Lawlor, D. W. & Leach, E. (1985). Leaf growth and water deficits: Biochemistry in relations to biophysics. In: BAKER, N. R., W. J. DAVIS, and C. K. ONG (eds.). Control of Leaf Growth, 77-91, Cambridge University Press, Cambridge.
25
Maksymiec, W. (1997). Effect of copper on cellular processes in higher plants. Photosynthetica, 34, 321-342.
26
Nagajyoti, P., Lee, K. & Sreekanth, T. (2010). Heavy metals, occurrence and toxicity for plants. Environmental Chemistry Letters, 8, 199-216.
27
Neumann, E. & George, E. (2005). Does the presence of arbuscular mycorrhizal fungi influence growth and nutrient uptake of a wild-type tomato cultivar and a mycorrhiza-defective mutant, cultivated with roots sharing the same soil volume. New Phytologist, 166, 601-609.
28
Paglia, D. (1997). Studies on the quantitive trait Dase. Journal of Laboratory and Clinical Medicine, 70, 158-165.
29
28-Pakdaman, N., Ghaderian, S. M., Ghasemi, R. & Asemaneh, T. (2013). Effects of calcium/magnesium quotients and nickel in the growth medium on growth and nickel accumulation in Pistacia atlantica. Journal of Plant Nutrition, 36, 1708-1718.
30
Pang, X., Wang, D. & Peng, A. (2001). Effect of lead stress on the activity of antioxidant enzymes in wheat seedling. Environmental Science, Beijing, 22(5), 108-112.
31
Pereira, E., Coelho, V., Tavares, R. M., Lino-Neto, T. & Baptista, P. (2012). Effect of competitive interactions between ectomycorrhizal and saprotrophic fungi on Castanea sativa performance. Mycorrhiza, 22, 41-49.
32
Poschenrieder, C. & Barcelo, J. (2004). Water relations in heavy metal stressed plants. In: Heavy Metal Stress in Plants (ed. Prasad, M. N. V.). Springer, Berlin, 207-229
33
Rivera-Becerril, F., Calantzis, C., Turnau, K., Caussanel, J. P., Belimov, A. A., Gianinazzi, S., Strasser, J. R. and Gianinazzi-Pearson, V. (2002).Cadmium accumulation and buffering of cadmium-induced stress by arbuscular mycorrhiza in three Pisum sativum L. genotypes, Journal of Experimental Botany, 53, 1177-1185.
34
SAS Institute Inc. (2002). The SAS System for Windows, Release 9.0. Statistical Analysi Systems Institute, Cary, NC, USA.
35
Srivastava, S., Tripathi, R. D. & Dwivedi, U.N. (2004). Synthesis of phytochelatins and modulation of antioxidants in response to cadmium stress in Cuscuta reflexa an angiospermic parasite. Plant Physiology, 161, 665-674.
36
Vivas, A., Biro, B., Nemeth, T., Barea, J. M. & Azcon, R. (2006). Nickel-tolerant Brevibacillus brevis and arbuscular mycorrhizal funguscan reduce metal acquisition and nickel toxicity effects in plant growing in nickel supplemented soil. Soil Biology and Biochemistry, 38, 2694-2704.
37
Vogel-Mikus, K., Pongrac, P., Kump, P., Necemer, M. & Regvar, M. (2006). Colonization of Zn, Cd and Pb hyper accumulator Thlaspi praecox Wulfen with indigenous arbuscular mycorrhizal fungal mixture induces changes in heavy metal and nutrient uptake. Environmental Pollution, 139, 362-371.
38
Yang, D., Shi, G. & Song, D. (2001). The resistance reaction of Brasenia schreberi winter-bud to Cr6+ pollution. Journal of Lake Sciences, Beijing, 13(2), 169-174.
39
Yusuf, M., Fariduddin, Q., Hayat, S. & Ahmad, A. (2011). Nickel: an overview of uptake, essentiality and toxicity in plants. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 86, 1-17.
40
Zhao, Y., Peralta-Videa, J.R., Lopez-Moreno, M. L., Ren, M., Saupe, G. & Gardea-Torresdey, J. L. (2011). Kinetin increases chromium absorption, modulates iths distribution, and changes the activity of catalase and ascorbate peroxidase in Mexican Palo Verde. Environmental Science and Technology, 45, 1082-1087.
41
ORIGINAL_ARTICLE
تجزیۀ تنوع ژنتیکی و سیتوژنتیکی نژادگانهای مختلف یونجه (Medicago sativa L.) در ایران
یونجه یکی از گیاهان علوفهای است که به علت میزان پروتئین بالا، خوشخوراکی، قابلیت هضم بالا و سازگاری آن در شرایط مختلف محیطی اهمیت بالایی دارد. در این تحقیق تنوع ژنتیکی نوزده نژادگان (ژنوتیپ) از گونۀ Medicago sativa با استفاده از نشانگرهای سیتوژنتیکی و مولکولی بررسی شد. بر پایۀ دادههای سیتوژنتیکی تنوع معنیداری برای صفات کاریوتیپی وجود داشت. نژادگانهای 211-ES (اصفهان1)، 027-ES (شاهرود)، 199- ES (کدی1)، 065- ES(زردشت)، 037-ES (اصفهان 2) بیشترین میزان کروماتین و بیشترین نبود تقارن را داشتند و کاریوتیپ متکاملی داشتند. بیشترین شاخص بدون تقارن (AI) را نژادگانهای 211-ES (اصفهان 1) و 119-ES (کدی 1) و کمترین میزان را نژادگان 037-ES (اصفهان 2) داشت. همچنین بیشترین میزان تغییرات نسبی طول کروموزوم (CVCL)، میانگین بدون تقارن سانترومری (MCA)، انحراف معیار نسبت بازوها (r-value) و طول نسبی کروموزوم (RL%) مربوط به نژادگان 119-ES (کدی 1) و کمترین میزان متعلق به نژادگان 058-ES (کدی 2) بود. بررسی الگوی نواری (باندی) هشت آغازگر (پرایمر) ISSR شمار 29 نوار چندشکلی (پلیمورف) را مشخص کرد. پس از امتیازدهی نوارهای چندشکلی میانگین شاخص محتوای دادههای چندشکلی (PIC) در هر آغازگر برابر 32/0 محاسبه شد. کمترین میزان درصد چندشکلی را آغازگرهای 14IS (50%) و 15IS (50%) و 5IS (14/57%) داشتند و درصد چندشکلی برای دیگر آغازگرها 100 درصد است، همچنین میانگین درصد چندشکلی برابر 86 درصد بود. شمار نوارهای چندشکلی برای آغازگرها از سه تا شش نوار متغیر بود. میانگین شمار نوار در هر آغازگر برابر 62/4 تعیین شد. تجزیۀ خوشهای دادههای مولکولی و سیتوژنتیکی 19 نژادگان را در سه گروه قرار داد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64378_5e5699e24a9a51c126aa683f354219e1.pdf
2017-11-22
695
708
10.22059/ijfcs.2017.208241.654123
تنوع ژنتیکی
کاریوتیپ
یونجه (Medicago sativa L.)
ISSR
محسن
فرشادفر
farshadfarmohsen@yahoo.com
1
دانشیار، گروه کشاورزی، دانشگاه پیامنور
LEAD_AUTHOR
فاطمه
بلورچیان
fatibolorchi@yahoo.com
2
کارشناس ارشد باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کرمانشاه، کرمانشاه، ایران
AUTHOR
هوشمند
صفری
hoshmand.safari@gmail.com
3
استادیار، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرمانشاه
AUTHOR
هومن
شیروانی
hooman.sh1366@yahoo.com
4
مدرس، گروه کشاورزی، دانشگاه پیامنور
AUTHOR
Arano, H. & Satio, H. (1980). Cytological studies in family Umbelliferae 5. Karyotypes of seven species in subtribe Seselinae. Kromosomo, 2(17), 471-480.
1
Azhar Hossain, M. & Bauchan, G. R. (2001). Distribution and characterization of heterochromatic DNA in the tetraploid African populations of alfalfa Genome. Crop Science, 41, 1921-1926.
2
Azizi, N., Amirouche, R. & Amirouche, N. (2016). Cytotaxonomic Diversity of some Medicinal Species of Hyacinthaceae from Algeria. Pharmacogn, 6(1), 34-38.
3
Barcaccia, G., Albertin, E., Tavoletti, S., Falcinelli, M. & Veronesi, F. (1999). AFLP fingerprinting in Medicago spp: its development and application in linkage mapping. Plant Breeding, 118, 335-341.
4
Barnes, D. K., Bingham, E., Murphy, T., Hunt, R. P., Beard, O. J., Skrdla, D. F. & Teuber, L. R. (1977). Alfalfa Germplasm in the United States: Genetic Vulnerability, Use, Improvement and Maintenance. U.S. Department of Agriculture, U.S. Printing Office. Technical Bulletin, 1571.
5
Bauchan, G. R. & Azhar Hossain, M. (1998). Karyotypic analysis of C-banded chromosomes of diploid alfalfa: Medicago sativa ssp. caerulea and ssp. falcata and their hybrid. Journal of Heredity, 89, 191-193.
6
Bauchan, G. R. & Campbell, T. A. (1994). Use of an image analysis system to karyotype alfalfa, Medicago sativa. Heredity, 85, 18-22.
7
Bauchan, G. R., Small, E., Brooks, B. & Auricht, G. C. (1995). A systematic comparison of early-and late-flowering forms of Medicago scutellata. Canadian Journal of Botany, 71, 183-192.
8
Bernadette, J., Sandrine, V., Philippe, B., Gaelle, C., Sylvain, S., Thierry, H. & Christian, H. (2003). Construction of two genetic linkage maps in cultivated tetraploid alfalfa (Medicago sativa) using microsatellite and AFLP markers. BMC Plant Biology, 3, 1-19.
9
Brantestam, A. K., Botheme, R. V., Dayteg, Ch., Rashall, Tuvesson, S. & Weibull, J. (2004). Inter simple sequence repeat analysis of diversity and relationships in cultivated burly of Nordic and Baltic origin. Hereditas, 141, 186-192.
10
Brummer, E. C. (1999). Capturing hetrosis in forage crop cultivar development. Crop Science, 939- 943.
11
Ceccarelli, M. S., Minelli, M., Falcinelli, M. & Cionini, P. G. (1994). Genome size and plant development in hexaploid Fustuca arundinacea. Heredity, 71 555-560 Chawla, H.S. 2004. Labroratory Manual for plant Biotechnology.
12
Diwan, N., Bhagwat, A. A., Bauchan, G. R. & Cregan, P. B. (1997). Simple sequence repeat (SSR) DNA markers in alfalfa and perennial and annual Medicago species. Genome, 40, 887-895.
13
Doyle, J. J. & Doyle, J. L. (1987). A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue. Phytochem Bull, 19, 11-15.
14
Ellwood, S. E., D’Souza, N. K., Kamphuis, L. G., Burgess, T. I., Nair, R. M. & Oliver, R. P. (2006). SSR analysis of the Medicago truncatula SARDI core collection reveals substantial diversity and unusual genotype dispersal throughout the Mediterranean basin. Theoretical and Applied Genetics, 112, 977-983.
15
Ghanavati, F., Mozafari, J. & Kazempour, Sh. (2006). Familiar relationship between Lucerne genuse on Iran based on RAPD molecular marker. Pajouhesh & Sazandegi, 66, 2-12. (in Farsi)
16
Hieter, P. & Griffiths, T. (1999). Polyploidy more is more of less. Science, 285, 210- 211.
17
Huziwara, Y. (1962). Karyotype analysis in some genera of Composite. VIII. Further studies on the chromosome of aster. American Journal of Botany, 49, 116-119.
18
Kumari, G. & Bijoy, K. R. (2010). Karyotype studies in dominant species of Aloe from eastern India. Caryologia, 63(1), 41-49.
19
Levan, A., Fedga, K. & Sandberg, A. A. (1964). Nomenclature for centromeric position on chromosomes. Hereditas, 52, 201-220.
20
Li, Y., Wng, Y., Sun, X. & Han, J. (2009). Using microsattelite (SSR) and morphological markers to assess the genetic diversity of 12 alfalfa (Medicago sativa spp. Falcata) populations from Eurasia. Biotechnology, 8(10), 2102-2108.
21
Liliya, K. (2000). Organization of plant genetic resources in Bulgaria. Acta Horticulturae, 510, 247-259.
22
Manifesto, M. M., Schlatter, A.S., Hopp, H.E., Suarez, E. Y. & Dubcovky, J. (2001). Quantitative evaluation of genetic diversity germplasm using molecular markers. Crop Science, 41, 682-690.
23
Marvyan, S., Safarnejad, A. & Majd, A. (2002). Comparison of some Caryological traits of Lucerne cultivars. Pajouhesh & Sazandegi, 56, 57, 25-29.
24
Mortazavi, M. (2007). Evaluation of genetic variation of Lucerne using morphological, cytogenetic and biochemical markers. M.Sc. Thesis, Razi University, Kermanshah, Iran. (in Farsi)
25
Paknia, R. & Karimzadeh, G. (2011). Karyotypic Study and Chromosome Evolution in Some Iranian Local Onion Populations. Journal of Plant Physiology and Breeding, 1(1), 49-62.
26
Paszko, B. (2006). A critical review and a new proposal of karyotype asymmetry indices. Plant Systematics and Evolution, 258(1-2), 39-48.
27
Peng, L. Z., Gong, L. S. & Qingm, C. Y. (2007). A novel statistical method for assessing SSR variation in autotetraploid alfalfa (Medicago sativa L.). Genetics Molecular Biology, 30, 385-391.
28
Powell, W., Morgante, M., Andre, C., Hanafey, M., Vogel, J., Tingey, S. & Rafalski, A. (1996). The comparison of RFLP, RAPD, AFLP and SSR (microsatellite) markers for germplasm analysis. Molecular Breeding, 2, 225-238.
29
Price, H. J., Chmber, K. L. & Bachmann, K. (1981).Geographic and ecological distribution of genome DNA content variation in Microseris douglasii (Asteracea). Botanical Gazette, 142, 415-426.
30
Romero-Zarco, C. (1986). A new method for estimating karyotype asymmetry. Taxonomy, 35, 526-530.
31
Ronfort, J., Jenczewski, E., Bataillon, T. & Rousset, F. (1998). Analysis of population structure in autotetraploid species. Genetics, 150, 921-930.
32
Sandrine, F., Joëlle, R., Pierre, B., Philippe, B., Thierry, H., Christian, H. & Bernadette, J. (2008). Genetic diversity among alfalfa (Medicago sativa) cultivars coming from a breeding program, using SSR markers. Theoretical and Applied Genetics, 111, 1420-1429.
33
Sharyat, A. (2001). Study of genetic variability of annual Lucerne by cytogenetic, electrophoretic and morphological traits. M.Sc. Thesis, Sistan and Balouchestan University, Iran. (in Farsi)
34
Stebbins, G. L. (1971). Chromosomal Evolution in Higher Plants. Edward Arnold, London, UK.
35
Surve-Iyer, R. S., Adams, G. C., Lezzon, A. F. & Jones, A. L. (1995). Isozyme detection and variation in Ieucostoma species from prunus and malus. Mycologia, 87, 471- 482.
36
Veronesi, F. Charles, B. & Huyghe, C. (2010). Alfalfa. Springer Science, 395-436.
37
Watanabe, K., Yahara, T., Denda, T. & Kosuge, K. (1999). Chromosomal evolution in the genus Brachyscome (Asteraceae, Astereae): Statistical tests regarding correlation between changes in karyotype and habit using phylogenetic information. Journal of Plant Research, 112(2), 145-61.
38
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی نژادگانهای مقاوم و حساس گندم نان به بیماری پاخوره از نظر صفات زراعی در مزرعه
گندم نان یکی از منابع غذایی با ارزشی است که در معرض بیماریهای زیادی قرار گرفته که موجب کاهش کمیت و کیفیت آن میشود. از بیماریهای مهم گندم، پاخورۀ گندم با عامل Gaeumannomycs graminis var. tritici است، که اغلب در مناطق مرطوب شیوع دارد. هدف از این بررسی، ارزیابی نژادگان (ژنوتیپ)های گندم نان با سطوح مقاومتی مختلف که از غربالگری گلخانهای انتخاب شده بودند، در شرایط مزرعه و بررسی رابطۀ بین شاخص مقاومت به بیماری و صفات زراعی و عنصرهای کممصرف بذر بود. برای این منظور ۱۵ نژادگان در شرایط آلوده به بیماری و بدون آلودگی در مزرعه کشت شدند و صفات: میزان سبزینه (کلروفیل)، کاروتنوئید، سطح برگ پرچم، ارتفاع، شمار سنبلچه در خوشه، طول خوشه، طول دمگل (پدانکل)، وزن صددانه، وزن دانه در خوشه، شمار دانه در خوشه، وزن کل دانه در بوته، وزن کل زیستتوده (بیوماس)، شاخص برداشت و میزان عنصرهای کممصرف بذر (آهن، منگنز و روی) اندازهگیری شد. میزان آهن موجود در بذر، در شرایط آلوده افزایش معنیداری نسبت به شاهد نشان داد. در نهایت نژادگانهای 485، 1528، 501، 8031 و 585 از نظر بیشتر صفات اندازهگیریشده در مزرعه در شرایط آلوده به بیماری نسبت به دیگر نژادگانها برتری داشتند و شدت بیماری اندازهگیریشده در گلخانه، با ارتفاع گیاه، وزن دانه در خوشه، سطح برگ پرچم، وزن صددانه و میزان آهن موجود در بذر که در مزرعه در شرایط آلوده به بیماری اندازهگیری شد، همبستگی منفی و معنیدار داشت که نشان میدهد، میتوان از ارزیابیهای گلخانهای برای گزینش نژادگانهای متحمل به بیماری پاخوره استفاده کرد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64379_decd647adc25483ebb5e4c328245b4a4.pdf
2017-11-22
709
720
10.22059/ijfcs.2017.209609.654136
ارزیابی مزرعهای
پاخورۀ گندم
ذخایر توارثی گندم نان
مقاومت
مژگان
قلی زاده وزوانی
mgholizadehvazvani@yahoo.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ولیعصر(عج) رفسنجان
AUTHOR
حسین
دشتی
dashti@vru.ac.ir
2
استاد، گروه ژنتیک و تولید گیاهی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ولیعصر(عج) رفسنجان
LEAD_AUTHOR
روح الله
صابری ریسه
roohia2002@yahoo.com
3
دانشیار، گروه گیاهپزشکی، دانشگاه ولیعصر(عج) رفسنجان
AUTHOR
محمدرضا
بی همتا
mrghanad@ut.ac.ir
4
استاد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
Arnon, D. I. (1949). Copper enzymes in isolate chloroplasts polyphenol oxidas in Beta vulgaris. Journal of Pant Physiology, 24, 1-15.
1
Asher, M. J. C. (1972). Effect of Ophiobolus graminis infection on the growth of wheat and barley. Annals of applied Biology, 70(3), 215-223.
2
Awasthi, L. P. (2015). Singh, In: D. P. (Ed). Plant nutrition in the management of plant disease with particular reference to wheat. (pp. 273-284) Springer Science.
3
Bailey, D. J., Kleczkowski, A. & Gilligan, C. A. (2006). An epidemiological analysis of the role of disease-induced root growth in the differential response of two cultivars of winter wheat to infection by Gaeumannomyces graminis var. tritici. Phytopathology, 96, 510-516.
4
Champam, B., Jones, D. & Jung, R. (1983). Processes controlling metal ion attenuation in acidmine draingge streams. Geochemical and Cosmochimica Acta, 47, 1957-1973.
5
Colbach, N., Lucas, P. & Meynard, J. M. (1997). Influence of crop management on take-all development and disease cycles on winter wheat. Phytopathology, 87, 26-32.
6
Fei, X., Gongqiang, Y., Wenlan, H., Yuli, S., Junmei, W. & Yahong, L. (2013). Evaluation of resistance to take-all disease in different wheat cultivars or lines. Plant Protection, 2, 31-45.
7
Gholizadeh Vazvani, M., Dashti, H., Saberi Riseh, R. & Bihamta, M. R. (2015). Comparison Between spring and autumn growth types of different wheat (Triticum aestivum) genotypes in response to Take-all disease. Iranian Journal of Plant Protection, 46(2), 307-316. (in Farsi)
8
Gholizadeh Vazvani, M., Dashti, H., Saberi Riseh, R. & Bihamta, M. R. (2016). Study of relationship between of vegetative traits and resistance to take-all disease in greenhouse condition. Iranian Journal of Plant Protection. (in Farsi). (Un Published)
9
Harman, G. E., Howell, C. R., Viterbo, A., Chet, I & Lorito, M. (2004). Trichoderma species opportunistic, avirulent plant symbionts. Microbiology, 2: 43-56.
10
Hornby, D., Bateman, G. L. & Gutteridge, R. J. (1998). Take-all disease of cereals: A regional perspective. CAB International.
11
Liatukas, Z., Ruzgas, V. & Razbadu Skiene, K. (2010). Take-all resistance of Litvanian winter wheat breeding lines. Agronomy Research, 3, 653-662.
12
Mattsson, B. 1973. Screening of varieties for resistance to the take-all fungus and the transference of resistance to Swedish material. Sveriges Utsades Forenings Tidskrift, 83, 281-297
13
McMillan, V. E. (2012). Identification and characterization of resistance to the take-all fungus in wheat. Ph. D. thesis. University of Exeter.
14
McMillan, V. E., Gutteridge, R. J. & Hammond-Kosack, K. E. (2014). Identification variation in resistance to the take-all fungus, Gaeumannomyces graminis var. tritici between different ancestral and modern wheat sepsis. BMC Plant Biology, 14, 212.
15
Montgomery, D. C. (1991). Design and analysis of experiments. (3rd edition). John Wiley & Sons.
16
Nilsson, H. E. (1969). Studies of root and foot rot diseases of cereals and grasses. I. On resistance to Ophiobolus graminis Sacc. Annals of the Agricultural College of Sweden, 35, 275-807.
17
Ownley, B. H., Duffy, B. K. & Weller, D. M. (2003). Identification and manipulation of soil properties to improve the biological control performance of phenazine-producing Pseudomonas fluorescens. Applied and Environmental Microbiology, 69, 3333-3343.
18
Rothrock, C. S. (1988). Effect of chemical and biological treatments on take-all of winter wheat. Crop Protection, 7, 20-24.
19
Sieling, K., Ubben, K. & Christen, O. (2007). Effects of preceding crop, sowing date, N fertilization and fluquinconazole seed treatment on wheat growth, grain yield and take-all/Einfluss von Vorfrucht, Aussaattermin, N-Düngung und Saatgutbehandlung mit Fluquinconazol auf die Entwicklung und den Kornertrag von Weizen sowie den Befall mit Schwarzbeinigkeit. Journal of Plant Diseases and Protection, 213-220.
20
Singh, D. P. (2015). Plant nutrition in the management of plant disease with particular reference to wheat. Springer Science, 273-284.
21
Wallwork, H. (1987). Screening for resistance to take-all in wheat, triticale and wheat-triticale hybrid lines. Printed in the Netherlands, 40, 103-109.
22
Wiese, M. V. (1987). Compendium of wheat disease. (2nd ed.). APS Press.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرپذیریهای الگوی بیان پروتئین در رقمهای متحمل و حساس کلزا در شرایط تنش شوری
بهمنظور بررسی سازوکار تحمل و حساسیت به تنش شوری در کلزا (Brassica napus L.)، رقمهای SW5001 و Sarigol به ترتیب بهعنوان رقمهای متحمل و حساس بهصورت آزمایش فاکتوریل در قالب طرح بلوک کامل تصادفی در چهار تکرار در گلخانه کشت شدند. نمونههای برگی، دو هفته پس از اعمال تنش شوری و در پایان مرحلۀ وردمانی (روزت) برداشت شدند. پروتئین از بافت برگی استخراج و الکتروفورز دوبعدی برای بررسی بیان پروتئینها در گیاهان شاهد و در شرایط تیمار شوری انجام شد. رنگآمیزی ژلها با آبی کوماسی و تجزیۀ لکههای پروتئینی با نرمافزار PDQuest انجام و لکههای پروتئینی با استفاده از طیفسنجی (اسپکترومتری) جرمی و به روش MALDI TOF/TOF MS شناسایی شدند. شمار هفده لکۀ پروتئینی با اختلاف بیان معنیدار بین گیاهان شاهد و تیمار تنش شوری، تشخیص داده شدند که از این شمار ده لکۀ پروتئینی بین دو رقم مشترک و شمار چهار و سه لکۀ پروتئینی به ترتیب به رقم متحمل و حساس اختصاص داشتند. پروتئینهای مشترک شناساییشده در گروههای عملکردی شامل پروتئینهای دخیل در واکنش نوری نورساخت (فتوسنتز)، چرخۀ کالوین، حذف پاداکسنده (آنتیاکسیدانت)، انتقال پیام و پایداری ساختار پروتئینها طبقهبندی شدند. در مجموع در رقم متحمل SW5001 عاملهای پایداری ساختار، حفظ کارایی سوختوساز (متابولیسم) کربن و دفاع در برابر تنش اکسایشی در شرایط تنش به نحو مؤثری موجب ایجاد مقاومت شدند. در ضمن بیشترین نقطۀ قوت رقم متحمل با اتکا به پروتئینهای منحصربهفرد در قسمت واکنش نوری نورساخت بود و رقم حساس بیشترین آسیب را در چرخۀ کالوین متحمل شد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64380_8e393eefc63c23a6a8ee713b9e60055e.pdf
2017-11-22
721
735
10.22059/ijfcs.2017.206306.654109
الکتروفورز دوبعدی
پروتئینهای پاسخدهنده به تنش
تحمل تنش شوری
کلزا
معروف
خلیلی
makhalily@yahoo.com
1
استادیار بخش کشاورزی، دانشگاه پیام نور، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
نقوی
mr_naghavi@ymail.com
2
استادیار بخش کشاورزی، دانشگاه پیام نور، ایران
AUTHOR
Ashraf, M. & Harris, P. J. C. (2004). Potential biochemical indicators of salinity tolerance in plants. Plant Science, 166, 3-16.
1
Cakmak, I. (2005). The role of potassium in alleviating detrimental effects of abiotic stresses in plants. Journal of Plant Nutrition and Soil Science, 168, 521-530.
2
Cui, S., Huang, F., Wang, J., Ma, X., Cheng, Y. & Liu, J. (2005). A proteomic analysis of cold stress responses in rice seedlings. Proteomics, 5(12), 3162-3172.
3
Eberhard, S., Finazzi, G. & Wollman. F. A. (2008). The dynamics of photosynthesis. Annual Review of Genetics,42, 463-515.
4
Gao, L., Yan, X., Li, X., Guo, G., Hu, Y., Ma, W. & Yan, Y. (2011). Proteome analysis of wheat leaf under salt stress by two-dimensional difference gel electrophoresis (2D-DIGE). Photochemistry, 72(10), 1180-1191.
5
Guo, G., Ge, P., Ma, C., Li, X., Lv, D., Wang, S., Ma, W. & Yan, Y. (2012). Comparative proteomic analysis of salt response proteins in seedling roots of two wheat varieties. Journal of Proteomics, 75(6), 1867-1885.
6
Hashimoto, M., Toorchi, M., Matsushita, K., Iwasaki Y. & Komatsu, S. (2009). Proteome analysis of rice root plasma membrane and detection of cold stress responsive proteins. Protein & Peptide Letters, 16, 685-697.
7
Heide, H., Kalisz, H. M. & Follmann, H. (2004). The oxygen evolving enhancer protein 1 (OEE) of photosystem II in green algae exhibits thioredoxin activity. Journal of Plant Physiology, 161, 139-149.
8
Herbert, B. (1999). Advances in protein solubilisation for two-dimensional electrophoresis. Electrophoresis, 20(4-5), 660-663.
9
Holmstrom, K.O., Somersalo, S., Manda, A., Palva, T.E. & Welin, B. (2000). Improved tolerance to salinity and low temperature in transgenic tobacco producing glycine betaine. Journal of Experimental Botany, 51, 177-185.
10
Hosseini Salekdeh, G. & Komatsu, S. (2007). Crop Proteomics: Aim at sustainable agriculture of tomorrow. Proteomics, 7, 2976-2996.
11
Hosseini Salekdeh, Gh., Siopongco, J., Wade, L. J., Ghareyazie, B. & Bennett, J. (2002). Proteomics analysis of rice leaves during drought stress and recovery. Proteomics, 2, 1131-1145.
12
Ifuku, K., Ishihara, S., Shimamoto, R., Ido, K. & Sato, F. (2008). Structure, function, and evolution of the PsbP protein family in higher plants. Photosynthesis Research, 98, 427-437.
13
Kausar, R., Arshad, M., Shahzad, A. & Komatsu, S. (2013). Proteomics analysis of sensitive and tolerant barley genotypes under drought stress. Amino Acids, 44, 345-359.
14
Komatsu, S. & Tanaka, N. (2004). Rice proteome analysis: A step toward functional analysis of the rice genome. Proteomics, 4, 938-949.
15
Kumara, S. G., Reddya, A. M. & Sudhakar, C. (2003). NaCl effects on proline metabolism in two high yielding genotypes of mulberry (Morus alba L.) with contrasting salt tolerance. Plant Science, 165, 1245-1251.
16
Manna, A., Mimouni, H., Wasti, S., Gharbi, E., Aschi-Smiti, S., Faurobert, M. & Ben Ahmad, H. (2013) Comparative proteomic analysis of tomato (Solanum lycopersicum) leaves under salinity stress. Plant Omics Journal, 6, 268-277.
17
Moller, A. L., Pedas, P., Andersen, B., Svensson, B., Schjoerring, J. K. & Finnie, C. (2011). Responses of barley root and shoot proteomes to longterm nitrogen deficiency, short-term nitrogen starvation and ammonium. Plant, Cell and Environment, 34(12), 2024-2037.
18
Morant-Manceau, A., Pradier, E. & Tremblin, A. (2004). Osmotic adjustment, gas exchanges and chlorophyll fluorescence of a hexaploid triticale and its parental species salt stress. Journal of Plant Physiology, 169, 25-33.
19
Naghavi, M. R. (2014). Evaluation of spring wheat cultivars under drought stress and proteome analysis for the most tolerant and sensitive ones. Ph.D. Thesis. Faculty of Agriculture, University of Tabriz. Iran. (in Farsi)
20
Naghavi, M. R. (2010). Response and 2-Dimensional electrophoresis pattern of spring rapeseed genotypes under osmotic stress. M.Sc. Dissertation. Faculty of Agriculture, University of Tabriz, Iran. (in Farsi)
21
Ozturk, M., Dzdemir, F., Eser, B., Adiyahsi, O. I. & Ilbi, H. (1995). Studies on the salt-hormone interactions in the germination and seedling growth of some vegetable species. In: M. Khan & I. A. Ingar (Eds.). Biology of salt tolerant plants. (pp.59-64.). University of Karach, Kharachi, Pakistan.
22
Raymer, P. L. (2002). Canola: An emerging oilseed crop. In: J. Janick, & A. Whipkey, (Eds.). Trends in new crops and new uses. (pp. 44-56.). ASHS Press, Alexandria, VA.
23
Reviron, M. P., Vartanian, N. M., Sallantin, J. C., Huet, J. C., Pernollet, J. & de Vienne, D. (1992). Characterization of a novel protein induced by progressive or rapid drought and salinity in Brassica napus leaves. Plant Physiology, 100(3), 1486-1493.
24
Spreitzer, R. J. & Salvucci, M. E. (2002). Rubisco: structure, regulatory interactions, and possibilities for a better enzyme. Annual Review of Plant Biology, 53, 449-475.
25
Sun, Y., Ahokas, R. A., Bhattacharya, S. K., Gerling, I. C., Carbone, L. D. & Weber, K. T. (2006). Oxidative stress in aldosteronism. Cardiovascular Research, 71, 300-309.
26
Takahashi, S. & Murata, N. (2008). How do environmental stresses accelerate photo inhibition? Trends Plant Science, 13, 178-182.
27
Tamoi, M., Nagaoka, M., Yabuta, Y. & Shigeoka, S. (2005). Carbon metabolism in the Calvin cycle. Plant Biotechnology, 22, 355-360.
28
Thiellement, H., Zivy, M. & Plomion, C. (2002). Combining proteomic and genetic studies in plants. Chromatography B, 782, 137-149.
29
Toorchi, M., Yukawa, K., Nouri, M. Z. & Komatsu, S. (2009). Proteomics approach for identifying osmotic-stress-related proteins in soybeans roots. Peptides, 30, 2108-2117.
30
Twyman, R. M. (2004). Principles of proteomics (1st ed.). BIOS Scientific Publishers.
31
Vaidyanathan, H., Sivakumar, P., Chakrabarty, R. & Thomas, G. (2003). Scavenging of reactive oxygen species in NaCl-stressed rice (Oryza sativa L.) - differential response in salt-tolerant and sensitive varieties. Plant Science, 165, 1411-1418.
32
von Ballmoos, C. & Dimroth, P. (2007). Two distinct proton binding sites in the ATP synthase family. Biochemistry, 46, 11800-11809.
33
Wan, X. Y. & Liu, J. Y. (2008). Comparative proteomics analysis reveals an intimate protein network provoked by hydrogen peroxide stress in rice seedling leaves. Molecular and Cellular Proteomics, 7, 1469-1488.
34
Wang, W., Vinocur, B., Soseyov, O. & Altman, A. (2004). Role of plant heat-shock proteins and molecular chaperones in the abiotic stress response. Trends Plant Science, 9, 244-52.
35
Xue, G. P., Mcintyre, C. L., Glassop, D. & Shorter, R. (2008). Use of expression analysis to dissect alterations in carbohydrate metabolism in wheat leaves during drought stress. Plant Molecular Biology, 67, 197-214.
36
Yan, S., Su, Z., Tang, W. & Sun, W. (2005). Proteomic analysis of salt stress-responsive proteins in rice root. Proteomics, 5, 235-244.
37
Ye, J., Wang, S., Zhang, F., Xie, D. & Yao, Y. (2013). Proteomic analysis of leaves of different wheat genotypes subjected to PEG6000 stress and rewatering. Plant Omics Journal, 6(4), 286-294.
38
Yıldız, M., Akçalı, N. & Terzi, H. (2015). Proteomic and biochemical responses of canola (Brassica napus L.) exposed to salinity stress and exogenous lipoic acid. Journal of Plant Physiology, 179, 90-99.
39
Zhu, M., Simons, B., Zhu, N., David, G., Oppenheimer, M. & Chen, S. (2010). Analysis of abscisic acid responsive proteins in Brassica napus guard cells by multiplexed isobaric tagging. Journal of Proteomics, 73, 790-805.
40
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر مدیریت پسماندها و نظام خاکورزی بر تجمع و انتقال دوبارۀ مواد نورساختی درگندم (Triticum aestivum L.)
بهمنظور بررسی تأثیر روشهای مختلف خاکورزی حفاظتی و مدیریت پسماندها (بقایا) بر ویژگیهای فیزیولوژیکی گندم، آزمایشی در ایستگاه تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی مشهد در سال زراعی 93-92 انجام شد. آزمایش بهصورت کرتهای خردشده در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی در سه تکرار اجرا شد. عامل اصلی شامل شیوههای مختلف خاکورزی در سه سطح (خاکورزی متداول، خاکورزی کم و بدون خاکورزی) و عامل فرعی شامل مدیریت پسماندها در سه سطح (حفظ 0، 30 و 60 درصد پسماندها) بود. طول ساقه، سنبله، دمگل (پدانکل)، طول، سطح و وزن خشک برگ پرچم اندازهگیری شد. نتایج نشان داد، بیشترین مقادیر صفات یادشده در تیمار بدون خاکورزی به دست آمد که به ترتیب معادل 18/91، 04/10، 37/28، 48/22 سانتیمتر، 3/26 سانتیمتر مربع و 194/0 گرم بود. اما در مدیریت پسماندها، هیچکدام از صفات یادشده تفاوت معنیداری را نشان ندادند. تأثیر نظام خاکورزی و مدیریت پسماندها بر مادۀ خشک انتقالیافته از ساقه، اختصاص مواد نورساختی (فتوسنتزی) به سنبله، مشارکت مواد پروردۀ (اسیمیلاتهای) ذخیرهای پیش از گردهافشانی در پر شدن دانه و بازدۀ انتقال دوباره معنیدار نبود. اثر متقابل نظام خاکورزی و مدیریت پسماندها بر طول ساقه معنیدار شد. بیشترین عملکرد دانه در نظام بدون خاکورزی (2/6912 کیلوگرم در هکتار) و در پسماندهای 60 درصد (8/6980 کیلوگرم در هکتار) بود. آزمایش نشان داد خاکورزی حفاظتی همراه با حفظ پسماندهای بیشتر روی سطح خاک موجب بهبود برخی از صفات زراعی و عملکرد گندم میشود و راهکاری برای احیاء منابع و پایداری در تولید است.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64381_d66dba9687c507efc25173dfa2640e54.pdf
2017-11-22
737
748
10.22059/ijfcs.2017.132219.653943
بدون خاکورزی
ساقه
حفاظتی
عملکرد دانه
مواد نورساختی
ابوالفضل
فلاح هروی
falahheravi@yahoo.com
1
دانشجوی دکتری، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه شاهرود
AUTHOR
حمید
عباس دخت
habbasdokht@yahoo.com
2
دانشیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه شاهرود
LEAD_AUTHOR
احمد
زارع فیض آبادی
azarea.2002@yahoo.com
3
استاد، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی مشهد
AUTHOR
اجمد
غلامی
ahgholami@yahoo.com
4
دانشیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه شاهرود
AUTHOR
Ahmadi, A., Joudi, M. & Janmohammdi, M. (2009). Late defoliation and wheat yield: little evidence of post anthesis source limitation. Field Crops Research, 113, 90-93. (in Farsi)
1
Alvear, M., Rosas, A., Rouanet, J. L. & Borie, F. (2005). Effects of three soil tillage systems on some biological activities in an Ultisol from Southerm Chile. Soil Tillage Research, 82,195-202.
2
Araus J. L. Amaro T. Voltas J. Nakkoul H. and Nachit M. M. (1998). Chlorophyll fluorescence as a selection criterion for grain yield in durum wheat under mediterranean conditions. Field Crops Research, 55, 209-223.
3
Austin, R. B., Morgan, G. L., Ford, M. A. & Blackwell, R. D. (1980). Contribution to the grain yield from pre-anthesis assimilation in tall and dwarf barley genotypes. Annals Botany, 45, 309-319.
4
Baker, C. J. & Saxton, K. E. (2007). No-tillage seeding in conversation agriculture. (2nd edu.). From: http://www.fao.org/docrep/012/al298e/al298e.htm.
5
Blum, A. (1988). Physiological selection criteria for drought resistance. In: Wittmer, G. (eds.). The future of cereals for human feeding and development of biotechnological research. Int. Fair of Agric., 39th, Foggia, Italy. pp, 191-199.
6
Blum A. (1999). Improving wheat grain filling under stress by stem reserves mobilization. Euphytica, 100, pp 77-83.
7
Blum, A., Sinmena, B., Mayer, J., Golan, G. & Shpiler, L. (1994). Stem reserve mobilization supports wheat grain filling under heat stress. Australian Journal of Plant Physiology, 21, 771-781.
8
Bonnett, G. D. & Incoll, L. D. (1992). Effects on the stem of winter barley of manipulating the source and sink during grain-filling. Changes in the composition of water-soluble carbohydrates of internodes. Experimental Botany, 44, 75-82.
9
Borras, L., Slafer, G. A. & Otegui, M. E. (2004). Seed dry weight response to source-sink manipulation in wheat, maize and soybean: a quantitative reappraisal. Field Crops Research, 86, 131-146.
10
Buerkert, A., Bationo, A. & Dossa, K. (2000). Mechanisms of residue mulch-induced cereal growth increases in West Africa. Soil Science Society ofAmerica, 64, 347-354.
11
Ceja-Navarro, J. A., Rivera, F. N., Patiño-Zúñiga, L., Vila-Sanjurjo, A., Crossa, J., Govaerts, B. & Dendooven, L. (2010) . Phylogenetic and multivariate analyses to determine the effects of different tillage and residue management practices on soil bacterial communities. Applied and Environmental Microbiology, 76, 3685-3691.
12
Davidson, D. J. & Chevalier, R. M. (1992). Storage and remobilization of water-soluble carbohydrates in stem of spring wheat. Crop Science, 32, 186-190.
13
Ebadi, A., Sahed, K. & Sanjari, A. H. (2011). The effect of irrigation cut on dry matter remobilization and some of agronomy traits on spring barley. Electronic Journal of Crop Production, 4 (4), 19-37. (in Farsi)
14
Ehdaie, B. & Wanies, J. G. (1996). Genetic variation for contribution of pre-anthesis assimilates to grain yield in spring wheat. Journal of Genetics and Breeding, 50, 47-56.
15
Ehdaie, B., Alloush, G. A., Madore, M. A. & Waines, J. G. (2006a). Genotypic variation for stem reserves and mobilization in wheat: I. Postanthesis changes in internode dry matter. Crop Science, 46,735-746.
16
Ehdaie, B., Alloush, G. A. Madore, M. A. & Waines, J. G. (2006b). Genotypic variation for stem reserves and mobilization in wheat. II. Post-anthesis changes in internode water-soluble carbohydrates. Crop Science, 46, 2093-2103.
17
El-Monayeri, M. O., Hegazi, A. M., Ezzat, N. H., Salem, H. M. & Tahom, S. M. (1983). Growth and yield of some wheat and barley varieties grown under different moisture stress levels. Annals of Agricultural and Environmental Medicine, Moshtohor, 2, 231-240.
18
Emam, Y. (2007). Cereal production. Shiraz University Press, Iran. 190 pp. (in Farsi)
19
Entry, J. A., Reeves, D. W., Backman, C. B. & Raper, R. L. (1996). Influence of wheel traffic and tillage on microbial biomass, residue decomposition and extractable nutrients in a Coastal Plain Soil, Plant and Soil, 180, 129-137.
20
Ezatahmadi, M., Normohamadi, G., Ghodsi, M. & Kafi, M. (2011). Effects of water stress and resource constraints on the accumulation and remobilization assimilates in wheat genotypes. Field Crops Research, 9(2), 229-241.
21
Fuentes, M., Govaerts, B., De Leon, F., Hidalgo, C., Dendooven, L., Sayre, K. D. & Etchevers, J. (2009). Fourteen years of applying zero and conventional tillage, crop rotation and residue management systems and its effect on physical and chemical soil quality. Europian Journal of Agronomy, 30, 228-237.
22
Govaerts, B., Sayre, K. D., Goudeseune, B., Corte, P. D., Lichter, K., Dendooven, L. & Deckers, J. (2009). Conservation agriculture as a sustainable option for the central Mexican highlands. Soil and Tillage Research, 103, 222-230.
23
Halvorson, A. D., Peterson, G. A. & Reule, C. A. (2002). Tillage system and crop rotation effects on dryland crop yields and soil carbon in the central Great Plains. Agronomy Journal, 94, 1429-1436.
24
Hobbs, P. R., Sayre, K. & Gupta, R. (2008). The role of conservation agriculture in sustainable agriculture. Philosophical transactions of the royal society. 543-555. from http://rstb.royalsocietypublishing.org/subscriptions
25
Jodi, M., Ahmadi, A., Mohamadi, V., Abasi, A., Mohamadi, H., Esmaeilpour, M., Bayat, Z. & Torkashvand, B. (2010). Study of stem assimilates accumulation and release of Iran wheat cultivars under irrigated and drought or during the reproductive growth phase.Iranian Journal of Field Crop Science, 41(2), 315-328.
26
Le Roux, X., Poly, F., Currey, P., Commeaux, C., Hai, B., Nicol, G. W., Prosser, J. I., Schloter, M. Attard, E. & Klumpp, K. (2008). Effects of aboveground grazing on coupling among nitrifier activity, abundance and community structure. International Society for Microbial EcologyJournal, 2, 221-232.
27
Lichter, K., Govaerts, B., Six, J., Sayre, K. D., Deckers, J. & Dendooven, L. (2008). Aggregation and C and N contents of soil organic matter fractions in a permanent raised-bed planting system in the Highlands of Central Mexico. Plant Soil, 305, 237-252.
28
Mathew, R., Feng, Y., Githinji, L., Ankumah, R. & Balkcom, K. (2012). Impact of no-tillage and conventional tillage systems on soil microbial communities. Applied and Environmental Soil Science. Article ID 548620, 10 pages. From http://www.hindawi.com/journals/aess/2012/548620
29
Mirtaheri, M., Siadat, A., Najafi, M. S., Fathi, G. & Alemi, K. (2010). Effect of drought stress on remobilization of dry matter of five bread wheat cltivars. Iranian Journal of Field Crops Research, 8(2), 308-314. )in Farsi(
30
Mojtabaie Zamani, M., Nabipour, M. & Meskarbashee, M. (2013). Evaluation of stem soluble carbohydrate accumulation and remobilization in spring bread wheat genotypes under terminal heat stress conditions in Ahwaz in Iran. IranianJournal of Crop Sciences, 15(3). 181-198. )in Farsi(
31
Naderi, A. & Moshref, G. (2000). The effects of drought stress on crop yield related traits in wheat genotypes. The SixthCongressof Iran Agronomy and Plant Breeding, Abstracts of articles of Congress, Babolsar, p. 555.
32
Niu, J. Y., Gan, Y. T., Zhang, J. W. & Yang, Q. F. (1993). Post-anthesis dry matter accumulation and redistribution in spring wheat mulched with plastic film. Crop Science, 38, 1562-1568.
33
Papkosta D. K. & Gagianas A. A. (1991). Nitrogen and dry matter accumulation, remobilization, and losses for Mediterranean wheat during grain filling. Journal of Agronomy, 83, 864-870.
34
Patiño-Zúñiga, L., Ceja-Navarro, J. A., Govaerts, B., Luna-Guido, M., Sayre, K. D. & Dendooven, L. (2009). The effect of different tillage and residue management practices on soil characteristics, inorganic N dynamics and emissions of N2O, CO2 and CH4 in the central highlands of Mexico: a laboratory study. Journal of Plant Soil, 314, 231-241.
35
Plaut, Z., Butow, B. J., Blumenthal, C. S. & Wrigkey, C. V. (2004). Transport of dry mater into developing wheat kernels and its contribution to grain yield under post-anthesis water deficit and elevated temperature. Field Crop Research, 86, 185-198.
36
Reeves, D. W., Rogers H. H., Droppers, J. A., Prior, S. A. & Powell, J. B. (1992). Wheel-Traffic effects on corn as influenced by tillage system. Soil tillage Research, 23, 177-192.
37
Robertson, M. J. & Giunta, F. (1994). Responses of spring wheat exposed to pre-anthesis water stress. Australian Journal Agricultural Research, 45, 19-35.
38
Royo, C. & Blanco, R. (1999). Use of potassium iodide to mimic drought stress in triticale. Field Crops Research, 59, 201-212.
39
Saini, H. S. & Westgate, M. E. (2000). Reproductive development in grain crops during drought. Advances in Agronomy, 68, 59-95.
40
Schynder, H. (1993). The role of carbohydrate storage and redistribution in the source-sink relation of wheat and barley during grain filling. New Phytologist, 23, 233-245.
41
Sessiz, A., Alp, A. & Gursoy, S. (2010). Conservation and conventional tillage methods on selected soil physical properties and corn (Zea mays L.) yield and quality under cropping system in Turkey. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 16(5), 597-608.
42
Takahashi, T., Chevalier, P. M. & Rupp, R. A. (2001). Storage and remobilization of soluble carbohydrates after heading in different plant parts of a winter wheat cultivar. Plant Production Science, 4, 160-165.
43
Tarkalsona, D. D., Hergertb, G. W. & Cassman, K. G. (2006). Long-term effects of tillage on soil chemical properties and grain yields of a dryland winter wheat sorghum/corn-fallow rotation in the Great Plains. Agronomy Journal, 98, 26-33.
44
Thierfelder, C. & Wall, P. C. (2010). Rotation in conservation agriculture systems of Zambia: Effects on soil quality and water relations. Experimental Agriculture, 46 (3), 309-325.
45
Tousi-Mojarrad, M. & Ghannadha, M. R. (2006). Evaluation grain yield potential and dry matter remobilization to grain in economical beard wheat variety under normal and water stress conditions. Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources, 10(4), 323-338. (in Farsi(
46
Verhulst, N., Govaerts, B., Nelissen, V., Sayre, K. D., Crossa, J., Raes, D. & Deckers, J. (2011). The effect of tillage, crop rotation and residue management on maize and wheat growth and development evaluated with an optical sensor. Field Crops Research, 120, 58-67.
47
Wardlaw, I. F. & Willenbrink, J. (1994). Carbohydrate storage and mobilization by the culm of wheat between heading and grain maturity: the relation to sucrose synthase and sucrose-phosphate synthase. Australian Journal of Plant Physiology, 21, 255-271.
48
Wilkins, D. E., Simens, M. C. & Albrecht, S. L. (2002). Changes in soil physical characteristics during transition from intensive tillage to direct seeding. Transactions of American Society of Agricultural Engineers, 45(4), 877-880.
49
Yang, J. & Zang, J. (2006). Grain filling of cereals under soil drying. New Phytologist, 169, 223-236.
50
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر افزایش دما و غلظت CO2 ناشی از تغییر اقلیم بر عملکرد گندم در استان خوزستان: یک بررسی همانندسازی
این تحقیق با استفاده از مدلهای گردش عمومی با هدف پیشبینی تأثیر تغییر اقلیم آینده بر عملکرد گندم در هفت شهرستان استان خوزستان انجام شده است. به همین منظور، از مدل گردش عمومی HadCM3 با سه سناریوی انتشار (A2، A1B و B1) طی سه دورۀ زمانی آینده استفاده شد. برای تولید فراسنجه (پارامتر)های اقلیمی روزانه از برنامۀ LARS-WG استفاده شد. از مدل APSIM-Wheat نیز بهمنظور همانندسازی رشد و نمو گندم در شرایط اقلیم استفاده شد. نتایج نشان داد، بیشترین افزایش دما نسبت به دورۀ پایه مربوط به شهرستان اهواز و کمترین افزایش دما در مقایسه با دورۀ پایه در شهرستان ایذه خواهد بود. در بین همۀ مناطق مورد بررسی، عملکرد دانه، زیستتوده و شاخص سطح برگ گندم در آیندۀ استان خوزستان روند افزایشی و طول فصل رشد در این مناطق روند کاهشی خواهد داشت. در این بررسی بیشترین عملکرد دانۀ گندم در شرایط تغییر اقلیم آینده در شهرستان ایذه و رامهرمز (به ترتیب 7691 و 6595 کیلوگرم در هکتار) به دست آمد. بهطورکلی نتایج این تحقیق نشان داد، روند عملکرد دانۀ گندم در استان خوزستان در آینده افزایشی خواهد بود و این افزایش بهطور عمده ناشی از افزایش شاخص سطح برگ (که همبستگی بالایی با عملکرد دانه داشت) است. دیگر صفات مورد بررسی مانند طول فصل رشد در مقایسه با شاخص سطح برگ، تأثیر بسیار کمتری بر افزایش عملکرد دانه در شرایط تغییر اقلیم در استان خوزستان داشت. همچنین مناطقی با دمای کمتر در دورۀ پایه (مانند ایذه) در آینده عملکرد دانۀ بیشتری خواهند داشت.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64382_f89ea45fb2d98757567730255fc580c9.pdf
2017-11-22
749
761
10.22059/ijfcs.2017.135121.653971
مدلسازی
مدلهای گردش عمومی
LARS-WG
APSIM
شبنم
فرشادی
shabnamfarshadiii@gmail.com
1
دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه کشاورزی اکولوژیک، پژوهشکدۀ علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی
AUTHOR
رضا
دیهیم فرد
deihimfard@gmail.com
2
استادیار، گروه کشاورزی اکولوژیک، پژوهشکدۀ علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی
LEAD_AUTHOR
امید
نوری
nouri.omid@gmail.com
3
استادیار، گروه کشاورزی اکولوژیک، پژوهشکدۀ علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی
AUTHOR
جعفر
کامبوزیا
jkambouzia@gmail.com
4
دانشیار، گروه کشاورزی اکولوژیک، پژوهشکدۀ علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی
AUTHOR
Aggarwal, P. K. & Kalra, N. (1994). Simulating the effect of climatic factors, genotype, water and nitrogen availability on productivity of wheat: II. Climatically potential yields and optimal management strategies. Field Crops Research, 38, 93-103.
1
Ainsworth, E. A., Rogers, A., Nelson, R. & Long, S. P. (2004). What have we learned from 15 years of free-air CO2 Enrichment (FACE)? A meta-analytic review of the responses of photosynthesis, canopy properties and plant production to rising CO2. New Phytologist, 165, 351- 372.
2
Attri, S. D. & Rathore, L. S. (2003). Simulation of impact of projected climate change on wheat in India. International Journal of Climatology, 23, 693-705.
3
Deihimfard, R., Nassiri Mahallati, M. & Koocheki, A. (2015). Yield gap analysis in major wheat growing areas of Khorasan province, Iran, through crop modelling. Field Crops Research, 184, 28-38.
4
Eyshi Rezaie, E. & Bannayan, M. (2012). Rainfed wheat yields under climate change in northeastern Iran. Meteorological Application,19, 346-354.
5
Eyni Nargeseh, H., Deihimfard, R., Soufizadeh, S., Haghighat, M. & Nouri, O. (2014). Predicting the effects of climate change on irrigated wheat yield in Fars province using APSIM model. Electronic Journal of Crop Production, (Accepted for Publication). (in Farsi)
6
Hoogenboom, G., Jones, J. W., Porter, C. H., Wilkens, P. W., Boote, K. J., Batchelor, W. D., Hunt, L. A. & Tsuji, G. Y. (2003). Decision Support System for Agrotechnology Transfer Version 4.0. Vol. 1: Overview. University of Hawaii, Honolulu, HI.
7
IPCC. (2014). Summary for policymakers. In: Climate Change 2014: Impacts, Adaptation, and Vulnerability. Part A: Global and Sectoral Aspects. Contribution of Working Group II to the Fifth Assessment Report of the Intergovernmental Panel on Climate Change [Field, C.B., V.R. Barros, D.J. Dokken, K.J. Mach, M.D. Mastrandrea, T.E. Bilir, M. Chatterjee, K.L. Ebi, Y.O. Estrada, R.C. Genova, B. Girma, E.S. Kissel, A.N. Levy, S. MacCracken, P.R. Mastrandrea, and L.L.White (eds.)]. Cambridge University Press, Cambridge, United Kingdom and New York, NY, USA, p. 1150.
8
Koocheki, A., Nassiri, M., Sharifi, H. & Zand, E. (2001). Simulation of growth, phenology and production of Wheat cultivars in effect of climate change under Mashhad conditions. Journal of International Desert Research Center, 6(2), 117-127.
9
Koocheki, A. & Nassiri, M. (2008). Impacts of climate change and CO2 concentration on wheat yield in Iran and adaptation strategies. Journal of Iranian Field Crops Research, 6(1), 139-153. (in Farsi)
10
Lv, Z., Lio, X., Cao, W. & Zhu, Y. (2013). Climate change impacts on regional winter wheat production in main wheat production regions of China. Agricultural of Forest Meteorology, 171, 234-248.
11
Ludwig, F. & Asseng, S. (2006). Climate change impacts on wheat production in a Mediterranean environment in Western Australia. Agricultural System, 90, 159- 179.
12
Luo, Q., Bellotti, W., Williams, M. & Bryan, B. (2005). Potential impact of climate change on wheat yield in South Australia. Agricultural Forest Meteorology, 132, 273-285.
13
Manschadi, A., Soufizadeh, S. & Deihimfard, R. (2010). The role and important of crop modeling in improving crop production in Iran. In Proceeding of 11th Iranian Plant Breeding and Agronomy Congress. 14-17 Sep., Tehran, Iran, pp. 234-247.
14
Nassiri, M., Koocheki, A., Kamali, G. A. & Shahandeh, H. (2006). Potential impact of climate change on rainfed wheat production in Iran. Archives of Agronomy and Soil Science, 52(1), 113-124.
15
Nakicenovic, N. & Swart, R. (2000). Emissions scenarios. Special Report of the Intergovernmental Panel on Climate Change. Cambridge University Press, Cambridge.
16
Ozdogan, M. (2011). Modeling the impacts of climate change on wheat yields in Northwestern Turkey. Agriculture Ecosystem & Environment, 141, 1-12.
17
Warren Wilson, J. (1967). Ecological data on dry-matter production by plants and plant communities. In: Bradley, E.F. & Denmead, O.T. (Ed), The collection and processing of field data (pp, 77– 123). Interscience, New York.
18
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تأثیر مدیریت کاربرد نیتروژن بر تحمل به تنش خشکی و کارایی استفاده از آب باران در گندم دیم
بهمنظور بررسی تأثیر مدیریت کاربرد نیتروژن بر تحمل به تنـش خشکی در گندم دیم، دو آزمایش جداگانه و همزمان در شرایط دیم و آبیاری تکمیلی با سه زمان کاربرد شامل T1- کل نیتروژن در پاییز T2- دوسوم نیتروژن در پاییز و یکسوم در بهار T3- یکدوم نیتروژن در پاییز و یکدوم در بهار بهعنوان کرت اصلی و با پنج سطح نیتروژن شامل 0، 30، 60، 90 و 120 کیلوگرم در هکتار از منبع اوره بهعنوان کرت فرعی با سه تکرار در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی بهصورت کرتهای یکبار خردشده در دو سال زراعی 92-1391 و 93-1392 در ایستگاه تحقیقات کشاورزی دیم قاملو (کردستان) اجرا شد. نتایج نشان داد، که با مصرف نیتروژن، تحمل به تنش خشکی در گندم دیم افزایش یافت. کاربرد نیتروژن، کارایی استفاده از آب باران، کارایی زراعی نیتروژن و تحمل به تنش خشکی را در گندم دیم افزایش داد. کاربرد 60 کیلوگرم در هکتار نیتروژن در پاییز (بدون تقسیط) با بیشترین عملکرد دانه، کارایی زراعی نیتروژن و آب باران و شاخص STI، بهترین تیمار در تحمل به تنش خشکی گندم دیم بود. بین غلظتهای نیتروژن و پتاسیم در برگ، رابطۀ همافزایی (سینرژیستی) برقرار بود. این موضوع نیز مؤید افزایش تحمل به تنش خشکی گندم دیم با مدیریت بهینۀ نیتروژن بود.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64383_4a06ce8ea26584a18f0599b2098ef5d7.pdf
2017-11-22
763
776
10.22059/ijfcs.2017.205843.654099
اوره
خشکی
کارایی زراعی
کارایی استفاده آز آب باران
گندم
محمدحسین
سدری
sedri_mh@yahoo.com
1
استادیار بخش تحقیقات خاک و آب مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی کردستان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، سنندج، ایران
LEAD_AUTHOR
احمد
گلچین
agolchin2011@yahoo.com
2
استاد، گروه خاکشناسی دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه زنجان
AUTHOR
ولی
فیضی اصل
vfeiziasl@yahoo.com
3
استادیار، مؤسسۀ تحقیقات کشاورزی دیم کشور
AUTHOR
عادل
سی و سه مرده
a33@uok.ac.ir
4
دانشیار، گروه زراعت دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه کردستان
AUTHOR
Acevedo, E., Silva, P. & Silva, H. (2009). Wheat growth and physiology. In: B. C. Curtis, Rajaram, S. & Gómez Macpherson, H (Ed), Bread Wheat Improvement and Production. (pp 1-31). Food and Agriculture Organization of the United Nations.
1
Ali-Ehyaei, M. V. & Behbehani-Zadeh, A. A. (1993). Methods of soil analysis (Volume I). Soil and Water Research Institute, Publication No. 893, (pp. 129), Iran. (in Farsi)
2
Anjum, S. A., Xie, X. L., Wang, M. F., Saleem, Man, C. & Lei, W. (2011). Morphological, physiological and biochemical responses of plants to drought stress. African Journal of Agricultural Research, 6(9), 2026-2032.
3
Antep, S. (1997). Evaluation of some chemical of soil nitrogen available based on 15nitrogen technique. Common Soil Sci, Plant Anal, 28, 537- 550.
4
Ayeneh, A., Van Ginkel, M., Reynolds, M. P. & Ammar, K. (2002). Comparison of leaf, spike, peduncle, and canopy temperature depression in wheat under heat stress. Field Crops Research, 79, 173-184
5
Barnabas, B., Jager, K. & Feher, A. (2008). The effect of drought and heat stress on reproductive processes in cereals. Plant, Cell and Environment, 31, 11-38.
6
Brown, P. L. (1971). Water use and soil water depletion by dryland winter wheat as affected by nitrogen fertilization. Agronomy Journal, 63, 43-46.
7
Ejaz, A., Waraich, R., Saifullah, A. & Sabir, M. (2007). Nitrogen Nutrition and water Stress Effects on Growth Yield Water Use Efficiency of Wheat (Triticum aestivum). Pakistan Journal of Agricultural Science, 44(1), 64-73.
8
Elbashier, E. M. E., Tahir, I. S. A., Saad, A. I. & Ibrahim, M. A. S. (2012). Wheat genotypic variability in utilizing nitrogen fertilizer for a cooler canopy under a heat-stressed irrigated environment. African Journal of Agricultural Research, 7(3), 385-392.
9
Feiziasl, V. & Valizadeh, G. R. (2003). The effects of nitrogen rate and application times on wheat yield under dryland farming conditions. Iran. Soil Water Scince Journal, 17, 29-38.
10
Feiziasl, V., Fotovat, A. Astaraei, A., Lekzian, A. & Mosavishaklmani, M. (2014).Determination of soil and plant water balance and its critical stages for rainfed wheat using Crop Water Stress Index (CWSI).Journal of Water and Soil, 28, 804-817. (in Farsi)
11
Feiziasl, V. (2007). Study on the effects of different sources and rates of soil nitrogen on quality and quantities of rainfed wheat. Dry Land Agriculture Research Institute (DARI), Registerd number 86/317, 146. (in Farsi)
12
Fernandez, G. C. J. (1992). Effective selection criteria for assessing stress tolerance. In: Kuo, C. G. (Ed), Proceedings of the International Symposium on Adaptation of Vegetables and Other Food Crops in Temperature and Water Stress. Publication, Tainan, Taiwan, pp 257-270.
13
Fischer, R. A. & Maurer, R. (1978). Drought resistance in spring wheat cultivars. Part 1: Grain yield response. Australian Journal of Agricultural Research, 29, 897-912.
14
French, R. J. & Schultz, J. E. (1984). Water use efficiency of wheat in a Mediterranean- type environment. I. The relation between yield, water use and climate. Australian Journal of Agricultural Research, 35, 743-764.
15
Fowler, D. B., Brydon, J. & Buker, R. J. (1989). Nitrogen fertilization of no-till winter wheat and rye. I. Yield and agronomic responses. Agronomy Journal, 81, 66-72.
16
Ghaffari, A. (2007). Methods of increasing of production in rainfed land of Iran. Publication of agricultural education, pp. 91. (in Farsi)
17
Jepsen, D. R. (2010). Nitrogen management and variety selection for dryland production of hard red winter wheat in Northeastern Oregon. M.Sc. thesis, Oregon State University. pp 97.
18
Jones, M., Mathys, G. & Rijks, D. (1993). The Agrometeorology of rainfed barley-based farming systems. International Symposium, Tunis, 6-10 March, pp. 272-288.
19
Johnston, A. M. & Fowler, D. B. (1992). Response of no-till winter wheat to nitrogen fertilization and drought stress. Canadian Journal of Plant Science, 72, 1075-1089.
20
Hafsi, M., Akhter, J. & Monneveux, P. (2007). Leaf senescence and carbon isotope discrimination in durum wheat (Triticum durum Desf.) under severe drought conditions. Cereal Research Communications, 35, 71-80.
21
Halvorson, A. D., Nielsen, D. C. & Reule, C. A. (2004). Nitrogen fertilization and rotation effects on no-till dryland wheat production. Agronomy Journal, 96, 1196-1201.
22
Johnston, A. M. & Fowler, D. B. (1992). Response of no-till winter wheat to nitrogen fertilization and drought stress. Canadian Journal of Plant Science, 72, 1075-1089.
23
Lopes, M. S. & Araus J. L. (2006). Nitrogen source and water regime effects on durum wheat photosynthesis and stable carbon and nitrogen isotope composition. Physiologia Plantarum, 126(3), 435-445.
24
Malakouti, M. J. & Homaei, M. (2004). Soil fertility in arid regions: Problems and solutions. Tarbiat Modares University Publication. Tehran, Iran. (in Farsi)
25
Malakouti, M. J. & Nafisi, M. (1994). Fertilization of dryland and irrigated soils. Tarbiat Modares University Press. (in Farsi)
26
Meena, N. L. & Seth, J. (1974). Root distribution pattern and nitrogen uptake of some wheat and triticale germplasms in relation to rates and methods of nitrogen application. In: Symposium On use of radiation and radioisotopes in studies of plant productivity. Food and Agric, Committee of the Dept of Atomic energy, Govt, India.
27
Mohammadi, M., Karimizadeh, R. & Naghavi, M. R. (2009). Selection of bread wheat genotypes against heat and drought tolerance based on chlorophyll content and stem reserves. Journal of Agriculture and Social Science, 5(5), 119-122.
28
Nielsen, D. C. & Halvorson, A. D. (1991). Nitrogen fertility influence on wheat stress and yield of winter wheat. Agronomy Journal, 83, 1065-1070.
29
Nielsen, E.T. & Orcutt, D. M. (1996). The Physiology of Plants under Stress: Abiotic Factors. New York, John Wiley and Sons. pp 689.
30
Prihar, S. S., Sandhu, K. S., Singh, M., Verma, H. N. & Singh, R. (1989). Response of dryland wheat to small supplemental irrigation and fertilize nitrogen in Submontane Punjab. Fertilizer Research, 21, 23-28.
31
Reynolds, M. P., Delgado, M. I., Gutierrez-Rodriguez, B. M. & Larque-Saavedra, A. (2000). Photosynthesis of wheat in a warm, irrigated environment. I. Genetic diversity and crop productivity. Field Crops Research, 66, 37–50.
32
Ryan, J., Pala, M., Masri, S., Singh, M. & Harris, H. (2008). Rainfed wheat-based rotations under Mediterranean conditions: Crop sequences, nitrogen fertilization, and stubble grazing in relation to grain and straw quality. European Journal of Agronomy, 28, 112-118.
33
Ryan, J., Nsarellah, N. & Mergoum, M. (1997). N fertilization of durum wheat in the rainfed area of Morocco: biomass, yield. Cereal Res Communications, 25, 85-90.
34
Rosille, A. A. & Hambilin, J. (1981). Theoretical aspects of selection for yield in stress and non-stress environments. Crop Scince, 21, 43-46.
35
Sedri, M. H. & Roohi, I. (2008). To study the effect of nitrogen and potassium fertilizers on drought tolerance, quantity and quality of rain fed wheat (Azar2). Agricultural and Natural Resources Research Center of Kurdistan. Registerd number 88/1537. (in Farsi)
36
Seligman, N., Loomis, G., Burke, R. S. J. & Abshahi, A. E. (1983). Nitrogen nutrition and canopy temperature in field-grown spring wheat. The Journal of Agricultural Science (Cambridge), l0l, 691-697.
37
Sorkhi Lalelou, F., Shakiba, M. R., Dabbagh Mohammadi-Nassab, A. & Mohammadi, S. A. (2010). Effects of drought stress and nitrogen nutrition on seed yield and proline content in bread and durum wheat genotypes. Journal of Food, Agriculture & Environment, 8 (3and 4), 857-860.
38
Van Herwaarden, A. F., Farquhar, G. D., Angus, J. F., Richards, R. A. & Howe, G. N. (1998). Haying-off, the negative grain yield response of dryland wheat to nitrogen fertiliser.I. Biomass, grain yield, and water use. Australian Journal of Agricultural Research, 49, 1067-1081.
39
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر کود دامی و محلولپاشی اسیدهای آمینه بر ویژگیهای رشدی، عملکرد دانه و میزان اسانس گیاه دارویی گشنیز (Coriandrum sativum L.)
با توجه به اثرگذاریهای سوءکاربرد کودهای شیمیایی در بومنظامهای زراعی، بهکارگیری مدیریتهای پایدار عنصرهای غذایی و منابع غیر شیمیایی، از اولویتهای نظامهای تولید پایدار است. این تحقیق بهمنظور بررسی تأثیر کود دامی و محلولپاشی اسیدآمینه بر ویژگیهای کمی و کیفی گیاه دارویی گشنیز در بهار سال 1392 در اراضی تحقیقاتی شرکت کشاورزی ران واقع در فیروزکوه انجام شد. این آزمایش بهصورت فاکتوریل در قالب طرح پایۀ بلوکهای کامل تصادفی در سه تکرار اجرا شد. عامل اول شامل کود دامی در پنج سطح (0، 3، 6، 9 و 12 تن در هکتار) و عامل دوم محلولپاشی ترکیبی تجاری از چند اسیدآمینه (هیومیفورته) در دو سطح (بدون محلولپاشی و محلولپاشی) بودند. صفات مورد بررسی شامل ارتفاع بوته، قطر ساقه، شاخص سطح برگ، عملکرد زیستتوده (بیوماس)، عملکرد دانه و درصد اسانس بودند. نتایج نشان داد، بیشترین ارتفاع بوته (83/62 سانتیمتر) و عملکرد زیستتوده (71/9281 کیلوگرم در هکتار) با کاربرد 9 تن در هکتار کود دامی به دست آمد. ولی کاربرد 12 تن کود دامی در هکتار باعث بیشترین شاخص سطح برگ (42/1)، عملکرد دانه (84/1399 کیلوگرم در هکتار) و درصد اسانس (56/0 درصد) شد. همچنین محلولپاشی اسیدهای آمینه تأثیر معنیداری بر همۀ صفات مورد بررسی داشت. نتایج مقایسۀ میانگین نشان داد، بیشترین ارتفاع بوته (27/61 سانتیمتر)، شاخص سطح برگ (28/1)، عملکرد زیستتوده (15/7693 کیلوگرم در هکتار)، عملکرد دانه (92/1110 کیلوگرم در هکتار) و درصد اسانس (50/0 درصد) از محلولپاشی اسیدآمینه به دست آمد. نتایج این آزمایش نشان داد، کاربرد کود دامی و محلولپاشی اسیدهای آمینه در تأمین عنصرهای غذایی گیاه دارویی گشنیز در نظامهای تولید پایدار نقش مؤثری دارند.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64384_533e50c7ea2c853bd91c5b23e4626a34.pdf
2017-11-22
777
786
10.22059/ijfcs.2017.210745.654144
عملکرد زیستتوده
کود آلی
گشنیز
مادۀ مؤثره
امیر
رضاخانی
organicplant01@gmail.com
1
دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه زراعت، واحد رودهن، دانشگاه آزاد اسلامی، رودهن، ایران
AUTHOR
محمد رضا
حاج سید هادی
mrhshadi@yahoo.com
2
دانشیار، گروه زراعت، واحد رودهن، دانشگاه آزاد اسلامی، رودهن، ایران
LEAD_AUTHOR
Abou Dahab, T. & Abdel-Aziz, N. (2006). Physiological effect of diphenylamine and tryptophan on the growth and chemical constituents of Philodendron erubescens plants. World Journal of Agricultural Science, 2 (1), 75-81.
1
Ahmadian, A., Ghanbari, A. & Galavi, M. (2006). Effects of Manure application on quantitative and qualitative yield and chemical indices of essence of cumin. Iranian Journal of Field Crop Research, 4(2), 207-206. (in Farsi)
2
Akbarinia, A., Ghalavand, A., Sefidcon, F., Rezaee. M.B. & Sharifi Ashoorabadi, E. (2003). Study on the effect of different rates of chemical fertilizer, manure and mixure of them on seed yield and main compositions of essential oil of Ajowan (Trachyspermum copticum). Pajouhesh & Sazandegi, 61, 32-41. (in Farsi)
3
Azzaz, N. A., Hassan, E. A. & Hamad, E. H. (2009). The chemical constituent and vegetative and yielding characteristics of fennel plants treated with organic and bio-fertilizer instead of mineral fertilizer. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 3(2), 579-587.
4
Bastami, A. & Majidian, M. (2015). Effects of Mycorrhiza, Phosphatic Biofertilizer on Photosynthetic Pigments and Yield in Coriander (Coriandrum Sativum L.). Journal of the Plant Production, 38(4), 49-60. (in Farsi)
5
Bigonah, R., Rezvani Moghaddam, P. & Jahan, M. (2014). Effects of Different Fertilizer Managements on Quantitative and Qualitative Characteristics of Coriander (Coriandrum sativum L.) as a Medicinal Plant. Journal of Iranian Field Crop Research, 12(4), 574-581. (in Farsi)
6
Daneshian, J., Rahmani, N. & Alimohammadi, M. (2013). Effects of nitrogen and manure fertilizer application on yield and yield components of calendula (Calendula officinalis L.) Under water deficit stress conditions. Journal of Crop Production Research, 5(3), 251-260. (in Farsi)
7
Darzi, M. T., Hadj Seyed Hadi, M. R. & Rejali, F. (2012). Effects of cattle manure and plant growth promoter bacteria application on some morphological traits and yield in Coriander (Coriandrum sativum L.). Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 28(3), 434-446. (in Farsi)
8
Demir, S. (2004). Influence of Arbuscular mycorrhiza on some physiological growth parameters of pepper. Turkish Journal of Biology, 28, 85-90.
9
Deng, C. H., Song, G. X., Hu, Y. M. & Zhang, X. M. (2003). Determination of the volatile constituents of Chinese Coriandrum sativum L. by gas chromatography – mass Spectrometry with solid – phase microextraction. Chromatographia, 57, 357-361.
10
Entezari, S., Khalatbari, M., Nasri, M. & Zakeri Mohammadabadi, A. (2008). The effect of amino acid spraying on water deficit in wheat in varamin condition. Plant and Ecosystem, 4(14), 64-76. (in Farsi)
11
Fallahi, J., Koocheki, A. & Rezvani Moghadam, P. (2008). Effects of organic fertilizers on quantitative indices and chamazulen in chamomile (Matricaria chamomilla L.). Journal of Agricultural Research: Water, Soil and Plant in Agriculture, 8(1), 157-168. (in Farsi)
12
Faten, S. A., Shaheen, A. M., Ahmad, A. A. & Mahmoud, A. R. (2010). Effect of foliar application of amino acids as antioxidants on growth, yield and characteristics of squash. Research Journal of Agriculture and Biological Science, 6 (5), 583-588.
13
Gawronak, H. (2008). Biostimulators in modern agriculture (general aspects). Arysta Life Science. Published by the editorial House wies Jutra, Limited. Warsaw.
14
Ghanepasand, F., Noormohamadi, G., Haj Seyed Hadi, M. R. & Darzi, M. T. (2014). Influence of manure application and nitrogen fixing bacteria on yield and yield components of black cumin (Nigella sativa L.). International journal of Advanced Biological and Biomedical Research, 2(3), 628-635.
15
Ghazi Manas, M., Banj Shafiee, S., Haj Seyed Hadi, M. R. & Darzi, M. T. (2013). Effects of vermicompost and nitrogen on quantitative and qualitative yeild of chamomile (Matricaria chamomilla L.). Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 29(2), 269-280. (in Farsi)
16
Golzadeh, H., Mehrafarin, A., Naghdi Badi, H., Fazeli, F., Ghaderi, A. & Zarincheh, N. (2011). Effects of bio-stimulants on quantitative and qualitative yield of German chamomile. Journal of Medicinal Plants, 11(41), 195-207. (in Farsi)
17
Haj Seyed Hadi, M.R., Darzi, M.T., Ghandehari, Z. & Riazi, G. (2011). Effects of vermicompost and amino acids on the flower yield and essential oil production from Matricaria chamomile L. Journal of Medicinal Plants Research, 5(23), 5611-5617.
18
Haj Seyed Hadi, M. R. & Rezaee Ghale, H. (2016). Effects of vermicompost and foliar application of amino acids and urea on quantitative and qualitative yield of chamomile (Matricaria chamomilla L.). Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 31(6), 1057-1070. (in Farsi)
19
Hossaini, S. ., Yousefzadeh, S., Yerltsyan, S. & Hemmati, K. (2015). Effects of chemical and organic fertilizers on leaf area index, yield and yield components of pumpkin. Journal of Agroecology, 1(5), 12-24. (in Farsi)
20
Hussein, M. S., EL-Sherbeny, S. E., Khalil, M. Y., Naguib, N. Y. & Aly, S. M. (2006). Growth characters and chemical constituents of Dracocephalum moldavica. Plant in relation to compost fertilizer and planting distance. Scientia Horticulturae, 108(3), 322-331.
21
Jahan, M., Koochaki, A., Nassiri Mahallati, M. & Dehghanipor, F. (2007). The effects of different manure levels and two branch management methods on organic production of Cucurbita pepo L. Journal of Iranian Field Crop Research, 5(2), 281-290. (in Farsi)
22
Kaplan, M., Kocabas, L., Sonmez, L. & Kalkan, H. (2009). The effects of different organic manure applications on the dry weight and the essential oil quantity of Sage (Salvia Fruticosa mill). Acta Horticulturae, 826, 147-52.
23
Khalid, K. A. & Shafei, A. M. (2005). Productivity of dill (Anethum graveolens L.) as influenced by different organic manure rates and sources. Arab universities journal of Agricultural Science, 13(3), 901-13.
24
Koocheki, A., Gholami, A., Mahdavi Damghani, A. & Tabrizi, L. (2005). Organic field crops handbook. Ferdowsi University of Mashhad Press. Publicatio no. 446, 385 p. (in Farsi)
25
Koocheki, A., Tabrizi, L. & Mahallati, M.N. (2007). The effects of irrigation intervals and manure on quantitative and qualitative characteristics of Plantago ovata and Plantago psyllium. Asian Journal of Plant Sciences, 6(8), 1229-1234.
26
Koocheki, A. & Sabet Teimori, M. (2012). Effect of irrigation intervals, type of fertilizers and harvesting time on essence content and yield of three medicinal plants: lavender (Lavandula angustifolia), rosemary (Rosemarinus officinalis) and hyssop (Hyssopus officinalis) in Mashhad Condition. Journal of Iranian Field Crop Research, 10(3), 485-494. (in Farsi)
27
Mahmoodi, M. & Alizadeh, K. (2014). Effect of free amino acids on the yield quality and quantity of forage varieties Gole-Sefid (Vicia panonica) in rainfed conditions. Iranian Journal of Dry Farming, 2(2), 115-127. (in Farsi)
28
Makkizadeh Tafti, M., Nasrollahzadeh, S., Zehtab Salmasi, S., Chaychi, M. R. & Khavazi, K. (2013). The effects of organic, biologic and chemical fertilizers on quantitative and qualitative characteristics of sweet basil (Ocimum basilicum L.). Journal of Agriculture and Sustainable Production, 22(1), 1-12. (in Farsi)
29
Mandal, A., Patra, A. K., Singh, D., Swarp, A. & Ebhin Masto, R. (2007). Effect of Long-term application of manure and fertilizer on biological and biochemical activities in soil during crop development stages. Bioresource Technology, 98, 3585- 3592.
30
Minaee, P., Haj Seyed Hadi, M. R., Darzi, M. T. & Shahsavar, A. M. (2013). Effects of nitrogen fixing bacteria and amino acids spraying on yield and yield components of mungbean (Vigna Radiata). Annals of Biological Research, 4(8), 265-269.
31
Pouryousef, M., Mazaheri, D., Chaiechi, M. R., Rahimi, A. & Tavakolie, A. (2010). Effect of different soil fertilizing treatments on some of agro-morphological traits and mucilage of Isabgol (Plantago ovata Forsk). Electronic Journal of Plant Production, 3(2), 193-213. (in Farsi)
32
Raeisi, M., Farahani, L. & Palashi, M. (2014). Changes of qualitative and quantitative properties of radish (Raphanus sativus L.) under foliar spraying through amino acid. International Journal of Biosciences, 4(1), 463-468.
33
Rao, B. R. R. (2001). Biomass and essential oil yields of rainfed palmarosa (Cymbopogon martini) supplied with different levels of organic manure and fertilizer nitrogen in semi-arid tropical climate. Industrial Crops and Products, 14(3), 171-178.
34
Rezaei, H. (2013). A Reviow of Research on Application of Livestock Manure in Agricultural Land of Iran. Land Management Journal, 1(1), 55-68. (in Farsi)
35
Rezvani Moghadam, P., Amin Ghafoori, A., Bakhshaei, S. & Jafari, L. (2013). Study the effects of biological and organic fertilizers on quantitative traits and essential oil of savoy (Satureja hortensis L.). Journal of Agroecology, 5(2), 105-112. (in Farsi)
36
Saburi, M., Haj Seyed Hadi, M. R. & Darzi, M. T. (2014). Effects of amino acids and nitrogen fixing bacteria on quantitative yield and essential oil content of basil (Ocimum basilicum). Journal of Agricultural Science Developments, 3(8), 265-268.
37
Saeednejad, A. H. & Rezvani Moghadam, P. (2011). Evaluate the effect of compost, vermicompost and manure on yield, yield component, and essential oil percentage of cumin (Cuminum cyminum). Journal of Horticultural Science, 24(2), 142-148. (in Farsi)
38
Salehi, A., Fallah, S., Irani Pour, R. & Abbasi Souraki, A. (2014). Effects of time of chemical fertilizer application integrated with manure on growth, yield and yield components on black cumin (Nigella sativa L.). Journal of Agroecology, 6(3), 495-507. (in Farsi)
39
Salem, A. G. & Awad, A. M. (2005). Response of coriander plants to organic and mineral fertilizers fertigated in sandy soils. Egyptian Journal of Agricultural Research, 83(2), 829-858.
40
Scheffer, M. C., Ronzelli Junior, P. & Koehler, H. S. (1993). Influence of organic fertilization on the biomass, yield and composition of the essential oil of Achillea millefolium L. Acta horticulturae, 331, 109-14.
41
Sefidkon, F. (1999). Study of essential oil in aboveground and seeds of coriander. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 13(13), 32-38. (in Farsi)
42
Sharma, A.K. (2002). A hand book organic farming. Agrobios, India, 627pp.
43
Tabrizi, L., Dezhban, F., Mostofi, Y. & Moridi, M. (2011). Study on the effect of organic inputs on growth, yield and quality characteristics of pot marigold (Calendula officinalis L.). Journal of Agroecology, 2(1), 34-51. (in Farsi)
44
Thomas, J., Mandal, A. K. A., Raj Kumar, R. & Chrodia, A. (2009). Role of biologically active amino acid formulations on quality and crop productivity of Tea (Camelia sp.). International Journal of Agricultural Research, 4, 228-36.
45
Yadav, R. D., Keshwa, G. L. & Yadva, S. S. (2002). Effect of integrated use of FYM, urea and sulphur on growth and yield of isabgol (Plantago ovata). Journal of Medicinal and Aromatic Plant Science, 25, 668-671.
46
ORIGINAL_ARTICLE
تغییر عملکرد و اجزای عملکرد دو رقم نخود تحت تأثیر مزوریزوبیوم و قارچریشه در مقادیر مختلف کود آغازگر نیتروژن
یکی از راههای رسیدن به پایداری در نظامهای زراعی استفاده از قابلیت ریزجانداران سودمند در جهت بهبود رشد گیاه و کاهش کاربرد کودهای شیمیایی است. بنابراین بهمنظور بررسی تغییر عملکرد و اجزای عملکرد دو رقم نخود تحت تأثیر مزوریزوبیوم و قارچریشه (مایکوریزا) در مقادیر مختلف کود آغازگر نیتروژن، آزمایشی در بهار و تابستان 1394 در مزرعۀ تحقیقاتی دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه بوعلیسینا، اجرا شد. آزمایش بهصورت فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار اجرا شد.عاملهای مورد آزمایش شامل تلقیح بذرها با مزوریزوبیوم Mesorhizobium ciceri (دو سطح کاربرد و بدون کاربرد)، قارچریشه Glomus mosseae (دو سطح کاربرد و بدون کاربرد) و کود آغازگر نیتروژن (0،30 و60 کیلوگرم نیتروژن در هکتار) بود که برای هر دو رقم نخود آزاد و هاشم جداگانه بررسی شد. نتایج آزمایش نشان داد، بیشترین عملکرد دانه و زیستتوده (به ترتیب 46/2013 و 3/5341 کیلوگرم در هکتار) در رقم هاشم در شرایط کاربرد همزمان قارچریشه و مزوریزوبیوم در سطح 30 کیلوگرم نیتروژن در هکتار به دست آمد. درحالیکه در رقم آزاد بیشترین عملکرد دانه و زیستتوده (به ترتیب 6/2283 و 8/4042 کیلوگرم در هکتار) در شرایط کاربرد همزمان منابع زیستی در سطح 60 کیلوگرم نیتروژن در هکتار به دست آمد که البته با سطح 30 کیلوگرم در هکتار نیتروژن در حضور هر دو کود زیستی، تفاوت معنیداری نشان نداد. بنابر نتایج، کاربرد جداگانه و بهویژه همزمان کودهای زیستی مورد بررسی میزان نیاز به کود آغازگر نیتروژن را میتواند در هر دو رقم تا حد 50درصد کاهش دهد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64535_12ca3b09812cb28333f9ef72af3f8af2.pdf
2017-11-22
787
798
10.22059/ijfcs.2017.216510.654183
آزاد
تلقیح
وزن صددانه
هاشم
محمدعلی
ابوطالبیان
aboutalebianmail@gmail.com
1
استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان
LEAD_AUTHOR
مجتبی
شیرین آبادی
m.shirinabadi93@gmail.com
2
دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان
AUTHOR
Aghaee Sarbarzeh, M. & Kanouni, H. (2004). Chickpeas. Jihad-e-Agriculture Organization of Kermanshah. P. 146. (in Farsi)
1
Ahmed, E. A. E. (1996). Effect of rhizobium inoculation and nitrogen fertilization, nitrogen fixation on yield of different chickpea cultivars. Ph.D. thesis. University of Khartoum, Sudan.
2
Akhtar, S. & Siddiqui, Z. (2008). Biocontrol of a root-rot disease complex of chickpea by Glomus intarradics Rhizobium sp. and Pseudomonas straita. Crop Protection, 27, 410-417.
3
Amirabadi, M., Ardakani, M. R., Rejaji, F. & Borji, M. (2009). Effects of Azotobacter chroococcum and mycorrhizal fungus at different levels of phosphorus on qualitative and morphological characteristics of forage maize (K SC 704). Iranian Journal of Soil Research (Formerly soil and water science), 23, 107- 115. (in Farsi)
4
Auge, R. M. (2001). Water relations, drought and vesicular-arbuscular mycorrhizal symbiosis. Mycorrhiza, 11, 3-42.
5
Behl, R. K., Ruppel, S., Kothe, E. & Narula, N. (2007). Wheat x Azotobacter x VA mycorrhiza interactions towards plant nutrition and growth. Journal of Applied Botany and Food Quality, 81, 95-109.
6
Ben Romdhane, S., Aouani, M. E., Trabelsi, M., Lajudie, P. & Hamdi, R. (2008). Selection of high nitrogen-fixing rhizobia nodulating chickpea (Cicer arietinum L.) for semi-arid Tunisia. Journal of Agronomy and Crop Science, 194, 413-420.
7
Geneva, M., Zehirov, G., Djonova, E., Kaloyanova, N., Georgiev, G. & Stancheva, I. (2006). The effect of inoculation of pea plants with mycorrhizal fungi and rhizobium on nitrogen and phosphorus assimilation. Journal of Plant and Soil Environtment, 52, 435-440.
8
Guler, M., Adak, M. S. & Ulukan, H. (2001). Determining relationships among yield and yield components using path coefficient analysis in chickpea (Cicer arietinum L.). European Journal of Agronomy, 14, 161-166.
9
Hartnett, D. C. & Wilson, G. W. T. (2002). The role of mycorrhizas in plant community structure and dynamics: Lessons from grasslands. Plant and Soil, 244, 319-331.
10
Jiriaie, M., Fateh, E. & Aynehband, A. (2013). The consequences of the application of mycorrhiza and azospirillum inoculants on yield and yield components of wheat cultivars. Journal of Agroecology, 6, 520-528. (in Farsi)
11
Jiriaie, M., Fateh, E. & Aynehband, A. (2014). Evaluation the some root properties in treated wheat cultivars with mycorrhiza and azospirillum. Journal of Sustainable Agriculture and Production Science, 24, 61-73. (in Farsi)
12
Kantar, F., Elkoca, E., Ogutcu, H. & Algur, O. F. (2003). Chickpea yield in relation to rhizobium inoculation from wild chickpea at high altitudes. Journal of Agronomy and Crop Science, 189, 291-297.
13
Kanuny, H. & Rajendra, S. M. (2003). The study of genetic diversity among agronomic traits in chickpea lines in dry conditions. Journal of Agricultural Science, 5, 185-193. (in Farsi)
14
Karimi, K., Bolandnazar, S. A. & Ashoori, S. (2013). Effect of bio-fertilizer and arbuscular mycorrhizal fungi on yield, growth characteristics and quality of green bean (Phaseolous vulgaris L.). Journal of Sustainable Agriculture and Production Science, 23, 157-167. (in Farsi)
15
Khodarahmi, M., Sabaghpour, S. A. & Farnia, A. (2013). Effect of different strains of rhizobium on seed yield and its components of improved chickpea (Cicer arietinum L.) cultivars. Seed and Plant Production Journal, 29-2, 403-412. (in Farsi)
16
Khosrojerdi, M., Shahsavani, Sh., Gholipor, M. & Asghari, H. R. (2013). Effect of rhizobium inoculation and mycorrhizal fungi on some nutrient uptake by chickpea at different levels of iron sulfate fertilizer. Electronic Journal of Crop Production, 6, 71-87. (in Farsi)
17
Mahmood, A. & Athar, M. (2008). Cross inoculation studies: Response of Vigna mungo to inoculation with rhizobia from tree legumes growing under arid environment. International Journal of Environment Science and Technology, 5, 135-139.
18
Marschner, H. (1995). Mineral nutrition of higher plants. Academic Press. San Diego, CA. USA. 849 pp.
19
Mehrvarz, S. & Chaichi, M. R. (2008). Effect of phosphate solubilizing microorganisms and phosphorus chemical fertilizer on forage and grain quality of barely (Hordeum vulgare L.). American-Eurasian Journal of Agriculture and Environment Science, 3, 855-860.
20
Mohammadi, E., Asghari, H. R. & Gholami, A. (2013). Effect of mycorrhiza inoculation and phosphorus fertilizer on some growth indices of chickpea (Cicer arietinum L.) Hashem cultivar. Journal of Agroecology, 5, 263-271. (in Farsi)
21
Saini, V. K., Bhandari, S. C. & Tarafdar, J. C. (2004). Comparison of crop yield, soil microbial C, N and P, N-fixation, nodulation and mycorrhizal infection and non-inoculated sorghum and chickpea crops. Field Crops Research, 89, 39- 47.
22
Sivaramaiah, N., Malik, D. K. & Sindhu, S. S. (2007). Improvement in symbiotic efficiency of chickpea (Cicer arietinum L.) by co-inoculation of bacillus strains with Mesorhizobium sp. Cicer. Indian Journal of Microbiology, 47, 51-56.
23
Soleimani, R. & Asgharzadeh, A. (2010). Effects of mesorhizobium inoculation and fertilizer application on yield and yield components of rainfed chickpea. Iranian Journal of Pulses Research,1, 1-8.(in Farsi)
24
Soltani, A., Hammer, G. L., Torabi, B., Robertson, M. J. & Zeinali, E. (2006). Modeling chickpea growth and development: phenological development. Field Crops Research, 99, 1-13.
25
Stephan, K. B. (2000). Evaluation of granular rhizobium inoculant for chickpea. Ph.D. Thesis. University of Saskatchewan, Canada.
26
Yasari, E. & Patwardhan, A. M. (2007). Effects of Aztobacter and Azospirillum inoculations and chemical fertilizers on growth and productivity of Canola. Asian Journal Plant Sciences, 6(1), 77-82.
27
Zaidi, M. D., Saghir Khan, M. D. & Amil, A. (2003). Interactive effect of rhizotrophic microorganisms on yield and nutrient uptake of chickpea (Cicer arietinum L.). European Journal of Agronomy, 19, 15-21.
28
ORIGINAL_ARTICLE
برآورد تاریخ کاشت بهینه بر پایۀ تاریخچۀ اقلیمی با استفاده از مدل همانندساز رشد AquaCrop در منطقۀ دشت مغان استان اردبیل
از مدلAquaCrop برای برآورد تاریخ کاشت مناسب برای تولید بیشترین عملکرد بر پایۀ تاریخچۀ اقلیمی منطقۀ دشت مغان استفاده شد. برای این منظور با استفاده از دادههای پدیدشناختی (فنولوژیک) هشت گیاه زراعی عمده در دشت مغان، در کنار دادههای اقلیمی سیسالۀ این منطقه، پس از واسنجی (کالیبراسیون) مدل، تاریخ کاشت بهینۀ هر محصول تعیین شد. مدل با استفاده از درجۀ روز رشد تجمعی، آستانههای دمایی فعال و مؤثر و شاخص برداشت محاسباتی، عملکرد هر محصول را محاسبه کرد. ضریب تشخیص، ریشۀ میانگین مربعات خطای نرمال و شاخص تطابق به ترتیب 99/0، 16/29 و 97/0 بود. این آمارها نشاندهندۀ کارکرد مناسب مدل در برآورد عملکرد محصولات عمدۀ زراعی در منطقه است. بر پایۀ نتایج، بازۀ کاشت همانندسازیشده برای گندم پاییزه کوتاهتر بود. محصول جو پاییزه نیز از روند همسانی با گندم پاییزه پیروی میکرد. بازۀ کاشت ذرت بهاره درازمدتتر از بازۀ معمول منطقه بود، اما بازۀ کاشت همانندسازیشده در کلزا پاییزه، پنبه، سویا و ذرت کشت دوم همسان با بازۀ کشت منطقه بود. همچنین نیاز آبی گیاهان باغی مختلف در تاریخ کاشتهای تعیینشده نیز توسط مدل محاسبه شد. این نتایج با خروجی نرمافزار NETWAT برای این منطقه مقایسه شد. در این مقایسه ضریب تبیین، 92/0 و ریشۀ میانگین مربعات خطای نرمالشده، 07/14 و شاخص تطابق، 99/0 محاسبه شد. بنا بر نتایج، کشت گیاهان پاییزه بهمنظور بهرهمندی هرچه بیشتر از بارندگیهای فصلهای پاییز و زمستان در منطقه و کاهش مصرف آب آبیاری، باید توجه بیشتر شود.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64536_b400298c7ff70a60c34f58a69f8a13ef.pdf
2017-11-22
799
810
10.22059/ijfcs.2017.219241.654211
بازۀ کاشت
درجۀ روز رشد تجمعی
کارایی مصرف آب
امیر
ایزدفرد
aizadfard@gmail.com
1
دانشجوی دکتری اکولوژی گیاهان زراعی، گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
محمدرضا
جهانسوز
jahansuz@ut.ac.ir
2
استاد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
LEAD_AUTHOR
فریدون
سرمدیان
fsarmad@ut.ac.ir
3
استاد، گروه مهندسی علوم خاک، دانشکدۀ مهندسی و فناوری کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
غلامرضا
پیکانی
peykani@yahoo.com
4
دانشیار، گروه اقتصاد کشاورزی، دانشکدۀ اقتصاد و توسعۀ کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
محمدرضا
چایی چی
rchaichi@ut.ac.ir
5
استاد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
Abdoli, P., Siadat, S. A. E., Fathi, G. & Farshadfar, E. (2004). Effect of planting date on yield criteria of some canola genotypes in Kermanshah. Scientific Journal of Agriculture, 27(1), 105-118. (in Farsi)
1
Abedinpour, M., Sarangi, A., Rajput, T. B. S., Singh, M. & Ahmad, T. (2012). Performance evaluation of aquacrop model for maize crop in a semi-arid environment. Agricultural Water Management, 110, 55-66.
2
Abrha, B., Delbecque, N., Raes, D., Tsegay, A., Todorovic, M., Heng, L. & Deckers, S. (2012). Sowing strategies for barley (Hordeum vulgare L.) based on modelled yield response to water with AquaCrop. Experimental Agriculture, 48(02), 252-271.
3
Andarzian, B., Hoogenboom, G., Bannayan, M., Shirali, M. & Andarzian, B. (2015). Determining optimum sowing date of wheat using CSM-CERES-Wheat model. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences, 14(2), 189-199.
4
Arshad, M., Wajid, A., Maqsood, M., Hussain, K., Aslam, M. & Ibrahim, M. (2007). Response of growth, yield and quality of different cotton cultivars to sowing dates. Pakistan Journal of Agricultural Science 44(2), 208-212.
5
Bastidas, A. M., Setiyono, T. D., Dobermann, A., Cassman, K. G., Elmore, R. W. & Specht, J. E. (2008). Soybean sowing date: The vegetative, reproductive, and agronomic impacts. Crop Science, 48(2), 727-740.
6
Chanders, S., Kumar, P. R., Bhadrarays, S. & Barmanl, D. (2008). Effect of increasing temperature on yield of some winter crops in northwest India. Current Science, 94(1), 82-88.
7
Cirilo, A. G. & Andrade, F. H. (1994). Sowing date and maize productivity: I. Crop growth and dry matter partitioning. Crop Science, 34(4), 1039-1043.
8
Deb, P. & Babel, S. (2015). Assessment of impacts of climate change and adaptation measures for maize production in East Sikkim, India. Hydrology and Meteorology, 9(1), 15-27.
9
Dera, J., Mpofu, L. T. & Tavirimirwa, B. (2014). Response of pearl millet varieties to different dates of sowing at Makoholi and Kadoma research stations, Zimbabwe. Academia Journal of Agricultural Research, 2(4), 110-113.
10
Hasanvand, M., Joolaie, R., Keramatzadeh, A. & Eshraghi, F. (2013). Studying impact of available water quantity decrease on cropping pattern of agriculture crops to confronting drought condition: case study Neka city, Mazandaran province. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 6(10), 600.
11
Igartua, E., Gracia, M. P. & Lasa, J. M. (1995). Field responses of grain sorghum to a salinity gradient. Field Crops Research, 42(1), 15-25.
12
Jamieson, P. D., Porter, J. R. & Wilson, D. R. (1991). A test of the computer simulation model ARCWHEAT1 on wheat crops grown in New Zealand. Field Crops Research, 27(4), 337-350.
13
Masanganise, J., Chipindu, B., Mhizha, T. & Mashonjowa, E. (2012). Model prediction of maize yield responses to climate change in north-eastern Zimbabwe. African Crop Science Journal, 20(2), 505-515.
14
Mhizha, T., Geerts, S., Vanuytrecht, E., Makarau, A. & Raes, D. (2014). Use of the FAO AquaCrop model in developing sowing guidelines for rainfed maize in Zimbabwe. Water, 40(2), 233-244.
15
Mugalavai, E. M., Kipkorir, E. C., Raes, D. & Rao, M. S. (2008). Analysis of rainfall onset, cessation and length of growing season for western Kenya. Agricultural and Forest Meteorology, 148(6), 1123-1135.
16
Paredes, P., Wei, Z., Liu, Y., Xu, D., Xin, Y., Zhang, B. & Pereira, L. S. (2015). Performance assessment of the FAO AquaCrop model for soil water, soil evaporation, biomass and yield of soybeans in North China Plain. Agricultural Water Management, 152, 57-71.
17
Pedersen, P. & Lauer, J. G. (2004). Response of soybean yield components to management system and planting date. Agronomy Journal, 96(5), 1372-1381.
18
Raes, D., Steduto, P., Hsiao, T. C. & Fereres, E. (2009). AquaCrop-the FAO crop model to simulate yield response to water: reference manual annexes. Agronomy Journal, 101(3), 426-437.
19
Rao, N. K., Gadgil, S., Rao, S. P. & Savithri, K. (2000). Tailoring strategies to rainfall variability-The choice of the sowing window. Current Science, 78(10), 1216-1230.
20
Razmi, N. (2011). Effect of sowing date and plant density on some agronomic characteristics, grain yield and its components in soybean genotypes in Moghan region. Seed and Plant Production Journal, (4), 403-418. (in Farsi)
21
Saab, M. A., Albrizio, R., Nangia, V., Karam, F. & Rouphael, Y. (2014). Developing scenarios to assess sunflower and soybean yield under different sowing dates and water regimes in the Bekaa valley (Lebanon): Simulations with AquaCrop. International Journal of Plant Production, (8), 4-12.
22
Sacks, W. J., Deryng, D., Foley, J. A. & Ramankutty, N. (2010). Crop planting dates: an analysis of global patterns. Global Ecology and Biogeography, 19(5), 607-620.
23
Salazar-Gutierrez, M. R., Johnson, J., Chaves-Cordoba, B. & Hoogenboom, G. (2013). Relationship of base temperature to development of winter wheat. International Journal of Plant Production, 4(14), 741-762.
24
Stricevic, R., Cosic, M., Djurovic, N., Pejic, B. & Maksimovic, L. (2011). Assessment of the FAO AquaCrop model in the simulation of rainfed and supplementally irrigated maize, sugar beet and sunflower. Agricultural Water Management, 98(10), 1615-1621.
25
Torriani, D., Calanca, P. L., Schmid, S., Beniston, M. & Fuhrer, J. (2007). Potential effects of changes in mean climate and climate variability on the yield of winter and spring crops in Switzerland. Climate Research, 34, 59-69.
26
Willmott, C. J., Ackleson, S. G., Davis, R. E., Feddema, J. J., Klink, K. M., Legates, D. R. & Rowe, C. M. (1985). Statistics for the evaluation and comparison of models. Journal of Geophysical Research, 90(5), 8995-9005.
27
Yousofinia, M., Ghassemian, A., Sofalian, O. & Khomari, S. (2012). Effects of salinity stress on barley (Hordeum vulgare L.) germination and seedling growth. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 4(18), 1353-1357.
28
Zamani, A. S. & Nasseri, A. (2008). Response of dryland wheat production and precipitation water productivity to planting date. Asian Journal of Plant Sciences, 7(3), 323-326.
29
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تأثیر اندول استیک اسید و آبسیزیک اسید بر غدهزائی در گیاه سیبزمینی (Solanum tuberosum)
در این پژوهش تأثیر هورمونهای اندول استیک اسید (IAA) و آبسیزیک اسید (ABA) بر غدهزائی در سیبزمینی رقم آگریا (Agria) در شرایط گلخانهای بررسی شد. ریز غدههای بدون عاملهای بیماریزا به گلدانهایی با خاک مناسب و ضدعفونی شده منتقل شدند. گیاهچهها در طرح فاکتوریل در مرحلۀ 7-8 برگی با غلظتهای 0، 5 و 10 میکرومولار IAA و 0، 5/2 و 5 میکرومولار ABA محلولپاشی شدند. نتایج نشان داد، با کاربرد IAA سطح برگ کاهش ولی با کاربرد ABA سطح برگ افزایش پیدا میکند. همچنین با افزایش غلظت هر دو هورمون شمار برگ و شمار غده افزایش پیدا میکند. افزون بر این با افزایش غلظت ABA، وزن غده و وزن اندامهای هوائی کاهش پیدا میکند. نتایج نشان داد، با افزایش IAA، سبزینۀ (کلروفیل) کل و کاروتنوئیدها افزایش ولی با افزایش ABA، میزان آنها کاهش پیدا میکند. همچنین با افزایش IAA، فعالیت آنزیمهای پراکسیداز و پلی فنل اکسیداز در برگ گیاهان یک روند کاهشی دارند درصورتیکه با افزایش ABA روند فعالیت این آنزیمها افزایشی است. به نظر میرسد که تأثیر هورمونهای اکسین و آبسیزیک اسید روی غدهزائی در سیبزمینی بهصورت متضاد باشد، هرچند این تأثیر ناهمسازی (آنتیگونیستی) بهصورت کامل (100درصد) نیست و به غلظت هورمونهای بهکاررفته و شرایط و مراحل رشد و اندامهای مورد بررسی در گیاه بستگی دارد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64537_874c5120b0dd70a87f84af8fe9fc7520.pdf
2017-11-22
811
824
10.22059/ijfcs.2017.216939.654186
آبسیزیک اسید
اکسین
سیبزمینی
سبزینه
غدهزائی
کاروتنوئید
محمد رضا
هادی
hadi_mohammadreza@yahoo.com
1
استادیار گروه زیست شناسی دانشگاه آزاد اسلامی واحد مرودشت
LEAD_AUTHOR
Auldridge, M. E., Block, A., Vogel, J. T., Dabney-Smith, C., Mila, I., Bouzayen, M., Magallanes-Lundback, M., DellaPenna, D., McCarty, D. R. & Klee, H. J. (2006). Characterization of three members of the Arabidopsis carotenoid cleavage dioxygenase family demonstrates the divergent roles of this multifunctional enzyme family. The Plant Journal, 45(6), 982-993.
1
Balali, G. R., Hadi, M. R., Naderi, A. G., Eslami, A. H., Yavari, P. & Bidram, H. (2008). Effect of pot size, date of planting and germplasm on mini tuber production of potato. African Journal of Biotechnology, 7(9), 1265-1270.
2
Battal, P., Turker, M. & Tileklioğlu, B. (2003). Effects of different mineral nutrients on abscisic acid in maize (Zea mays). In Annales Botanici Fennici, 40, 301-308.
3
Carrera, E., Bou, J., Garcia-Martinez, J. L. & Prat, S. (2000). Changes in GA 20-oxidase gene expression strongly affect stem length, tuber induction and tuber yield of potato plants. Plant Journal, 22, 247-256.
4
Cline, M. G. & Oh, C. (2006). A reappraisal of the role of abscisic acid and its interaction with auxin in apical dominance. Annals of botany, 98(4), 891-897.
5
Davies, P. (2013). Plant hormones: physiology, biochemistry and molecular biology. Springer Science & Business Media.
6
Ewing, E. E. (1995). The role of hormones in potato (Solanum tuberosum L.) tuberization. In Plant hormones (pp. 698-724). Springer Netherlands.
7
George, E. F., Hall, M. A. & De Klerk, G. J. (2008). Plant growth regulators I: introduction; auxins, their analogues and inhibitors. In Plant propagation by tissue culture (pp. 175-204). Springer Netherlands.
8
Hadi, M. R. (2012) Plant Metabolism (Vol. 1). Islamic Azad University Press, Marvdasht Branch (Sciences and Research Branch), 1-376. (in Farsi)
9
Hadi, M. R. (2013) Mechanism of Plant Hormones Action (Vol. 1). Islamic Azad University Press, Marvdasht Branch (Sciences and Research Branch), 1-371. (in Farsi)
10
Hadi, M. R. (2014) Mechanism of Plant Hormones Action (Vol. 2). Isfahan Negar Press, Negar khane 24, 1-386. (in Farsi)
11
Haisel, D., Pospíšilová, J., Synková, H., Schnablová, R. & Baťková, P. (2006). Effects of abscisic acid or benzyladenine on pigment contents, chlorophyll fluorescence, and chloroplast ultrastructure during water stress and after rehydration. Photosynthetica, 44(4), 606-614.
12
Hansen, H. & Grossmann, K. (2000). Auxin-induced ethylene triggers abscisic acid biosynthesis and growth inhibition. Plant Physiology, 124(3), 1437-1448.
13
Hu, Y. J., Shi, L. X., Sun, W. & Guo, J. X. (2013). Effects of abscisic acid and brassinolide on photosynthetic characteristics of Leymus chinensis from Songnen Plain grassland in Northeast China. Botanical Studies, 54(1), 1.
14
Jackson, S. D. & Prat, S. (1996). Control of tuberisation in potato by gibberellins and phytochrome B. Physiologia Plantarum, 98(2), 407-412.
15
Jia D., Fan L., Liu G., Shen J., Liu C. & Yuan, Y. (2011). Effects of Genotypes and Bagging Practice on Content of b-Carotene in Apple Fruits. Journal of Agricultural Science, 3(4), p196.
16
Kawa-Miszczak, L., Wegrzynowicz-Lesiak, E. & Saniewski, M. (2003). Retardation of tulip shoots senescence by auxin. In: Proceedings of VIII International Symposium on Postharvest Physiology of Ornamental Plants, 669, 183-190.
17
Keller, C. P., Stahlberg, R., Barkawi, L. S. & Cohen, J. D. (2004). Long-term inhibition by auxin of leaf blade expansion in bean and Arabidopsis. Plant physiology, 134(3), 1217-1226.
18
Kurotani, K. I., Hattori, T. & Takeda, S. (2015). Overexpression of a CYP94 family gene CYP94C2b increases internode length and plant height in rice. Plant Signaling and Behavior, 10(7), e1046667.
19
Lichenthaler, H. K. & Wellburn, A. R. (1983). Determinations of total carotenoids and chlorophylls a and b of leaf extracts in different solvents. Biochem Soc Trans, 603, 591-592.
20
Mac-Adam, J. W., Nelson C. J. & Sharp R. E. (1992). Peroxidase activity in the leaf elongation zone of tall fescue I. Spatial distribution of ionically bound peroxidase activity in genotypes differing in length of the elongation zone. Plant Physiology, 99(3), 872-878.
21
Marcińska, I., Czyczyło-Mysza, I., Skrzypek, E., Grzesiak, M.T., Janowiak, F., Filek, M., Dziurka, M., Dziurka, K., Waligórski, P., Juzoń, K. & Cyganek, K. (2013). Alleviation of osmotic stress effects by exogenous application of salicylic or abscisic acid on wheat seedlings. International Journal of Molecular Sciences, 14(7), 13171-13193.
22
Mikitzel, L. J. & Knowles, N. R. (1990). Effect of potato seed-tuber age on plant establishment and amelioration of age-linked effects with auxin. Plant physiology, 93(3), 967-975.
23
Mora-Herrera, M. E. & Lopez-Delgado, H. A. (2007). Freezing tolerance and antioxidant activity in potato microplants induced by abscisic acid treatment. American Journal of Potato Research, 84(6), 467-475.
24
Nassar, A. M. & Adss, I. A. (2016). 2, 4-Dichlorophenoxy acetic acid, abscisic acid, and hydrogen peroxide induced resistance-related components against potato early blight (Alternaria solani, Sorauer). Annals of Agricultural Sciences. In perss.
25
Popko, J., Hänsch, R., Mendel, R. R., Polle, A. & Teichmann, T. (2010). The role of abscisic acid and auxin in the response of poplar to abiotic stress. Plant Biology, 12(2), 242-258.
26
Pospíšilová, J. (2003). Interaction of cytokinins and abscisic acid during regulation of stomatal opening in bean leaves. Photosynthetica, 41(1), 49-56.
27
Raghavendra, A. S., Gonugunta, V. K., Christmann, A. & Grill, E. (2010). ABA perception and signalling. Trends in plant science, 15(7), 395-401.
28
Raymond, J., Rakariyatham, N. & Azanza J. L. (1993). Purification and some properties of polyphenoloxidase from sunflower seeds. Phytochemistry, 34, 927-931.
29
Ross, J. and O’Neill, D. (2001). New interactions between classical plant hormones. Trends in Plant Science, 6, 2-4.
30
Romanov, G. A., Aksenova, N. P., Konstantinova, T. N., Golyanovskaya, S. A., Kossmann, J. & Willmitzer, L. (2000). Effect of indole-3-acetic acid and kinetin on tuberisation parameters of different cultivars and transgenic lines of potato in vitro. Plant growth regulation, 32(2-3), 245-251.
31
Roumeliotis, E., Kloosterman, B., Oortwijn, M., Kohlen, W., Bouwmeester, H. J., Visser, R. G. & Bachem, C. W. (2012). The effects of auxin and strigolactones on tuber initiation and stolon architecture in potato. Journal of Experimental Botany, 63, 4539-4547.
32
Song, W., Ma, X., Tan, H. & Zhou, J. (2011). Abscisic acid enhances resistance to Alternaria solani in tomato seedlings. Plant Physiology and Biochemistry, 49(7), 693-700.
33
Su, L., Diretto, G., Purgatto, E., Danoun, S., Zouine, M., Li, Z., Roustan, J. P., Bouzayen, M., Giuliano, G. & Chervin, C. (2015). Carotenoid accumulation during tomato fruit ripening is modulated by the auxin-ethylene balance. BMC Plant Biology, 15(1) p. 114, (1-12).
34
Suttle, J. C. & Hultstrand, J. F. (1994). Role of endogenous abscisic acid in potato microtuber dormancy. Plant Physiology, 105(3), 891-896.
35
Suzuki, M., Kao, C. Y., Cocciolone, S. & McCarty, D. R. (2001). Maize VP1 complements Arabidopsisabis and confers a novel ABA/auxin interaction in roots. The Plant Journal, 28(4), 409-418.
36
Travaglia, C., Reinoso, H. & Bottini, R. (2009). Application of abscisic acid promotes yield in field-cultured soybean by enhancing production of carbohydrates and their allocation in seed. Crop and Pasture Science, 60(12), 1131-1136.
37
Vreugdenhil, D., Bradshaw, J., Gebhardt, C., Govers, F., Taylor, M. A., MacKerron, D. K. & Ross, H. A. (2011). Potato biology & biotechnology: advances & perspectives. Elsevier.
38
Xu, X., van Lammeren, A. A., Vermeer, E. & Vreugdenhil, D. (1998). The role of gibberellin, abscisic acid, and sucrose in the regulation of potato tuber formation in vitro. Plant Physiology, 117(2), 575-584.
39
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر تاریخ و روش کاشت بر عملکرد و اجزای عملکرد گاوزبان ایرانی (Echium amoenum Fisch. & Mey.) در شرایط کاربرد کودهای زیستی و شیمیایی
بهمنظور بررسی تأثیر همزمان تاریخ و روش کاشت و کاربرد نهادههای بومشناختی یا بومسازگار بر عملکرد و اجزای عملکرد گاوزبان ایرانی، پژوهشی در سه سال زراعی متوالی 91-1390، 92-1391 و 93-1392 در مزرعۀ تحقیقاتی دانشگاه فردوسی مشهد بهصورت کرتهای دو بار خردشده در زمان در قالب طرح پایۀ بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار انجام شد. دو تاریخ کاشت (20 اسفندماه 1390 و 15 فروردینماه 1391) در کرتهای اصلی، سه نوع کود زیستی و شیمیایی قارچریشه یا میکوریزا (حاوی قارچ Glomus mosseae)، بیوسولفور (حاوی باکتریهای Thiobacillus spp.)، کود شیمیایی نیتروژن و شاهد) در کرتهای فرعی، دو نوع روش کاشت (بذرکاری مستقیم و نشاکاری) در کرتهای فرعیفرعی و زمان (سال زراعی دوم و سوم) در کرتهای فرعیفرعیفرعی قرار گرفتند. نتایج آزمایش نشان داد، بیشترین عملکرد گل خشک در شرایط کاربرد قارچ ریشهدر تاریخ کاشت اسفند و در روش بذرکاری به دست آمد. کاربرد کودهای زیستی (بیولوژیک) و شیمیایی در هر دو تاریخ و هر دو روش کاشت افزایش عملکرد دانه را نسبت به شاهد سبب شدند، بهطوریکه کاربرد کودهای قارچ ریشه، بیوسولفور و شیمیایی در شرایط نشاکاری در تاریخ کاشت اسفند بهترتیب منجر به افزایش 45، 42 و 35 درصدی عملکرد دانه در مقایسه با شاهد شد. بهطورکلی با توجه به یافتههای این پژوهش به نظر میرسد کشت بذری گاوزبان ایرانی در اسفندماه و کاربرد نهادههای بومشناختی (اکولوژیکی) بهویژه قارچریشه و بیوسولفور در شرایط مشهد نسبت به دیگر تیمارها برتری داشته باشد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64538_84539f8ac11ab33190a187fa40e82502.pdf
2017-11-22
825
841
10.22059/ijfcs.2017.131391.653937
بذرکاری
بیوسولفور
کود زیستی
قارچ ریشه
نهادۀ بومسازگار
محمد بهزاد
امیری
m.b2.amiri@gmail.com
1
استادیار، مجتمع آموزش عالی گناباد
LEAD_AUTHOR
پرویز
رضوانی مقدم
rezvani@ferdowsi.um.ac.ir
2
استاد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
محسن
جهان
jahan@um.ac.ir
3
دانشیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
Abdul Jaleel, C., Manivannan, P., Sankar, B., Kishorekumar, A., Gopi, R., Somasundaram, R. & Panneerselvam, R. (2007). Pseudomonas fluorescens enhances biomass yield in Catharanthus roseus under water deficit stress. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 60, 7-11.
1
Agha Alikhani, M., Iranpour, A. & Naghdi Badi, H. (2013). Changes in agronomical and phytochemical yield of purple coneflower (Echinaceae purpurea (L.) Moench) under urea and three biofertilizers application. The Journal of Medical Research, 12, 121-136.
2
Anandham, R., Sridar, R., Nalayini, P., Poonguzhali, S., Madhaiyan, M. & Tongmin, S. (2007). Potential for plant growth promotion in groundnut (Arachis hypogaea L.) cv. ALR-2 by co-inoculation of sulfur-oxidizing bacteria and Rhizobium. Microbiological Research, 162, 139-153.
3
Azcon-Aguilar, C. & Barea, J. M. (1996). Arbuscular mycorrhizas and biological control of soil-borne plant pathogens-an overview of the mechanisms involved. Mycorrhiza, 6, 457-464.
4
Azimi, R., Jangjoo, M. & Asghari, H. R. (2013). Effect of mycorrhiza on initial deployment and morphological characteristics of Thymus vulgaris in conditions of natural area. Iranian Journal of Field Crops Research, 11, 666-676. (in Farsi)
5
Babayee, P., Golchin, A., Besharati, H. & Afzali, M. (2012). Effect of microbial sulfur fertilizer on nutrient uptake and yield of soybean in the field. Journal of Soil and Water Science, 26, 145-152. (in Farsi)
6
Besharati, H., Khavarzi, K. & Malakooti, J. (2000). Efffect of Thiobacillus on nutrient absorbtion in calcareous soils. Journal of Soil and Water Research, 176-187. (in Farsi)
7
Cardoso, I. M. & Kuyper, T. W. (2006). Mycorrhizas and tropical soil fertility. Agriculture, Ecosystems and Environment, 116, 72-84.
8
Davazdahemami, S., Sefidkon, F., Jahansooz, M. R. & Mazaheri, D. (2008). Comparison of biological yield, quantity and quality yield of oil and phonological stages in fall, spring and summer planting of Dracocephalum muldavica L. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants Researches, 24, 263-270. (in Farsi)
9
Dehghani Meshkani, M. R., Naghdibadi, H. A., Darzi, M. T., Mehrafarin, A. & Rezazadeh, Sh. A. (2011). Effect of biofertilizers and chemical fertilizers on quantitative and qualitative yield of Matricaria recutita L. Journal of Medicinal Plants, 10, 35-49. (in Farsi)
10
Eskandari Nasrabadi, S., Ghorbani, R., Rezvani Moghaddam, P. & Nasiri Mahallati, M. (2014). Single and integrated effects of biological, organic and chemical fertilizers on quantitative and qualitative traits of milk thistle (Silybum marianum L.). Journal of Agroecology, 6, 467-476. (in Farsi)
11
Fatma, A. G., Lobna, A. M. & Osman, N. M. (2008). Effect of compost and biofertilizers on growth, yield and essential Oil of sweet marjoram (Majorana hortensis) Plant. International Journal of Agriculture and Biology, 10, 381-387.
12
Ghani, A., Tehranifar, A., Azizi, M. & Ebadi, M. T. (2011). Effect of planting date on morphological characteristics and yield and oil content of Achillea millefolium in conditions of Mashhad. Journal of Crop Sciences, 9, 447-453. (in Farsi)
13
Ghasemi, A. (2009). Medicinal and aromatic plants, identifying and studying their effects. Publications of Islamic Azad University, Shahrkord. (in Farsi)
14
Ghasemi, K., Fallah, S., Raeesi, F. & Heidari, M. (2013). Effect of urea fertilizer and biofertilizers on quantitative and qualitiative yield of Plantago ovate Forsk.). Journal of Plant Production Research, 101-116. (in Farsi)
15
Ghorbani, M., Koocheki, A., Jahani, M., Hoseini, A., Mohammadabadi, A. & Sabet Teimoori, M. (2009). Effect of planting date and different times and methods of weed management in different growth stages on yield and yield components of cumin. Journal of Crop Sciences, 7, 145-154. (in Farsi)
16
Ghorbani Nasrabadi, R., Saleh Rastin, N. & Alikhani, H. (2002). Effect of sulfur application with Thiobacillus and Bradi rhizobium on nitrogen fixation and growth characteristics of soybean. Journal of Soil and Water, 16, 170-178. (in Farsi)
17
Gupta, M. L., Prasad, A., Ram, M. & Kumar, S. (2002). Effect of the vescular-arbuscular mycorrhizal (VAM) fungus Glomus fasciculatum on the essential oil yield related characters and nutrient acquisition in the crops of different cultivars of menthol mint (Mentha arvensis) under field conditions. Bioresource Technology, 81, 77-79.
18
Hoseini, S. A. (2011). Planting methods of Humulus Lupulus L. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 27, 615-623. (in Farsi)
19
Jahan, M., Amiri, M. B. & Ehyaee, H. R. (2012). Light use and absorption efficiency of sesame affected by biofertilizers in a low input farming systems. Iranian Journal of Field Crops Research, 10, 435-447. (in Farsi)
20
Jahan, M., Ariayee, M., Amiri, M. B. & Ehyaee, H. R. (2013). Effect of plant growth promoting rhizobacteria on quantitave and qualitative of sesame in conditions of cover crop application. Agroecology, 5, 1-15. (in Farsi)
21
Kariminia, A. & Shahrestani, M. (2003). Evaluation of oxidation of sulfur by heterotrophic microorganisms in different soil. Journal of Soil and Water, 17, 69-79. (in Farsi)
22
Kaya, M., Kucukymuk, Z. & Erdal, I. (2009). Effects of elemental sulfur and sulfur-containing waste on nutrient concentrations and grown on calcareous soil. African Journal of Biotechnology, 8, 4481-4489.
23
Kennedy, I. R., Choudhury, A. T. M. A., Kecskes, M. L., Roughley, R. J. & Hien, N. T. 2004. Non-symbiotic bacterial diaztrophs in crop-farming systems: can their potential for plant growth promotion be better exploited? Soil Biology and Biochemistry, 36, 1229-1244.
24
Kertesz, M. A. & Mirleau, K. (2004). The role of soil microbes in plant sulfur nutrition. Journal of Experimental Botany, 55, 1-7.
25
Khichar, M. L. & Niwas, I. (2006). Microclimatic profiles under different sowing environment in wheat. Journal of Agrometeo, 8, 201-209.
26
Khorramdel, S., Koocheki, A., Nassiri Mahallati, M. & Ghorbani, R. (2011). Effects of biofertilizers on yield and yield components of Nigella sativa L. Iranian Journal of Field Crops Research, 8, 758-766. (in Farsi)
27
Koocheki, A., Nakhforoosh, A. & Zarifketabi, H. (1997). Organic farming. Publications of Ferdowsi University of Mashhad. (in Farsi)
28
Kumar, V., Singh Solanki, A. & Sharma, S. (2011). AM fugi and A. Chroococcum affecting yield, nutrient uptake and cost efficiency of Plantago ovate in Indian arid region? Thai Journal of Agricultural Science, 44, 53-60.
29
Latifi, M., Barimavandi, A., Sedaghatpoor, S. & Rezaei, S. (2012). Sowing date and plant population effects on seed yield of Cucurbita pepo. International Journal of Agriculture and Biology, 14, 641-644.
30
Lotfi, A., Frnia, A., Maleki, A., Naseri, R. & Moradi, M. (2013). The effects of planting date and plant spacing on yield and yield components of Fennel. Bulletin of Environment, Pharmacology and Life Sciences, 2: 78-84.
31
Mahfouz, S. A. & Sharaf-Eldin, M. A. (2007). Effect of mineral vs. biofertilizer on growth, yield, and essential oil content of fennel (Foeniculum vulgare Mill.). International Agrophysics, 21, 361-366.
32
Manaffee, W. F. & Kloepper, J. W. (1994). Application of plant growth promoting rhizobacteria in sustainable agriculture. In: “Soil biota management in sustainable farming systems”. CSIRO, Pub. East Melbourne, Australia. Pp, 23-31.
33
Marulanda, A., Porcel, R., Barea, J. M. & Azcon, R. (2007). Drought tolerance and antioxidant activities in laender plants colonized by native drought-tolerant of drought-sensitive Glomusspecies. Microbial Ecology, 54, 543-552.
34
Mehrabani, M., Ghassemi, N., Sajjadi, S. E., Ghannadi, A. & Shams-Ardakani, M. (2005). Main phenolic compounds of petals of Echium amoenum fisch. And C.A. Mey., a famous medicinal plant of Iran. Daru, 13, 65-69.
35
Mellati, F., Koocheki, A. & Nassiri Mahallati, M. (2005). Evaluation of germination behavior and planting date on medicinal plant of Ferula gumosa. Iranian Journal of Field Crops Research, 3, 123-128. (in Farsi)
36
Moosavi, S. Gh. (2014). Fennel morphological traits and yield as affected by sowing date and plant density. Advance in Agriculture and Biology, 1, 45-49.
37
Najafpoor Navaee, M. (2002). Evaluation of effect of phosphorous and nitrogen fertilizers on seed yield of Echium amoenum. Iranian Journal of Medical and Aromatic Plants, 13, 41-50. (in Farsi)
38
Rabbani, M., Sajjadi, S. E., Vaseghi, G. & Jafarian, A. (2004). Anxiolytic effects of Echium amoenum on the elevated plus-maze model of anxiety in mice. Fitoterapia, 75, 457-464.
39
Rezvani Moghaddam, P., Amiri, M. B. & Ehyaee, H. R. (2015). Effect of simultaneous application of mycorrhiza with compost, vermicompost and sulfural geranole on some quantitative and qualitative characteristics of sesame (Sesamum indicum L.) in a low input cropping system. Agroecology, In Press. (in Farsi)
40
Rillig, M. C. & Mummey, D. L. (2006). Mycorrhizas and soil structure. New Phytologist, 171, 41-53.
41
Rivera-Cruz, M. C., Narcıa, A. T., Ballona, G. C., Kohler, J., Caravaca, F. & Rold, A. (2008). Poultry manure and banana waste are effective biofertilizer carriers for promoting plant growth and soil sustainability in banana crops. Soil Biology and Biochemistry, 40, 3092-3095.
42
Roesti, D., Gaur, R., Johri, B. N., Imfeld, G., Sharma, S., Kawaljeet, K. & Aragno, M. (2006). Plant growth stage, fertilizer management and bio-inoculation of arbuscular mycorrhizal fungi and plant growth promoting rhizobacteria affect the rhizobacterial community structure in rain-fed wheat fields. Soil Biology and Biochemistry, 38, 1111-1120.
43
Salardini, A. A. (1995). Soil fertility. Publications of Tehran University. (in Farsi)
44
Sanches Govin, E., Rodrigues Gonzales, H. & Carballo Guerra, C. (2005). Ifluencia de los abonos organicos y biofertilizantes en la calidad de las especies medicinales calendula officinalis L. y Matricaria recutita L. Revista Cubana de Plantas Medicinales, 10, 1.
45
Sardans, J., Roda, F. & Penuelas, J. (2005). Effect of water and a nutrient pulse supply on Rosemarinus officinalis growth, nutrient content and flowering in the field. Environmental and Experimental Botany, 53, 1-11.
46
Sasanelli, N., Anton, A., Takacs, T., Addabbo, T., Biro, I. & Malov, X. (2009). Influence of arbuscular mycorrhizal fungi on the nmaticidal properties of leaf extracts of Thymus vulgaris L. Parasitological Institute of SAS, Kosice DOI 10.2478/s11687-009-0043-6.
47
Sayyah, M., Boostani, H., Pakseresht, S. & Malaieri, A. (2009). Efficacy of aqueous extract of Echium amoenum in treatment of obsessive-compulsive disorder. Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry, 33, 1513-1516.
48
Scherer, H. W. (2001). Sulfur in crop production-invited paper. European Journal of Agronomy, 14, 81-111.
49
Tabrizi, L. (2007). Evaluation of ecophysical characteristics of Thymus transcaspicus in natural areas and domestication of it in a low input farming system. Ph.D thesis of Ecology, Faculty of agriculture, Ferdowsi University of Mashhad. (in Farsi)
50
Thomas, Ph. (1984). Canola Grower Manual. Publication of Canada.
51
Ullah, H. & Honermeier, B. (2013). Fruit yield, essential oil concentration and composition of three anise cultivars (Pimpinella anisum L.) in relation to sowing date, sowing rate and locations. Industrial Crops and Products, 42, 489-499.
52
Vance, C. P., Uhde-Stone, C. & Allan, D. L. (2003). Phosphorus acquisition and use: Critical adaptation by plants for securing a non-renewable resource. New Physiology, 157, 423-447.
53
Vessey, J. K. (2003). Plant growth promoting rhizobacteria as biofertilizer. Plant and Soil, 255, 571-586.
54
Zapata, F. & Roy, R. N. (2004). Use of phosphate rocks for sustainable agriculture. Publication of the FAO Land and Water Development Division.Pp, 117 - 122.
55
Zehtabsalmasi, S., Javanshir, A., Omideigi, R., Alya, H. & Ghassemi-golezani, K. (2004). Effect of water supply and sowing date on water use efficiency of anise (Pimpinella anisum L.). Proceedings of 4th International Crop Science Congress, Brisbane, Australia.
56
Zhu, C. X., Song, B. F. & Xu, W. H. (2010). Arbuscular mycorrhizae improve low temperature stress in maize via alterations in host water status and photosynthesis. Plant and Soil, 331, 129-137.
57
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تحمل به خشکی نژادگانهای برنج (Oryza sativa L.) با استفاده از شاخصهای تحمل و تجزیۀ نمودار دووجهی
در این آزمایش بهمنظور شناسایی نژادگان (ژنوتیپ)های برنج متحمل به تنش خشکی با استفاده از شاخصهای تحمل، شمار 31 نژادگان برنج هوازی و 22 رقم برنج غرقابی در شرایط بدون تنش و تنش خشکی با قطع آبیاری سی روز پس از نشاکاری در مرحلۀ بیشینۀ پنجهزنی تا پایان دورۀ رویش نژادگانها در بهار سال 1393 در بخش سنگر- رشت ارزیابی شدند. نتایج نشان داد، چهار شاخص میانگین حسابی (MP)، میانگین هندسی (GMP)، تحمل به تنش (STI) و عملکرد (YI) بیشترین همبستگی را با عملکرد دانه در شرایط بدون تنش (YP) و تنش خشکی (YS) داشتند. گروهبندی نژادگانها با استفاده از تجزیۀ خوشهای همۀ نژادگانها را به سه گروه متحمل، نیمه متحمل و حساس تقسیم کرد. شمار هفت نژادگان شامل IR81024-B-254-1-B، IR82590-B-B-32-2، IR82635-B-B-82-2، IR82639-B-B-140-1 و Panda و رقمهای غرقابی درفک و صدری در گروه متحمل قرار گرفتند، در بین این هفت نژادگان، کمترین افت عملکرد به نژادگانهای IR82590-B-B-32-2، Panda و IR81024-B-254-1-B به ترتیب با 28/1، 28/4 و 86/4 درصد کاهش اختصاص یافت. تجزیه به مؤلفههای اصلی روی شاخصها نشان داد، دو مؤلفۀ اول به ترتیب 58 و 40 درصد (درمجموع 98 درصد) از تغییرات کل شاخصها را توجیه کردند. نمودار دووجهی (بایپلات) بهدستآمده از تجزیۀ گرافیکی ضمن تأیید نتایج تجزیۀ خوشهای، نشان دادند که برترین شاخصها در شناسایی نژادگانهای متحمل، شاخصهای GMP، MP، YI و STI هستند. همچنین برترین نژادگانها در شرایط بدون تنش درفک، IR82639-B-B-140-1، IR82635-B-B-82-2 و IR82590-B-B-32-2 بودند و در شرایط تنش خشکی نژادگانهای IR82590-B-B-32-2، Panda، IR81024-B-254-1-B و درفک برترین نژادگانها بودند.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64539_3cc64bc7341ab6ff069f94c64ea260b4.pdf
2017-11-22
843
854
10.22059/ijfcs.2017.215828.654176
برنج
تجزیه به مؤلفههای اصلی
تجزیۀ خوشهای
کمبود آب
رضا
افشاری
bahonarm2@gmail.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد، دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه گیلان
AUTHOR
عاطفه
صبوری
atefeh_sabouri@yahoo.com
2
استادیار، دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه گیلان
LEAD_AUTHOR
مسعود
اصفهانی
esfahani@guilan.ac.ir
3
استاد، دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه گیلان
AUTHOR
علی
کافی قاسمی
kafighasemi@yahoo.com
4
مربی، دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه گیلان
AUTHOR
Bouman, B. A. M., Peng, S., Castaneda, A. R. & Visperas, A. M. (2005). Yield and water use of irrigated topical aerobic rice systems. Agricultural Water Management, 74, 87-105.
1
Bouman, B. A. M. (2001).Water-efficient management strategies in rice production. International Rice Research Notes,16, 17-22.
2
Bouman, B. A. M., Xiaoguang, Y., Huaqi, W., Zhiming, W., Junfang, Z., Changgui, W. & Bin, C. (2002). Aerobic Rice (Han Dao): A new way of growing rice in water short areas. Proceedings of the 12th ISCO Conference, May 26-31, Beijing, China.
3
Bouslama, M. & Schapaugh, W. T. (1984).Stress tolerance in soybean. Part 1: Evaluation of three screening techniques for heat and drought tolerance. Crop Science, 24, 933-937.
4
Erfani, F., Shokrpour, M., Momeni, A. & Erfani, A. (2013). Evaluation of drought tolerance in rice varieties using yield-based indices at vegetative and reproductive stage. Sustainable Agriculture and Production Science, 4, 135-148.
5
Fallah-Shamsi, S. A., Esfahani, M., Ghodsi, M. & Samizadeh, H. (2012). Evaluation of water deficit stress effect in local and improved rice genotypes based on tolerance indices. 3rd Conference on Integrated Water Management. 10-11August, Sari, Iran
6
Fernandez, G. C. (1992). Effective selection criteria for assessing plant stress tolerance. In: Kuo, C. G. (ed.). In: Proceedings of the International Symposium on Adaptation of Vegetables and other Food Crop to Temperature and Water Stress, Taiwan, 13-18 August, pp. 257-270.
7
Fischer, R. A. & Maurer, R. (1978). Drought resistance in spring wheat Cultivars. I. Grain yield response. Australian Journal of Agricultural Research, 29, 897-912.
8
Gavuzzi, P., Rizza, F., Palumbo, M., Campaline, R.G., Ricciardi, G. L. & Borghi, B. (1997). Valuation of field and laboratory predictors of drought and heat tolerance in winter cereals. Canadian Journal of Plant Science, 77, 523-531.
9
Ghiasy Oskoee, M., Farahbakhsh, H., Sabouri, H. & Mohamadi Nejad, Gh. (2012). Effect of drought stress on yield and yield components in rice landraces and improved cultivars under Gonbad Kavous environmental condition. Cereal Research, 2(3), 165-179.
10
Ghiasy Oskoee, M., Farahbakhsh, H., Sabouri, H. & Mohamadi Nejad, Gh. (2013). Evaluation of rice cultivars in drought and normal conditions based on sensitive and tolerance indices. Electronic Journal of Crop Production (EJCP). 6 (4), 55-75.
11
Karaba, A., Dixit, S., Greco, R., Aharon, A., Trijatmiko, K. R., Martinez, N. M., Krishnan, A., Nataraja, K. N., Udayakumar, M. & Pereira, A. (2007). Improvement of water use efficiency in rice by expression of HARDY, an Arabidopsis drought and salt tolerance gene. Proceedings of the National Academy of Science (PNAS), 104, 15270-15275.
12
Karim Koshteh, R. & Sabouri. H. (2015). Rice drought-tolerant genotypes recognition using multivariate analysis. Agroecology Journal. 11(4), 13-24.
13
Katouzi, M., Rahimzadeh Khoei, F. & Sabouri, H. (2008). Evaluation of rice cultivars in different irrigation treatment based on sensitive and tolerance indices. Electronic Journal of Crop Production (EJCP), 1(3), 33-47
14
Rashidi, V., Majidi, I., Mohammadi, S. A. & Moghadam Vahed, M. (2007). Determine of genetic relationship in durum wheat lines by cluster analysis and identity of morphological main characters in each gropes. Journal Agronomy Science, 13(2), 439-450.
15
Rosielle, A. A. & Hamblin, J. (1981). Theoretical aspect of selection for yield in stress and non- stress environment. Corp Science, 21, 943-946.
16
Safaei Chaeikar, S., Rabiei, B., Samizadeh, H. & Esfahani, M. (2008). Evaluation of tolerance to terminal drought stress in rice (Oryza sativa L.) genotypes. Iranian Journal of Crop Sciences, 9(4), 315-331.
17
Sikuku, P. A., Netondo, G. W., Onyango, J. C. & Musyimi, D. M. (2010). Effects of water deficit on physiology and morphology of three varieties of nerica rainfed rice (Oryza sativa L.). ARPEN Journal of Agricultural and Biological Science, 5, 23-28.
18
Singh, V. P., Singh, R. K., Singh, B. B. & Zeigler, R. S. (eds). (1996). Physiology of Stress Tolerance in Rice: Proceedings of the International Conference on Stress Physiology of Rice, 28 Feb-5 March 1994, Lucknow, U.P., India, 239 p.
19
Witcombe, J. R., Hollington, P. A., Howarth, C. J., Reader, S. & Steele, K. A. (2008). Breeding for abiotic stresses for sustainable agriculture. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences, 363, 703-716.
20
Yahooian, S. H., Bihamta, M. R., Babaei, H. R. & Habibi, D. (2005). Evaluation to drought stress in soybean genotype. Iranian Journal of Agronomy and Plant Breeding 2(2), 72-75. (in Farsi)
21
Yang, J. & Zhang, J. (2010). Crop management technique to enhance harvest index in rice. Journal of Experimental Botany, 61(12), 3177- 3189.
22
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر اسیدسولفوریک و کودهای زیستی بر میزان کامازولن، اسانس و ویژگیهای کمی بابونۀ آلمانی (Matricaria chamomilla L.)
بابونه گیاهی دارویی با کاربردهای پرشمار است. برای بررسی تأثیر اسیدسولفوریک و کودهای زیستی بر بابونۀ آلمانی در پاییز 1392 آزمایشی بهصورت فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی در سه تکرار در دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان اجرا شد. تیمارها شامل اسید سورلفوریک (0، 4، 5 و 6 لیتر در هکتار)، کود زیستی نیتروژنی (بدون کاربرد و کاربرد) و کود زیستی فسفری (بدون کاربرد و کاربرد) بود. بهترین سطح کاربرد اسیدسولفوریک در همۀ صفات، 5 لیتر در هکتار بود. بالاترین نتیجه برای صفات شامل شمار گل در مترمربع (805)، وزن تر گل (3705 کیلوگرم در هکتار) و خشک گل (741 کیلوگرم در هکتار)، شاخص برداشت (6/27 درصد)، درصد وزنی اسانس (88/0 درصد)، عملکرد اسانس (50/4 میلیلیتر در مترمربع)، ارتفاع گیاه (10/65 سانتیمتر)، عملکرد دانه (17/147 کیلوگرم در هکتار) و درصد کامازولن اسانس (06/14) از کاربرد 5 لیتر اسیدسولفوریک در هکتار افزون بر کاربرد کودهای زیستی نیتروژنی و فسفری ناشی شد. کمترین میزان برای صفات شمار گل در مترمربع (503)، وزن تر گل (3104 کیلوگرم در هکتار) و خشک گل (620 کیلوگرم در هکتار)، درصد وزنی اسانس (47/0 درصد)، عملکرد اسانس (07/2 میلیلیتر در مترمربع)، ارتفاع گیاه (60/40 سانتیمتر)، عملکرد دانه (43/120 کیلوگرم در هکتار) و درصد کامازولن اسانس (61/13) از کاربرد 6 لیتر اسیدسولفوریک و بدون کاربرد کودهای زیستی نیتروژنی و فسفری به دست آمد. بهترین عملکرد کمی و کیفی از کاربرد 5 لیتر اسیدسولفوریک در هکتار به همراه کودهای زیستی نیتروژنی و فسفری به دست آمد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64540_82f97cd4dcec6d5a19d96f835224b2bf.pdf
2017-11-22
855
864
10.22059/ijfcs.2017.218899.654208
شاخص برداشت
عملکرد گل
گیاه دارویی
متابولیت ثانویه
علیرضا
ابدالی مشهدی
alireza.abdali1384@gmail.com
1
دانشیار، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
LEAD_AUTHOR
مریم
مرادی مجد
maryam.moradimajd@yahoo.com
2
دانشجوی سابق کارشناسیارشد، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
AUTHOR
عبدالمهدی
بخشنده
bakhshandehabdolmahdi@gmail.com
3
استاد، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
AUTHOR
احمد
کوچک زاده
koochek_a@yahoo.com
4
استادیار، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
AUTHOR
Abdollahi, F., Salehi, A. Shahabi, R. & Rahimi, A. (2016). Effect of Different Nitrogen Sources on Vegetative Traits, Grain Yield and Essential Oil Yield of Coriander (Coriandrum sativum). Cercetări Agronomice în Moldova, 49, 1 (165), 51-65.
1
Alawi, B. J., Stroehlein, J. L., Hanlon, E. A. JR. & Turner, F. JR. (1980). Quality OF Irrigation Water and Effects of Sulfuric Acid and Gypsum on Soil Properties and Sudangrass. Soil Science, 129 (5), 261-327.
2
Al-Erwy, A. S., Bafeel, S. O. & Al-Toukhy, A. (2016). Effect of Chemical, Organic and Bio Fertilizers on Germination, Growth and yield of Wheat (Triticum aestivum L.) Plants Irrigated With Sea Water. Agriculture and Biology Journal of North America, 7(3), 121-123.
3
Alijani, M., Amini Dehaghi, M., Modares Sanavi, S. A. M. & Mohammad Rezaye, S. (2010). The effects of phosphorous and nitrogen rates on yield, yield components and essential oil percentage of Matricaria recutita L.. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 26(1), 101-113. (in Farsi)
4
Amezketa, E., Aragüés, R. & Gazol, R. (2005). Efficiency of Sulfuric Acid, Mined Gypsum, and Two Gypsum By-Products in Soil Crusting Prevention and Sodic Soil Reclamation. Agronomy Journal, 97 (3), 983-989.
5
Baas, P., Bell, C., Mancini, L. M., Lee, M. N., Conant, R. T. & Wallenstein, M. D. (2016) Phosphorus mobilizing consortium Mammoth PTM enhances plant growth. Peerj, 4:e2121
6
Behzadi, Y., Salehi, A., Balochi, H. R. & Yadavi, A. (2016). Effect of Biological, Organic and Chemical Fertilizers on Yield and Yield Components of Anise (Pimpinella anisum L.). Journal of Sustainable Agriculture and Production Science, 25(4), 161-175. (in Farsi)
7
Capuzzo, A., Occhipinti, A. & Maffei, M. E. (2014). Antioxidant and radical scavenging activities of chamazulene. Natural Product Research, 28 (24), 2321-2323.
8
Fayazi, H., Abdali Mashhadi, A. A., Koochekzade, A., Papzan, A. & Arzanesh, M. H. (2016). The effect of organic and biological fertilizers application on yield and some morphological characteristics in Coneflower (Echinaceae purpurea L.). Iranian Journal of Filed Crop Science, 47 (2), 301-314. (in Farsi)
9
Galal, A. M., Ibrahim, A. R. S., Mossa, J. S. & EI-Feraly, F. S. (1999(. Microbial transformation of parthenolid. Phytochemistry, 51, 761-765.
10
Hussain, N., Hassan, G., Arshadullah, M. & Mujeeb, F. (2001). Evaluation of Amendments for the Improvement of Physical Properties of Sodic Soil. International Journal of Agriculture and Biology, 3 (3), 319-322.
11
Kabariel, J., Subramanian, S. & Kumar, M. (2016). Integrated Nutrient Management on Growth and Yield of African Marigold (Tagetes erecta L.) Grown as an Intercrop in Grand Naine Banana. International Journal of Science and Nature, 7 (2), 291-295.
12
Khalili, A., Akbari, N. & Chaichi, M. R. (2008).Limited Irrigation and Phosphorus Fertilizer Effects on Yield and Yield Components of Grain Sorghum (Sorghum bicolor L.var. Kimia). American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences, 3(5), 697-702.
13
Kumar, S., Bauddh, K., Barman, S. C. & Singh, R. P. (2016). Organic Matrix Entrapped Bio-fertilizers Increase Growth, Productivity, and Yield of Triticum aestivum L. and Transport of NO3-, NO2-, NH4+ and PO4-3 from Soil to Plant Leaves. Journal of Agricultural Science and Technology, 16, 315-329.
14
Kumari, A., Goyal, R. K., Choudhary, M. & Sindhu, S. S. (2016). Efficacy of microbial inoculants on reducing the phosphatic fertilizer in chrysanthemum. Research in Environment and Life Sciences, 9(1), 84-88.
15
Lopez, M. & Blazquez, M. A. (2016).Characterization of the Essential Oils from Commercial Chamomile Flowers and Chamomile Teabags by GC-MS Analysis. International Journal of Pharmacognosy and Phytochemical Research, 8(9), 1487-1491.
16
Malboobi, M. A., Behbahani, M., Madani, H., Owlia, P., Deljou, A., Yakhchali, B., Moradi, M. & Hassanabadi, H. (2009). Performance evaluation of potent phosphate solubilizing bacteria in potato rhizosphere. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 25, 1479-1484.
17
Mohamed, Y. F. Y. & Ghatas, Y. A. A. (2016). Effect of Mineral, Biofertilizer (EM) and Zeolite on Growth, Flowering, Yield and Composition of Volatile Oil of Viola odorata L. Plants. Journal of Horticultural Science & Ornamental Plants, 8 (3), 140-148.
18
Naderidarbaghshahi, M., Monemian, S. M., Zeynali, H. & Bahari, B. (2012). Effects of different levels of nitrogen, phosphorus and potassium fertilizers on some agromorphological and biochemical traits of German chamomile (Matricaria chamomilla L.). Journal of Medicinal Plants Research, 6(2), 277-283.
19
Pirzad, A. (2012).Effect of water stress on essential oil yield and storage capability of Matricaria chamomilla L.. Journal of medicinal plant research, 6(27), 4394-4400.
20
Pouryousef, M., Chaichi, M. R., Mazaheri, D., Fakhretabatabaii, M. & Jafari, A. A. (2007). Effect of Different Soil Fertilizing Systems on Seed and Mucilage Yield and Seed P Content of Isabgol (Plantago ovata Forsk). Asian Journal of Plant Sciences. 6 (7), 1088-1092.
21
Ryan, J. & Stroehlein, J. L. (1979). Sulfuric Acid Treatment of Calcareous Soils: Effects on Phosphorus Solubility, Inorganic Phosphorus Forms, and Plant Growth. Soil Science Society of America Journal, 43 (4), 731-735.
22
Said-Al Ahl, H. A. H. & Hussien, M. S. (2016).Effect of nitrogen and phosphorus application on herb and essential oil composition of Satureja montana L. ‘carvacrol’ chemotype. Journal of Chemical and Pharmaceutical Research, 8(6), 119-128.
23
Shahmohammadi, F., Darzi, M. T. & Haj Seyed Hadi, M. (2014). Influence of Compost and Biofertilizer on yield and essential oil of dill (Anethum graveolens L.). International journal of Advanced Biological and Biomedical Research, 2 (2), 446-455.
24
Shahraki, M., Dahmarede, M., Khamari, E. & Asgharzade, A. (2016).Effects of Azotobacter and Azospirillum and Levels of Manure on Quantitative and Qualitative Traits of Safflower (Carthamus tinctorius L.). Agroecology 8 (1), 59-69. (In Farsi)
25
Stahi, E. & Schild, W. (1981). Drogenanalyse II, Inhaltsstoffe und Isolierungen. Stuttgart, Gustav Fischer Verlag.
26
Surmacz-Magdziak, A. (2011). Influence of Row Spacing on Herb Yield of Common Chamomile (Chamomilla recutita (L.) Rausch.) as well as Seed Yield and Quality. Acta Agrobotanica, 64 (3), 35-38.
27
Valaii, L., Noormohamadi, Gh., Hasanloo, T. & Haj Seyed Hadi, M. R. (2015). Effect of organic manure and bio-fertilizer on growth traits and quantity yield in milk thistle (Silybum marianum L. Gaerth). Journal of Crop Production Research, 7(1), 237-251. (in Farsi)
28
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تأثیر کود نیتروژن و تراکم در سطوح غیرمعمول بر ویژگیهای رشدی عملکرد دانه و علوفۀ ذرت
این آزمایش در سال 1394 بهصورت کرتهای خردشده در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در ایستگاه تحقیقاتی دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد اجرا شد. نیتروژن در پنج سطح (0، 150، 300، 450، 600 کیلوگرم در هکتار) و تراکم در سه سطح (10، 15 و20 بوته در مترمربع) به ترتیب عامل اصلی و فرعی آزمایش بودند. بنابر نتایج، بیشینه شاخص سطح برگ با کاربرد 450 کیلوگرم نیتروژن در هکتار به دست آمد. کمترین سرعت رشد محصول در شرایط بدون کاربرد و بیشترین میزان این شاخص با کاربرد 450 کیلوگرم نیتروژن در هکتار به دست آمد. صرفنظر از تراکم کشت، ارتفاع بوتۀ ذرت در نتیجه افزایش کاربرد نیتروژن تا سطح 450 کیلوگرم در هکتار بهطور معنیداری افزایش و پس از آن با افزایش نیتروژن به سطح 600 کیلوگرم در هکتار، بهطور معنیداری کاهش یافت. بیشینه شاخص سطح برگ (معادل 32/6 واحد) و تجمع مادۀ خشک (3623 گرم بر مترمربع زمین در روز) در تراکم بیست بوته در مترمربع به دست آمد. بیشترین عملکرد علوفه (68/72 تن در هکتار) در تیمار 450 کیلوگرم نیتروژن در هکتار با تراکم بیست بوته در مترمربع و بیشترین عملکرد دانه (76/10 تن در هکتار) در تیمار 450 کیلوگرم نیتروژن در هکتار با تراکم ده بوته در مترمربع مشاهده شد. به نظر میرسد بهرغم اثر سوء زیستمحیطی ناشی از کاربرد بالای نیتروژن، کاربرد آن تا سطح 450 کیلوگرم در هکتار همراه با تراکم خیلی بالا، عملکرد علوفه را افزایش خواهد داد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64541_8efd330c3e6bb717d742c8fb096f8c22.pdf
2017-11-22
865
876
10.22059/ijfcs.2017.217558.654194
تراکم کاشت
ذرت
عملکرد دانه و علوفه
کود نیتروژن
رضا
حیدری پور
rhp2548@yahoo.com
1
دانشجوی دکتری اگرواکولوژی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
علیرضا
کوچکی
akooch@um.c.ir
2
استاد، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
مهدی
نصیری محلاتی
mnassiri@um.ac.ir
3
استاد، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
Abdollahi, F., Ghadiri, H. & Bahrani, M. (2010). Effect of tillage, wheat (Triticum aestivum L.) residue & nitrogen management on corn (Zea mays) yield and yield components. Iranian Journal of Field Crops Research, 8, 336-346. (in Farsi)
1
Agricultural Statistics. (2014). Department of Planning and Economy. http://www.maj.ir/.
2
Allison, J. C. S. & Haslam, R. J. (1993). Theoritical assessment of potential for increasing productivity of sugarcane through increased nitrogen fertilization. Proc. South African Sugar Technology, Assoc. pp.57-59.
3
Andrade, F. H., Vega, C., Uhart, S., Cirilo, A., Cantarero, M. & Valentinus, O. (1999). Kernel number determination in maize. Crop Science, 39, 453-459.
4
Babnik, D., Susin, J. & Verbic, J. (2002). The effect of nitrogen fertilization of maize on protein concentration and in vitro fermentability of grain. Journal of Central European Agriculture, 3, 159-167.
5
Birch, C. J., Hammer G. L. & Rickert, K. G. (1998). Improved methods for predicating individual leaf area and leaf senescence in maize. Australian Journal of Agricultural Research. 49, 249-262.
6
Bullock, D. G., Nielson, R. L. & Nyquist, W. E. (1993). Growth analysis comparison of corn growth in conventional and equidistant plant spacing. Crop Science, 28, 254-285.
7
Cox, W. J. & Cherney, D. J. R. (2001). Row spacing, plant density, and nitrogen effects on corn silage. Agronomy Journal, 93, 597-602.
8
Cox, W. J., Kalonge, S., Cherney, D. J. R. & Reid, W. S. (1993). Growth, yield, and quality of forage maize under different nitrogen management practices. Agronomy Journal, 85, 341-347.
9
Dobermann, A. & Cassman, K. G. (2005). Cereal area and nitrogen use efficiency are drivers of future nitrogen fertilizer consumption. Science. China Ser. C Life Science. 48 (Supp.), 1-14.
10
Dobermann, A. R. (2005). Nitrogen Use Efficiency-State of the Art. University of Nebraska-Lincoln Digital Commons @University of Nebraska-Lincoln.
11
Edmeades, G. O. & Lafite, H. R. (1993). Defoliation and plant density effect on maize selected for reduced plant height. Agronomy Journal, 85, 580-857.
12
Edris Ameri, A., Sorkhi B. (2011). Investigation of destructive effectives of nitrogenous fertilizers on protein and oil percentage in maize. Iranian Journal of Agronomy and Plant Breeding, 7, 13-23. (in Farsi)
13
Eickhout, B., Bouwman, A. F. & van Zeijts, H. (2006). The role of nitrogen in world food production and environmental sustainability Agriculture, Ecosystems and Environment, 116, 4-14.
14
Emam, Y. (2007). Cereal Production. Shiraz University Press. Third edition. 190 pages. (in Farsi)
15
English, M. & Raja, S. N. (1996). Perspectives on deficit irrigation. Agricultural Water Management, 32, 1-14.
16
Fallah, S. & Tadayyon, A. (2007). Effects of plant density and nitrogen rates on yield, nitrate and protein of silage maize. Electronic Journal of Crop Production, 2, 105-121. (in Farsi)
17
Farahani, E, Naderi. M.R, Tahmasebizadeh, H, Khodabandeh, N. & Jaferibonyad, M. (2005). The effect of plant density and nitrogen fertilizer on forage yield and some Physiological traits in forage sorghum. New Findings in Agriculture, 1, 83-91. (in Farsi)
18
Farnham, D.E. (2001). Row spacing, plant density and hybrid effects on corn yield and moisture. Agronomy Journal, 93, 1049-1053.
19
Foulkes, M.J., Sylvester, R., Bradly, R. & Scot, K. (1998). Evidence for differences between winter wheat cultivars in acquisition of soil mineral nitrogen and uptake and utilization nitrogen. Journal of Agricultural Sciences of Cambridge, 130, 29-44.
20
Giller, K. E., Chalk, P., Dobermann, A., Hammond, L., Heffer, P., Ladha, J. K., Nyamudeza, P., Maene, L., Ssali, H. & Freney, J. (2004). Emerging technologies to increase the efficiency of use of fertilizer nitrogen. In: Mosier, A.R., Syers, J.K., Freney, J.R. (Eds.), Agriculture and the Nitrogen Cycle. Island Press, Washington, D.C. pp. 35-51.
21
Heffer, P. (2008). Assessment of fertilizer use by crop at the global level. International Fertilizer Industry Association. Rue Marbeuf, Paris, France. Available in: WWW. Fertilizer.org. 5p.
22
Herrmann, A. & Taube, F. (2005). Nitrogen concentration at maturity–an indicator of nitrogen status in forage maize. Agronomy Journal, 97, 201-210.
23
Heydari Pour, R., Nassiri Mahalati, M., Koocheki, A. & Zare Feize Abadi, A. (2015). Effects of irrigation and nitrogen application rates on yield and yield components of corn, sesame and sugar beet in Mashhad climatic condition. Iranian Journal of Field Crops Research, 13, 24-33.
24
Javaheri, A. (200) Effect of Nitrogen Fertilizer on Maize, Abstract. 6th Iranian Conference of Plant Breeding. Mazandaran University Press, p. 493. (in Farsi)
25
Jukela, W. L. & Randall, G. W. (1997). Fate of fertilizer N as affected by time and rate of application. Soil Science Society of America Journal, 61, 1695-1703.
26
Khazaei, F., AghaAlikhani, M. & Modarres Sanavy, S.A.M. (2009). Nitrogen rate and plant density effect on dry matter accumulation and fresh ear yield of sweet corn. Pajouhesh & Sazandegi, 92, 1-8 (in Farsi)
27
Machul, M. (1988). Response of two maize hybrids growth for silage and for grain to different plant densities. Pamietnik-Pulawski, 92, 185-191.
28
Mirnia, S. G., Modares Sanavi, S. A. M. & Piri, T. (2001). Effect of different levels of nitrogen on growth and development of corn root. Iranian Journal of Soil and Waters Sciences, 15, 39-56. (in Farsi)
29
Nejafi Nejad, H. & Madahiyan. (2003). Effect of irrigation regimes and planting density on grain yield and some agronomic traits of corn. Seed and Plant Production Journal, 19, 155- 172. (in Farsi)
30
Niknam, N. & Faraji, H. (2014). Effect of plant density and nitrogen on yield and yield components of maize var. Agronomy Journal, 704, 54-60. (in Farsi)
31
Norwood, C. A. (2001). Dryland corn in western Kansas: Effects of hybrid maturity, planting date and plant population. Agronomy Journal, 93, 540-547.
32
Olsen, R. A. & Sander, D. H. (1988). Corn production. In G.F. Sprague, and J.W. Duddley. (Eds.). corn and corn improvement. P. 639. 3rd, ASA. Inc, Madison. USA. (in Farsi)
33
Robert, S., Wearer, W. H. & Phelps, J. P. (1980). Use of the nitrate soil test to predict sweet corn response to nitrogen fertilization, Soil Science, 44, 306-308.
34
Rostaminia, M, Hajsiedhadi, M. R, Pazeki, A. R, Aghabigy, M. & Behbehaninia, A. (2011). Tillage and residue management effects of nitrogen fertilizer on maize yield and leaf area index in Varamin Journal of Plant and Ecosystem, 27: 21-31. (in Farsi)
35
Rozati, N. S., Gholami, A. & Asghari H. R. (2010). Study of nitrogen split application levels and variety effects on yield and agronomical characteristics of corn. Electronic Journal of Crop Production, 4, 1-16. (in Farsi)
36
Saadatzadeh, N., Nabavi Kalat, S.M. & Bahari Kashani, R. (2011). Effects of plant density and nitrogen fertilizer on quantity and quality of forage corn in Daregaz region. Journal of Crop Ecophysiology, 4, 29-42. (in Farsi)
37
Saberi, A.R., Mazaheri, D. & Heidari Sharif Abad. H. (2007). Effects of vary density planting and arrangement on physiological indices and dry matter trend of corn. Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources, 13, 1-9.
38
Sajedi, N. & Ardekani, A. (2008). Effect of nitrogen fertilizer, iron on the physiological indices forage maize in central provinces. Iranian Studies Journal of Agronomy, 6, 99-110. (in Farsi)
39
Salardiny, A. (2005) Soil fertility. Publishing Tehran University. Tehran. (in Farsi)
40
Sarmadnia, G. & Koocheki, A. (2006). Crop Physiology translation (Mashhad University Jihad Publications). (in Farsi)
41
Schroder, J. J., Neeteson, J. J., Oenema, O. & Struik, P.C. (2000). Does the crop or the soil indicate how to save nitrogen in maize production? Reviewing the state of the art. Field Crops Research, 66, 151-164.
42
Sepehri, E., Malakouti, M. J. & Nougolipour, F. (2008). Evaluation of phosphorus efficiency in Iranian cereal in a deficient calcareous soil. Eurosoil 2008 International Conference (Soil- Society-Environment). Book of abstracts: Pp. 182. In: W. E. H. for daily light partitioning in multispecies canopies. Agricultural Forest and Meteorology, 101, 251-263.
43
Singh, U. (2005). Integrated nitrogen fertilization for intensive and sustainable agriculture. Journal of Crop Improvement, 15, 259-287.
44
Tarigholesllami, M., Zarghami, R., Mashadi Akbar bojar, M. & Oweysi, M. (2010) Effect of Nitrogen fertilizer and Water Deficit Stress on Physiological indices of corn (Zea mays L.). Agronomy Journal, 104, 154-160. (in Farsi)
45
Tamaddon Rastegar, M. & Amini, I. (2007). Effects of planting dates and densities on yield and yield components of sweet corn of ksc404 in Mazandaran climate condition. Pajouhesh & Sazandegi, 75, 9-14. (in Farsi)
46
Tesar, M. B. (1988). Physiological basis in crop growth and development. Printed in the united stress of America. 391 p.
47
Tohidi nejad, A. B., Mazahri, A. H., Sarmadnia, A. & Ghafari, H. (1997). The effect of nitrogen fertilizer amounts and their uses on the quantity and curve of the growth of maize. Abstract of the Articles of the 4th Iranian Conference on Plant Breeding, Isfahan University of Technology. p. 179. (in Farsi)
48
Uhart, S. A. & Andrade, F. H. (1995). Nitrogen deficiency in maize. I. Effects on crop growth, development to dry matter-partitioning, and kernel set. Crop Science, 35, 1376-1383.
49
Ulger, A. C., Ibrikci, H., Cakir, B. & Guzel, N. (1997). Influence of nitrogen rates and row spacing on corn yield, protein content, and other plant parameters. Journal of Plant Nutrition, 20, 1697-1709.
50
Widdicombe, W. D. & Thelen, K. D. (2002). Row width and plant density effects on corn in the Northern Great Plains. Agronomy Journal, 87, 842-846.
51
Windauer, L., Altuna, A. & Benech-Arnold, R. (2007). Hydro time analysis of Lesquerella fendleri seed germination responses to priming treatments. Industrial Crops and Products, 25, 70-74.
52
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تأثیر هورمونهای بنزیل آمینو پورین، کینتین و غلظت نیترات آمونیوم روی کشت بساک بادمجان (Solanum melongena L.)
بادمجان (Solanum melongena L.)، یکی از مهمترین گیاهان صیفی در خانوادۀ سولاناسه است. در این پژوهش نرزایی (آندروژنز) از راه کشت بساک در دو رقم دورگ (هیبرید) بادمجان شامل شانتال و والنتینا بررسی شده است. برای این منظور، ارزیابی تأثیر هورمون بنزیل آمینو- پورین (1، 2، 3، 4، 5، 6 و 7 میلیگرم بر لیتر) و کینتین (4، 5/4، 5، 5/5، 6، 5/6 و 7 میلیگرم بر لیتر) و همچنین نیترات آمونیوم (0، 1238، 5/1547، 1857، 5/2166 و 2476 میلیگرم بر لیتر) در سه آزمایش جداگانه بررسی شدند. بنا بر نتایج تجزیۀ واریانس، رقمهای مختلف در تیمارهای مختلف پاسخ متفاوتی داشتند. بهطورکلی، رقم شانتال در دو تیمار 4 میلیگرم بر لیتر از بنزیل آمینو پورین و 6 میلیگرم بر لیتر از کینتین، بیشترین میزان گیاهچههای باززاییشده را به خود اختصاص داد (به ترتیب، 25 و 7/27 درصد). درحالیکه رقم والنتینا در دو تیمار 5 میلیگرم بر لیتر از بنزیل آمینو پورین و 7 میلیگرم بر لیتر از کینتین، بیشترین میزان گیاهچه را تولید کرد (به ترتیب، 6/19 و 8/27 درصد). همچنین نتایج نشان داد، افزایش غلظت نیترات آمونیوم در محیط کشت، کارایی کشت بساک بادمجان را بهبود بخشیده است. بهطورکلی در این پژوهش، از رقمهای شانتال و والنتینا ، به ترتیب 31 و 13 گیاه به دست آمد. برای بررسیهای ژنتیک یاختهای (سیتوژنتیکی)، بهصورت تصادفی شمار ده گیاه از هر رقم تجزیه شد و نتایج نشان داد، در رقمهای شانتال و والنتینا، به ترتیب 40 و 50 درصد گیاهان بررسیشده، هاپلوئید بودند.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64542_ea191bf184670d26e2381aaccc32df56.pdf
2017-11-22
877
888
10.22059/ijfcs.2017.212076.654155
بادمجان
سایتوکینین
کشت بساک
نیترات آمونیوم و هاپلوئیدی
مسعود
عمرانی
masoudomrani69@gmail.com
1
دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
AUTHOR
احمد
معینی
moieni_a@modares.ac.ir
2
دانشیار، گروه اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
زهرا
موحدی
zahra_movahedi_312@yahoo.com
3
استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
Anonymous. (2016). Food and Agriculture Organization of the United Nations. Available on: http://faostat.fao.org/. Last accessed 2016/4/10.
1
Başay, S. & Ellialtioğlu, Ş. Ş. (2013). Effect of genotypical factors on the effectiveness of anther culture in eggplant (Solanum melongena L.). Turkish Journal of Biology, 37(4), 499-505.
2
Dumas de Vaulx, R. & Chambonnet, D. (1982). Culture in vitro d’anthères d’aubergine (Solanum melongena L.): stimulation de la production de plantes au moyen de traitements à + 35 °C associés à de faibles teneurs en substances de croissance, Agronomie, 983-988 pp.
3
Dunwell, J. M. (2010). Haploids in flowering plants: origins and exploitation, Plant Biotechnology Journal, 8(4), 377-424.
4
Ferrie, A. M. R. & Möllers, C. (2011), Haploids and doubled haploids in Brassica spp. for genetic and genomic research, Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 104(3), 375-386.
5
Ferrie, A. M. R. & Caswell, K. L. (2011). Isolated microspore culture techniques and recent progress for haploid and doubled haploid plant production, Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 104(3), 301-309.
6
Gamborg, O. L. (1970). The effects of amino acids and ammonium on the growth of plant cells in suspension culture, Plant Physiology, 45(4), 372-375.
7
Germana, M. A. (2006). Doubled haploid production in fruit crops, Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 86(2), 131-146.
8
Germanà, M. A. (2011), Anther culture for haploid and doubled haploid production, Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 104(3), 283-300.
9
Henry, Y. & De Buyser, J. (1990). Wheat anther culture: agronomic performance of doubled haploid lines and the release of a new variety Florin Wheat. Springer, 285-352 pp.
10
Karimzadeh, GH., Danesh-Gilevaei, M. & Aghaalikhani, M. (2011). Karyotypic and nuclear DNA variations in Lathyrus sativus (Fabaceae), Caryologia, 64(1), 42-54.
11
Kohli, A., Sreenivasulu, N., Lakshmanan, P. & Kumar, P. P. (2013). The phytohormone crosstalk paradigm takes center stage in understanding how plants respond to abiotic stresses, Plant Cell Reports, 32(7), 945-957.
12
Loureiro, J., Pinto, G., Lopes, T., Doležel, J. & Santos, C. (2005). Assessment of ploidy stability of the somatic embryogenesis process in Quercussuber L. using flow cytometry, Planta, 221(6), 815-822.
13
Loureiro, J., Rodriguez, E., Doležel, J. & Santos, C. (2007). Two new nuclear isolation buffers for plant DNA flow cytometry: a test with 37 species, Annals of Botany, 100(4), 875-888.
14
Mordhorst, A. P. & Lörz, H. (1993). Embryogenesis and development of isolated barley (Hordeum vulgare L.) microspores are influenced by the amount and composition of nitrogen sources in culture media, Journal of Plant Physiology, 142(4), 485-492.
15
Moubayidin, L., Di Mambro, R. & Sabatini, S. (2009). Cytokinin–auxin crosstalk, Trends In Plant Science, 14(10), 557-562.
16
Olsen, F. L. (1987). Induction of microspore embryogenesis in cultured anthers of Hordeum vulgare. The effects of ammonium nitrate, glutamine and asparagine as nitrogen sources, Carlsberg Research Communications, 52(6), 393-404.
17
Poehlman, J. M. (2013). Breeding field crops. Springer Science and Business Media.
18
Raina, S. K. & Iyer, R. D. (1973). Differentiation of diploid plants from pollen callus in anther cultures of Solanum melongena L. Z Pflanzenzucht, 70, 275-280
19
Rotino, G. L. (1996). Haploidy in eggplant, In Vitro Haploid Production In Higher Plants. Springer, 115-141 pp.
20
Rotino, G. L., Falavigna, A. & Restaino, F. (1987). Production of anther-derived plantlets of eggplant, Capsicum News letter, 6, 89-90.
21
Rotino, G. L. (2016). Anther culture in eggplant (Solanum melongena L.), In vitro Embryogenesis In Higher Plants. Springer, 453-466.
22
Rotino, G. L., Sihachakr, D., Rizza, F., Valè, G., Tacconi, M. G. & Alberti, P. (2005). Current status in production and utilization of dihaploids from somatic hybrids between eggplant (Solanum melongena L.) and its wild relatives, Acta Physiologiae Plantarum, 27(4), 723-733.
23
Salas, P., Prohens, J. & Seguí-Simarro, J. M. (2011). Evaluation of androgenic competence through anther culture in common eggplant and related species, Euphytica, 182(2), 261-274.
24
Salas, P., Rivas-Sendra, A., Prohens, J. & Seguí-Simarro, J. M. (2012). Influence of the stage for anther excision and heterostyly in embryogenesis induction from eggplant anther cultures, Euphytica, 184(2), 235-250.
25
Seguí-Simarro, J. M.(2016). Androgenesis in solanaceae, In vitro embryogenesis in higher plants. Springer, 209-244 pp.
26
Shetty, K. & Asano, Y. (1991). The influence of organic nitrogen sources on the induction of embryogenic callus in Agrostis alba L., Journal of Plant Physiology, 139(1), 82-85.
27
Shadmand, M., Moeini, A. & Rashidi Monfared, S. (2015). Study on embryo induction and production in some eggplant (Solanum melongena L.) cultivars anther culture using growth regulatore and calcium pretreatment. M.Sc. Thesis, Tarbiat Modares University, Iran. (in Farsi)
28
Stuart, D. A. & Strickland, S. G. (1984). Somatic embryogenesis from cell cultures of Medicagosativa L. The role of amino acid additions to the regeneration medium, Plant Science Letters, 34(1), 165-174.
29
Tuberosa, R., Sanghineti, M. C. & Conti, S. (1987). Anther culture of eggplant Solanum melongena L. lines and hybrids, Genética Agrária, 41(3), 267-274.
30
Kohli, A., Sreenivasulu, N., Lakshmanan, P. & Kumar, P. P. (2013). The phytohormone crosstalk paradigm takes center stage in understanding how plants respond to abiotic stresses, Plant Cell Reports, 32(7), 945-957.
31
Moubayidin, L., Di Mambro, R. & Sabatini, S. (2009). Cytokinin-auxin crosstalk, Trends In Plant Science, 14(10), 557-562.
32
Żur, I., Dubas, E., Krzewska, M. & Janowiak, F. (2015). Current insights into hormonal regulation of microspore embryogenesis, Frontiers In Plant Science, 6, 424.
33
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی برهمکنش مدیریت خاکورزی، اسید سالیسیلیک و قارچریشه بر تنفس خاک و برخی ویژگیهای رشدی ذرت
بهمنظور بررسی تأثیر سطوح مختلف عملیات خاکورزی، پیشتیمار (پرایمینگ) بذر و قارچ قارچریشه (میکوریزا) بر میزان عملکرد، اجزای عملکرد و برخی از صفات رشدی گیاه ذرت، آزمایشی بهصورت کرتهای خردشده (اسپلیتپلات) فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در سال 1393 در ایستگاه تحقیقاتی دانشگاه صنعتی شاهرود اجرا شد. عاملهای مورد بررسی در این آزمایش شامل سه سطح خاکورزی بهصورت، 1) خاکورزی رایج (گاوآهن برگردان دار، دیسک و فاروئر)، 2) کاهشیافته (دیسک و فاروئر)، 3) حداقل (فاروئر)، بهعنوان عامل اصلی و ترکیب سطوح پیشتیمار بذرها (با و بدون پیشتیمار بذرها با اسید سالیسیلیک 1/0 نرمال) و سطوح قارچریشه ( تلقیح و نبود تلقیح) بهعنوان عامل فرعی بررسی شد. نتایج تجزیۀ واریانس بیانگر تأثیر معنیدار اثر متقابل سهگانۀ خاکورزی، پیشتیمار بذرها و همزیستی قارچ بر صفات عملکرد زیستتوده (بیوماس) و عملکرد دانه بود. وزن ظاهری خاک در سطوح مختلف خاکورزی معنیدار شد. اثر متقابل خاکورزی و همزیستی قارچ نیز بر صفات تنفس خاک، درصد پرگنهزایی (کلونیزاسیون) و وزن صددانه معنیدار بود. نتایج مقایسۀ میانگینها نشان داد، ترکیب تیماری خاکورزی رایج×پیشتیمار بذرها× همزیستی قارچ به افزایش معنیدار صفات عملکرد زیستتوده و عملکرد دانه منجر شد. ترکیب تیماری خاکورزی رایج× همزیستی قارچ نیز سبب افزایش معنیدار تنفس خاک و وزن صددانه شد. همچنین تیمار خاکورزی رایج باعث افزایش معنیدار وزن ظاهری خاک شد.
https://ijfcs.ut.ac.ir/article_64543_3a93991515d85ebd8aabd9f8c90d497c.pdf
2017-11-22
889
900
10.22059/ijfcs.2017.228168.654283
تنفس زیستتوده
ذرت
فسفر خاک
قارچریشه آرباسکولار
عفیفه
نیسی
afife_neisi@yahoo.com
1
دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه زراعت و اصلاح نباتات دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه صنعتی شاهرود
AUTHOR
مهدیه
پارسائیان
mahparsa_cb@yahoo.com
2
استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه صنعتی شاهرود
LEAD_AUTHOR
احمد
غلامی
ahgholami@yahoo.com
3
دانشیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه صنعتی شاهرود
AUTHOR
مهدی
برادران فیروزآبادی
m.baradaran.f@gmail.com
4
دانشیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه صنعتی شاهرود
AUTHOR
حمید
عباس دخت
habbasdokht@yahoo.com
5
دانشیار ، گروه زراعت و اصلاح نباتات دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی شاهرود
AUTHOR
Abbasdokht, H., Makarian, H., Ahmadi Sharaf, H., Gholami, A. & Rahimi, M. (2012a). The study of integrated weed management (IWM), emphasizing the effect of seed priming on yield and yield components of maize (Zea mayz L.). Weed Research Journal, 4, 63-76. (in Farsi)
1
Abbasdokht, H. & Edalatpisheh, M. R. (2012b). Effect of seed priming and different levels of urea on yield and yield component of two corn (Zea mays L.) hybrids. IranianJournal of Crop Science, 3, 381-389. (in Farsi)
2
Barbosa, L. R., Diaz, O. & Barber, R. G. (1986). Effects of deep tillage on soil properties, drowth and yield of soya in a compacted Ustochrept in Santa Cruze, Bolivia. Soil and Tillage Research, 15(1-2), 51-63.
3
Bedini, S., Pellegrion E., Avio, L., Pellegrini, S., Bazzoffi, P., Argese, E. & Giovannetti, M. (2009). Changes in soil aggregation and glomalinrelated soil protein content as affected by the arbuscular mycorrizal fungal species Glomus mosseae and Glomus intraradices. Soil Biol. Biochem. 41:1491-1496.
4
Buscot, F. (2005). What are soils?. In: Microorganisms in soils: Roles in genesis and functions. Soil Biology. (pp 3–17). Springer-Verlag, Heidelberg.
5
Caravaca, F., Alguacil M. M., Azcon, R. & Rolda, A. (2006). Formation of stable aggregates in rhizosphere soil of Juniperus oxycedrus: effect of AM fungi and organic amendments. Applied Soil Ecology, 33, 30-38.
6
Cavagnaro, T. R., Jackson, L. E., Six, J., Ferris, H., Goyal, S., Asami, D. & Scow, K. M. (2006). Arbuscular mycorrhizas, microbial communities, nutrient availability and soil aggregates in organic tomato production. Plant Soil, 282, 209-225.
7
Clark, R. B. & Zeto, S. K. (2000). Mineral acquisition by arbuscular mycorrhizal plants. Journal of Plant Nutrition, 23, 867-902.
8
Duman, I. (2006). Effect of seed priming with PE Gand K3PO4 on germination and seedling growth in Lettuce. Pakistan Journal of Biological Sciences. 9(5), 923-928.
9
El Titi, A. (2010). Soil Tillage in Agroecosystems. Taylor and Francis, Nature. pp. 384.
10
Fariduddin, Q., Hayat, S. & Ahmad, A. (2003). Salicylic acid influences net photosyntheticrate, carboxylation efficiency, nitrate reductase activity and seed yield in Brassicajuncea. Photosynt, 41, 281-284.
11
Dinesh, R., Srinivasan, V., Hamza, S. & Manjusha, A. (2010). Short-term incorporation of organic manures and biofertilizers influences biochemical and microbial characteristics of soils under an annual crop [Turmeric (Curcuma longa L.)]. Bioresource technology, 101(12), 4697-4702.
12
El Titi, A. (2010). Soil Tillage in Agroecosystems. Taylor and Francis, Nature 384 pp.
13
Ellis, F. B., Elliot, J. G. E., Barnes, B. T. & Howse, K. R. (1997). Comparison of direct dirlling, reduced cultivation and plughing on the growth of cereals. Journal of Agricultural Science, 89(03), 631-643
14
Gupta, M. L., A. Prasad, Ram, M. & kumar, S. (2002). Effect of the vesicular-arbuscular mycorrhizal (VAM) fungus Glomus fasiculatum on the essential oil yield related characters and nutrient acquisition in the crops of different cultivars of menthol mint (Mentha arvensis L.) under field conditions. Bioresource Technol, 81, 77-79.
15
Gutierrez-Coronado, M. A., Trejo-Lopez, C. & Larque-Saavedra, A. (1998). Effects of salicylic acid on the growth of roots and shoots in soybean. Plant Physiology and Biochemistry, 36(8), 563-565.
16
Halvorson, A. D., Mosier, A. R., Reule, C. A. & Bausch, W. C. (2006). Nitrogen and tillage effects on irrigated continuous corn yields. Agronomy Journal, 98(1), 63-71.
17
Hayat, S., Faridudin, Q., Ali, B. & Ahmad, A. (2005). Effect of salicylic acid on growth and enzyme activities of wheat seedlings. Acta Agronomica Hungarica, 58, 433-437.
18
Hayat, Q., Hayat, SH., Irfan, M. & Ahmad, A. (2010). Effect of exogenous salicylic acid under changing environment: A reviw. Environmental and Experimental. Botany, 68, 14-25.
19
Hussain, I., Olson, K. R. & Ebelhar, S. A. (1999). Impacts of tillage and no-till on production of maize and soybean on an eroded Illinois silt loam soil. Soil and Tillage Research, 52(1), 37-49.
20
Iqbal, M., Ashraf, M., Jamil, A. & Ur‐Rehman, S. (2006). Dose seed priming induce changes in the levels of some endogenous plant hormones in hexaploid wheat plants under salt stress? Journal of integrative plant Biology, 48(2), 181-189.
21
Ishizuka, J. (1992). Trends in biological nitrogen fixation research and application. Plant and Soil, 141(1), 197-209.
22
Kapoor, R., Giri, B. & Mukerji, K. G. (2002). Glomus macrocarpum: a potential bioinoculant to improve essential oil quality and concentration in Dill (Anethum graveolens L.) and Carum (Trachyspermum ammi (Linn.) Sprague). World Journal of Microbiology and Biotechnology, 18(5), 459-463.
23
Khavazi, K., Asadi-Rahmani, H. & Malakouti, M. J. (2005). Necessity for the production of biofertilizers in Iran. Ministry of Jihad-e-Agriculture. Agricultural Research and Education Organization (AREO) and Soil and Water Research Institute (SWRI), Tehran, Iran, 419.
24
Khold-e Barin, B. & Eslamzadeh, T. (2001). Mineral nutrition of higher plants. (2nd ed.). Shiraz University Press. pp. 902.
25
Krantev, A., Yordanova, R., Janda, T., Szalai, G. & Popova, L. )2008(. Treatment with salicylic acid decreases the effect of cadmium on photosynthesis in maize plants. Journal of Plant Physiology, 165(9), 920-931.
26
Lithourgidis, A. S., Dhima, K. V., Damalas, C. A., Vasilakoglou, I. B. & Eleftherohorinos, I. G. (2006). Tillage effects on wheat emergence and yield at varying seeding rates and on labor and fuel consumption. Crop Science, 46, 1187-1192.
27
Marwat, KH. B., Arif, M. & Khan, M. A. (2006). Effct of tillage and zinc application methods on weed and yield of maize. Pakistan Journal of Botany, 39(5), 1583-1591.
28
Mirhadi, M. J. (2001). Corn. The organization of Research, Education and Agriculture Extension Publication. 214 Pp.(in Farsi)
29
Majnoon hosseini, N. (2006). Cereals crop Agronomy (wheat, barley, rice and corn). Tehran Nagshe Publications. 113 Pp. (in Farsi)
30
Mukerji, K. G. & Chamola, B. P. (2003). Compendium of Mycorrhiza Research. A. P. H. Publisher. New Delhi. P. 310.
31
Nadian, H., Smith, S. E., Alston, A. M. & Murray, R. S. (1996). Effects of soil compaction on plant growth, phophorus uptake and morphological characteristics of vesicular-arbuscular mycorrhizal colonization of Trifolium subterraneum. New Phytologist, 133,303-311.
32
Ojha, S., Chakraborty, M. R., Dutta,S. & Chatterjee, N. C. (2008). Influence of VAM on nutrien uptake and growth of wheat. Asian Journal of Experimental Sciences, 22, 221-224.
33
Osonubi, O. (1994). Coperactive effects of vesicular arbuscular mycorrhizal inoculation and phosphrus fertilization on growth and phosphorus uptake of maize and sorghum plant under drought stressed conditions. Biology and Fertility of Soils, 14, 159-165.
34
Pettipas, F. C. (2004). Soil and plant nutrient relationships in processing carrots. M.Sc. Thesis, Nova Scotia Agricultural College, Truro.
35
Philips, J. M., and Hayman, D. S. 1970. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transactions of British Mycological Society, 55, 158-161.
36
Piotrowska, A., Dlugosz, J., Zamorski, R. & Bogdanowicz, P. (2012). Changes in Soil and Biological Chemical Properties of an Arable Soil Treated with the Microbial Biofertilizer. Journal of Environmental Studies, 21(2), 455-463.
37
Popova, L. P., Maslenkova, L. T. Yordanova, R. Y., Ivanova, A. P., Krantev, A. P., Szalai, G. & Janda, T. (2009). Exogenous treatment with salicylic acid attenuates cadmium toxicity in pea seedlings. Plant Physiol Biochem, 47, 224-231.
38
Rahimzadeh, R. (2004). Study on the effects of different tillage methods on physical properties of soil and wheat yield in rapeseed-wheat rotation in warm dry land area. Dry land Agricultural Research Institute, 126. (in Farsi)
39
Riley, H. C. F., Bleken, M. A., Abrahamsen, S., Bergjord, A. K. & Bakken, A. K. (2005). Effects of alternative tillage systems on soil quality and yield of spring cereals on silty clay loam and sandy loam soils in the cool, wet climate of central Norway. Soil and Tillage Research, 80(1), 79-93.
40
Sasanelli, N., Anton, A., Takacs, T., D’Addabbo, T., Biro, I. & Malov, X. (2009). Influence of arbuscular mycorrhizal fungi on the nematicidal properties of leaf extracts of Thymus vulgaris L. Helminthologia, 46(4), 230.
41
Senaranta, T., Touchell, D., Bunn, E., & Dixon, K. (2002). Acetyl salicylic acid (aspirin) and salicylic acid induce multiple stress tolerance in bean and tomato plants. Plant Growth Regulation 30, 157-161.
42
Shakirova, F. M., Sakhabutdinova, A. R., Bezrukova, M. V., Fatkhutdinova, R. A. & Fatkhutdinova, D. R. (2003). Changes in the hormonal status of wheat seedlings induced by salicylic acid and salinity. Plant science, 164(3), 317-322.
43
Sharma, A. K. (2002), Biofertilizers for sustainable agricure. Agrobios. (pp.407). India.
44
Sharralt, B.S. (1996). Tillage and straw management for modifying physical properties of a sub arctic. Soil and Tillage Research, 38,239-250.
45
Shekari, F. A. R. I. D., Baljani, R., Saba, J. & Afsahi, K. (2010). Effect of seed priming with salicylic acid on growth characteristics of borage plants (Borago officinalis L.) seedlings. Journal of New Agricultural Science, 6(18).
46
Skudra, I. & Skudra, A. (2004). Phosphorus concentration in soil and in winter wheat plants. In: Proceedings of the 4th International Crop Science Congress, Brisbane, Australia.
47
Smith, S. E. & Read, D. J. (2008). Mycorrhizal symbiosis. (3rd Ed.). Academic Press, Elsevier, Amsterdam.
48
Sylvia, D. M., Hammond, L. C., J. Bennett, M., Haas, J. H. & Linda, S. B. (1993). Field response of maize to a VAM fungus and water management. Agronomy Journal, 85,193-198.
49
Vyn, T. J. & Raimbault, A. (2003). Long-term effect of five tillage systems on corn response and soil structure. Agronomy Journal, 85, 1074-1079.
50
Watts, C. W., Eich, S. & Dexter, A. R. (2000). Effects of mechanical energy inputs on soil respiration at the aggregates and field scales. Soil and Tillage Research, 53, 231-243.
51
Wilson, G. W. T., Rice, C. W., Rillig, M. C., Springer, A. & Hartnett, D. C. (2009). Soil aggregation and carbon sequestration are tightly correlated with the abundance of arbuscular mycorrhizal fungi: results from lang-term fild experiments. Ecology Letter, 12, 452-461.
52